Забор материала при брюшном тифе

1. Правила забора материала для лабораторных исследований при инфекционной патологии у детей

Используется для диагностики многих болезней (дизентерия, брюшной тиф и др.). Для этого испражнения забирают из горшка, подкладного судна, предварительно продезинфицированных хлорной известью и хорошо промытых горячей водой. Кал может также забираться с помощью, стерильного ватного тампона или металлической петли непосредственно из прямой кишки. Из горшков кал забирается стерильным деревянным шпателем из разных мест исследуемой порции в количестве 1-2 г, причем по возможности отбирают слизь и гной (но не кровь).

Материал помещается в стерильную пробирку или баночку с консервантом. Консервант используют в тех случаях, когда материал нельзя доставить в лабораторию в ближайшие 2 ч. Забор материала может быть осуществлен и во время ректороманоскопии с помощью стерильного ватного тампона. Используется среда Плоскирева.

Забор крови на гемокультуру

Верхнюю бумажную крышку снимают, нижнюю прокалывают иглой и вводят кровь во флакон. Накрывают верхней крышкой, отправляют в лабораторию. Соотношение крови со средой 1:10. Используется среда Раппопорта или желчный бульон.

Берут мочу в количестве 20 - 30 мл из стерильного горшка из средней порции. Переливают в стерильную банку и отправляют в лабораторию.

Берут из трех порций желчи при дуоденальном зондировании в стерильные пробирки в количестве 2 - 3 мл предварительно обработав зонд спиртом.

Забор материала из розеол.

Кожа обрабатывается спиртом. Туберкулиновым шприцом вводят в розеолу 0,1 мл физиологического раствора, затем набирают обратно в шприц 0,1мл.

Правила забора и доставки материала при менингококковой инфекции

Берут натощак или через 2 часа после еды изогнутым шпателем с задней стенки глотки. У постели больного в чашку Петри (из термостата) вначале тампон прикладывают всеми сторонами к среде в центре чашки, затем штрихообразными движениями распределяют посев по всей поверхности.

Забор спинномозговой жидкости

Используют три стерильные пробирки (для бак исследования, для биохимического исследования, для клинического исследования), в каждую собирают 1,5 - 2,0 мл ликвора.

Забор крови на гемокультуру

В процедурном кабинете в стерильных условиях у больного берут в/в 5-10 мл крови, иглу прокаливают над спиртовкой. Предварительно необходимо получить в лаборатории стерильную среду во флаконе в объеме 50 - 100 мл. Верхнюю бумажную крышку снимают, нижнюю прокалывают иглой и вводят кровь во флакон. Накрывают верхней крышкой, отправляют в лабораторию. Соотношение крови со средой 1:10. Используется 1% кровяной агар.

Забор материала из петехий

Кожа обрабатывается спиртом. Туберкулиновым шприцом вводят в розеолу 0,1 мл физиологического раствора, затем набирают обратно в шприц 0,1 мл. При некрозе забор проводят микробиологической петлей в чашку Петри.Транспортировка при температуре 37,0 °С.

Используются для диагностики малярии и возвратного тифа. Иглой-копьем разового пользования или толстой инъекционной иглой (стерильной) делается прокол кожи ногтевой фаланги IV пальца или мочки уха. Кожа на месте прокола обрабатывается спиртом и осушается сухим ватным шариком. Если кровь идет плохо, то надо руку опустить вниз. Выдавливать каплю нельзя, так как в этом случае с кровью выступит лимфа, что повлияет на результат исследования.

Для приготовления толстой капли первую каплю крови стирают сухим шариком, а ко второй капле прикасаются сухим обезжиренным стеклом в 2-3 местах и размазывают углом другого стекла каждый из полученных отпечатков круговыми движениями до того момента, пока диаметр капель не достигнет 10-15 мм. Для приготовления тонкого мазка к капле с края прикладывают предметное стекло, которое не должно касаться пальца. После этого стекло перевертывают каплей вверх, берут его в левую руку, а правой рукой приставляют под острым углом к капле шлифованное (или другое предметное) стекло и после растекания крови на месте соприкосновения стекол быстрым одномоментным движением размазывают кровь по поверхности предметного стекла.

Используется для диагностики многих инфекционных болезней, например тифо-паратифозных заболеваний. Для этого из локтевой вены с помощью шприца берут кровь в количестве 10-15 мл. После извлечения иглы из вены ее снимают стерильным пинцетом, а конец шприца обжигают над пламенем спиртовки (при отсутствии спиртовки можно зажечь на крышке стерилизатора кусочек ваты, смоченный спиртом) и выливают кровь во флакон с жидкой питательной средой (желчный, сахарный бульон). Соотношение крови и питательной среды должно быть не менее 1:10, чтобы исключить влияние бактерицидных свойств крови. Например, для объема крови в 10 мл надо взять 100 мл среды. При посеве крови нельзя допускать попадания посторонней микрофлоры из воздуха: перед процедурой медицинской сестре следует надеть маску, при сборке шприца в первую очередь на цилиндр нужно насадить иглу, после чего вставить поршень, продвинуть его до упора, не делая обратных движений. Флакон с засеянной питательной средой сразу отправляется в лабораторию. Если посев производится в вечернее или ночное время, когда лаборатория не работает, флакон ставится в термостат, имеющийся в отделении или приемном покое.

Кровь для серологических и биохимических исследований

Берут из вены натощак. Прокол вены делают иглой с достаточно широким просветом без шприца и выпускают кровь в пробирку. Насасывать кровь шприцем не рекомендуется из-за возможной травматизации эритроцитов и последующего гемолиза. На серологическое исследование кровь следует брать в стерильную пробирку. При этом для серологических исследований достаточно 3-5 мл крови, для биохимических - обычно больше, например, при вирусном гепатите 8-10 мл.

Методика забора материала для бактериологического исследования каловых масс при дисбактериозе

В практической работе о состоянии НБК в основном судят по методу Ф.Л.Вильшанской (1970) позволяющему оценить изменения качественного и количественного состава микрофлоры фекалий определить количественно наличие бифидобактерий, лактобактерий, энтерококков, различных видов кишечных палочек, условно-патогенные бактерий и грибов.

Исследуемым материалом является кал после естественной дефекации; посуда для проб фекалий должна быть стерильной. Флаконы емкостью 10-20 мл. прозрачные, с плотно завинчивающейся крышкой стерилизуются автоклавированием, сухим жаром, газовой стерилизацией. Не следую обрабатывать посуду дезинфицирующими растворами и другими химическими веществами.

Забор материала производится стеклянной или деревянной палочкой из средней порции кала в количестве не менее 2 г. Материал следует доставлять в лабораторию в кратчайшие сроки, не позднее чем через 2 часа после забора пробы (интервал между забором пробы и началом посева не должен превышать 4 часа). С момента взятия пробы и до посева оптимальные условия хранения — в холодильнике.

Для полного количественного учета после тщательного эмульгирования пробы готовят серийные десятикратные разведения. Из полученных разведении делают посевы.

Забор мочи для бактериоскопичёского исследования.

Используется при подозрении на лептоспироз. Для этого собирают мочу в количестве 10 мл в стерильную посуду при естественном мочеиспускании. У женщин перед сбором мочи необходим туалет наружных половых органов.

Забор мочи для посева.

Используется для диагностики тифо- паратифозных заболеваний. Для этого мочу собирают в стерильные банки или флаконы в количестве 20-30 мл с помощью свежепрокипяченного резинового катетера после предварительного обмывания наружных половых органов дезинфицирующим раствором, например перманганата калия. У мужчин мочу можно брать при естественном мочеиспускании без катетера после обработки головки полового члена дезинфицирующим раствором. При этом для исследования берется вторая порция мочи.

Забор испражнений для посева

Забор испражнений для посева. Используется для диагностики многих болезней (дизентерия, брюшной тиф и др.). Для этого испражнения забирают из горшка, подкладного судна, предварительно продезинфицированных хлорной известью и хорошо промытых горячей водой. Кал может также забираться с помощью, стерильного ватного тампона непосредственно из прямой кишки. Из горшков кал забирается стерильным деревянным шпателем из разных мест исследуемой порции в количестве 1-2 г, причем по возможности отбирают слизь и гной (но не кровь). Материал помещается в стерильную пробирку или баночку с консервантом. Консервант используют в тех случаях, когда материал нельзя доставить в лабораторию в ближайшие 2 ч. Забор материала может быть осуществлен и во время ректороманоскопии с помощью стерильного ватного тампона.

При заборе материала тампоном больной лежит на боку с приведенными к животу бедрами и разводит руками ягодицы; тампон осторожно вводится небольшим вращательным движением в прямую кишку на глубину 6-8 см и так же осторожно вынимается, после чего помещается в стерильную пробирку. Высеваемость патогенных микроорганизмов возрастает, если посев испражнений производится непосредственно в отделении на плотные питательные среды (среда Плоскирева, Эндо и др.).

Мазки со слизистых оболочек зева и нёбных миндалин

Используются для диагностики дифтерии, менингококковой инфекции. Больной усаживается на стул против света; в рот вводится левой рукой шпатель и придавливается корень языка книзу и кпереди. Правой рукой в полость рта вводят стерильный тампон, не касаясь поверхности языка, и снимают тампоном налет и слизь с миндалин и дужек мягкого нёба. Для микроскопического исследования материал наносится тампоном на предметное стекло, обводится стеклографом и после подсушивания отправляется в лабораторию.

Для бактериологического исследования (посев) материал из зева на BL

Используются для диагностики дифтерии, менингококковой инфекции. Больной усаживается на стул против света; в рот вводится левой рукой шпатель и придавливается корень языка книзу и кпереди. Правой рукой в полость рта вводят стерильный тампон, не касаясь поверхности языка, и снимают тампоном налет и слизь с миндалин и дужек мягкого нёба на границе между нормальной и измененной тканью. В качестве консерванта используют глицерин и физиологический раствор. Предварительный ответ приходит через 24 часа, ответ на токскигенность "+" через 48 часов, "-" через 72 часа.

Забор материала для иммунофлюоресцентной микроскопии

Мазки-отпечатки. Используются для диагностики гриппа и острых респираторных заболеваний в ранние дни болезни. До взятия материала полость носа освобождается от слизи, затем увлажненный физиологическим раствором ватный тампон небольшого размера вводится в носовой ход на 2-3 см и прижимается к нижней носовой раковине, после чего тампоном делаются отпечатки на обезжиренном Эфиром предметном стекле. Мазки подсушиваются и отправляются в лабораторию. Мазки могут приготовляться и в лаборатории после соответствующей обработки тампонов.

Натощак деревянной палочкой со стерильным ватным тампоном берут мазок с задней стенки глотки. Помещают в стерильный флакончик от пенициллина, обламывают палку на уровне тампона. Больному дают 20 - 30 мл кипяченой воды, просят прополоскать рот. Затем ребенок сплевывает воду в стерильную банку с широким горлом. Эту воду наливают во флакончик с тампоном (на 2/3). Закрывают стерильной ватой, помещают в термос со льдом и отправляют в лабораторию.

Забор желчи на посев

Желчь на посев собирается во время дуоденального зондирования в стерильные пробирки (раздельно порции А, В и С). Перед заполнением пробирок кончик зонда протирается ватой, смоченной в спирте. Посев желчи используется для контроля бактериологического очищения реконвалесцентов, перенесших брюшной тиф, паратифы А и В, сальмонеллез.

Забор рвотных масс на посев

Используется для диагностики пищевых токсикоинфекций и холеры. Для этого рвотные массы собирают в стерильные банки или широкогорлые флаконы в количестве 50-150 г; отверстие банки или флакона закрывают целлофаном или плотной вощаной бумагой и направляют в лабораторию. Промывные воды желудка собираются аналогичным образом, но промывание следует производить кипяченой водой без применения антисептических средств, обладающих губительным действием на микробы (калия перманганат, и др.).

Волгоградский государственный медицинский университет

Кафедра детских инфекционных болезней

ОСНОВНЫЕ ПРАКТИЧЕСКИЕ НАВЫКИ

· Материал берется врачом при первом обращении больного в стационар или поликлинику до начала лечения антибиотиками.

· Забор материала производится разными для зева, носа, глаза и т. д. тампонами.

· Мазок берется натощак, до туалета ротовой полости или через 3 часа после еды.

·
Взятие производят стерильным ватно-марлевым тампоном, под контролем глаза, обязательно со шпателем. Слизь берется с миндалин, дужек, язычка, задней стенки глотки, не задевая языка, слизистой щек и зубов.

· Корень языка отдавливается книзу и кпереди шпателем (левой рукой), а правой рукой осторожно вводят в ротовую полость тампон и снимают слизь. При наличии пленок слизь берется на границе здоровой и пораженной ткани.

· При взятии слизи из носа, необходимо предварительно очистить носовые ходы (предлагают больному высморкаться), маленьким детям сухим ватным фитилем удаляют корки. Тампон вводят в каждую ноздрю, плотно прикасаясь всеми его сторонами к стенке и перегородке носа.

· Материал доставляется в лабораторию не позднее 3-4 часов от момента забора.

Контрольное бактериологическое исследование на токсигенные коринебактерии проводится через 3 дня после отмены антибиотиков, двукратно с интервалом в 1 день.

Правила забора материала для бактериологического исследования на менингококк

1. При менингококковой инфекции исследованию подлежит носоглоточная слизь (берется мазок из глотки и носовых ходов).

2. Материал из глотки берется с помощью стерильного тампона, укрепленного на алюминиевой проволоке, изогнутой под углом 1350.

3. Материал забирается натощак или через 3-4 часа после еды, при этом язык обязательно фиксируется шпателем.

4. Тампон осторожно вводят в ротовую полость, проводят за небную занавеску (не касаясь при этом щек, зубов, языка) и снимают слизь с задней поверхности глотки под контролем глаза.

5. При взятии слизи из носа, необходимо предварительно очистить носовые ходы (предлагают больному высморкаться), маленьким детям сухим ватным фитилем удаляют корки. Тампон вводят в каждую ноздрю, плотно прикасаясь всеми его сторонами к стенке и перегородке носа.

Взятые мазки немедленно высевают на соответствующие плотные питательные среды, а также наносят на предметное стекло, обводят стеклографом, подсушивают и направляют в лабораторию для микроскопического исследования.

1. Обнаружение паразитов в мазке крови является основным методом диагностики малярии. Мазки используют в случаях, когда видовую принадлежность плазмодиев, найденных в толстой капле, установить не удалось.

2. Лучше всего производить забор крови во время лихорадки или сразу же после озноба, до начала этиотропной терапии.

3. Предметные стекла, на которых будут готовить препарат, должны быть хорошо вымыты и обезжирены.

4. Кровь берут с соблюдением правил асептики. Первую выступившую каплю крови вытирают сухой ватой, затем палец поворачивают проколом вниз и ко второй капле прикасаются предметным стеклом.

5. При приготовлении мазка капля крови должна быть 2-3 мм., шлифованное стекло ставят перед каплей под углом 450º и продвигают вперед до соприкосновения с ней. Когда кровь растечется между обоими стеклами, плавным и быстрым движением делают мазок.

6. Для приготовления толстой капли на стекло наносят каплю крови диаметром около 5 мм. Её размазывают иглой или углом предметного стекла в диск диаметром 10-15 мм. Толщина полученной капли должна быть такой, чтобы через нее можно было читать газетный шрифт. Обычно на одно стекло наносят 2-3 капли на некотором расстоянии одна от другой. Взятые капли должны быть отмечены на обратной стороне стекла восковым карандашом - ФИО больного или регистрационный номер.

7. Возможно нанесение толстой капли на влажный мазок крови. В данном случае капля самостоятельно растекается в правильный диск. Маркировка препарата делается простым карандашом. При приготовлении толстой капли данным способом, удается хорошо сохранить в мазке пораженные эритроциты, что весьма важно для уточнения вида паразитемии, препарат удерживается на стекле более прочно, чем при непосредственном нанесении на стекло.

8. Приготовленные препараты высушивают при комнатной температуре не менее 2-3 часов и окрашивают по Романовскому-Гимзе.

Методика проведения спиномозговой пункции.

1. Пункцию проводят натощак в процедурном кабинете или операционной.

2. Ребенка укладывают на бок, сгибают голову кпереди, бедра приводят к животу, выгибая спину кзади, и фиксируют в таком положении.

3. Место прокола обтирают 95% спиртом.

4. Прокол производят между II-III или III-IV поясничными позвонками (место прокола определяют по линии, соединяющей гребни подвздошных костей).

5. Для пункции используют специальные иглы с коротким срезом обязательно с мандреном.

6. Игла вводится строго сагиттально по средней линии с легким наклоном в сторону головы. Игла вводится медленно, преодолевая сначала кожу, потом межпозвоночные связки, твердую мозговую оболочку, после чего как бы проваливается в спиномозговой канал.

7. Количество спиномозговой жидкости примерно составляет 1 мл на год жизни ребенка, но не более 5-6 мл.

8. После забора жидкости иглу извлекают, место прокола зажимают стерильным тампоном и заклеивают лейкопластырем. Ребенок должен лежать на животе, без подушки. Строгий постельный режим должен соблюдаться не менее суток.

Методика забора материала при коклюше методом

1. Ребенка фиксируют на руках так же, как и при заборе мазков из зева.

2. Врач шпателем нажимает левой рукой на корень языка и слегка раздражает заднюю стенку глотки, при этом в правой руке он держит открытую подогретую и подсушенную чашку Петри со средой Борде-Жангу.

3. При появлении кашлевых толчков из трахеи и бронхов отходит мокрота, которую собирают в открытую чашку Петри, поднеся ее на расстояние 10-15 см ко рту ребенка.

Правила забора материала для бактериологического исследования на кишечную группу бактерий.

1. Забор материала осуществляют до начала лечения этиотропными средствами. Посев производят немедленно после забора, непосредственно у постели больного. Если собранный материал нельзя направить в лабораторию, его помещают в консервант, хранят в холодильнике при температуре +40С.

2. Забор испражнений (2-3г) производят стерильным деревянным шпателем или стеклянной палочкой из судна, горшка, специального лотка или пеленки. В судне или горшке не должно оставаться следов дезинфицирующих средств, для чего их необходимо тщательно промыть горячей водой. При отсутствии стула возможен забор материала непосредственно из прямой кишки с помощью ватных тампонов, металлических петель или через трубку ректоскопа.

3. Для посева нужно стремиться взять слизь, гной, фибринные пленки, избегая примеси крови в связи с ее бактерицидными свойствами

Правила забора материала для бактериологического исследования при брюшном тифе.

Материалом при исследовании на брюшной тиф служат кровь, испражнения, моча, желчь, соскобы с розеол, в редких случаях - пунктат костного мозга.

· Выделение сальмонелл из крови (гемокультура) является наиболее ранним и достоверным методом диагностики. Кровь для исследования берут при повышенной температуре в любой день болезни (обычно в первые 10 дней). Чем раньше от начала заболевания произведен посев, тем достовернее результат. Кровь берут из вены, желательно до начала антибактериальной терапии, в количестве 10 мл на первой неделе, и 15-20 мл в более поздние сроки, у постели больного засевают на питательную среду в соотношении 1:10 (при меньшем объеме питательной среды кровь оказывает бактерицидное действие на микроб-возбудитель).

· Посев кала (копрокультура) производят со второй недели заболевания. Стерильным деревянным шпателем или стеклянной палочкой берут 2-3 г испражнений из судна или горшка и помещают в стерильные банки. Для устранения дезинфицирующих средств судно или горшок следует тщательно промыть горячей водой. Посев производят прямым методом на чашки со средой Плоскирева или Левина.

· Посев мочи (уринокультура) производят непосредственно на среды, начиная со второй недели заболевания. В стерильную посуду собирают 20-30 мл мочи с соблюдением условий, исключающих попадания посторонней флоры.

· Посев из розеол (розеолокультура) осуществляют при появлении на коже розеолезной сыпи. Кожу над розеолой обрабатывают спиртом и скарифицируют. На место скарификации наносят каплю желчного или простого бульона, а затем с помощью пипетки переносят во флакон с 50 мл желчного бульона.

· Посев желчи (биликультура) производят не ранее 10 дня нормальной температуры. Желчь, полученную при помощи дуоденального зондирования, собирают в стерильные пробирки. Производят посев всех порций дуоденального содержимого (А, В, С) по 0,5 мл на чашки Петри с дифференциальными средами, и 1-2 мл на среду обогащения (бульон).

Правила забора крови для серологических исследований

Сущность метода заключается в определении роста титра антител в сыворотке крови больного по отношению к известным антигенам.

1. Кровь берут дважды с интервалом в 7-10 дней, начиная с 3-5 дня заболевания.

3. После отстаивания и центрифугирования с помощью пипетки сыворотку крови переносят в другую пробирку и хранят в холодильнике при +40С до постановки реакции.

4. Нарастание титра антител в 4 и более раза является подтверждением предполагаемого диагноза.

Правила введение гетерогенных сывороток по методу Безредки

Все гетерогенные сыворотки содержат остаточное количество чужеродного (лошадиного) белка, поэтому вводить сыворотку нужно дробно, определив предварительно чувствительность организма.

1. Внутрикожно в среднюю треть сгибательной поверхности предплечья вводят 0,1 мл разведенной в 1:100 сыворотки (ампулы прилагается к каждой упаковке). Результат оценивается через 20-30 минут. Проба считается отрицательной, если диаметр папулы и гиперемии не превышает 9 мм и нет общей реакции организма (сыпи, повышения температуры и т. д.).

2. При отрицательной внутрикожной пробе вводят подкожно (в наружную поверхность плеча) 0,1 мл не разведенной сыворотки. Результат учитывают через 40 минут. Если в месте введения диаметр папулы или гиперемии не превышает 9 мм, проба считается отрицательной.

3. Вводят всю лечебную дозу сыворотки внутримышечно (в переднюю поверхность бедра или наружный квадрант ягодичной мышцы).

1. Катетеризацию проводят мягким одноразовым катетером с соблюдением асептики.

2. Ребенка укладывают на спину и обмывают наружные половые органы марлевым тампоном, смоченным раствором фурациллина (1:5000). Конец катетера смачивают стерильным вазелином.

3. У мальчиков средним и безымянным пальцами левой руки обхватывают половой член ниже головки, а большим и указательным фиксируют её и слегка натягивают уретру по средней линии. Девочкам указательным и большим пальцами раздвигают большие половые губы и дезинфицирующим раствором обрабатывают наружное отверстие уретры.

4. Катетер вводят стерильным пинцетом в наружное отверстие уретры и проталкивают его внутрь до мочевого пузыря. О попадании катера в пузырь свидетельствует появление мочи.

1. Грудного ребенка укладывают на спину с приподнятыми вверх ногами.

2. Прокипяченный резиновый баллон с кипяченой водой (28-300С) осторожно вводят в задний проход на глубину 3-5 см. Предварительно его наконечник смазываю вазелином маслом.

3. Медленно вводят в прямую кишку воду. Количество воды для новорожденного 25-30 мл, грудного ребенка – 60-150 мл.

4. После введения жидкости ягодицы ребенка сжимают рукой, а другой осторожно извлекают наконечник чтобы не допустить вытекания воды до усиления перистальтики кишечника.

Методика проведения очистительной клизмы ребенку старшего возраста

1. Для очистительных клизм детям старшего возраста используют кружку Эсмарха.

2. Ребенка укладывают на левый бок с подогнутыми ногами. Заполняют кружку кипяченой водой (20-220С) и вешают на штатив, чтобы она находилась на 50-75 см выше уложенного ребенка.

3. Резиновый наконечник смазывают вазелином и, разведя ягодицы, вводят на глубину 5-10 см.

4. Скорость поступления жидкости и ее объем регулируют с помощью крана, размещенного на резиновой трубке.

5. Детям 2-5 лет вводят 150-200 мл, более старшего возраста – 200-500 мл.

6. После введения жидкости больной должен полежать 8-10 мин, пока не усилится перистальтика.

Промывание желудка производится с лечебной и диагностической целью для удаления из него недоброкачественной пищи, ядов, слизи. При этом используется принцип сифона.

1. Больной садится на стул, плотно прислонившись к его спинке, слегка наклонив голову вперед. Между ногами больного ставится таз или ведро, куда будут собираться промывные воды.

2. Введение зонда может вызвать тошноту или рвоту. Больного предупреждают об этом и предлагают делать частые глотательные движения и глубоко дышать через нос.

3. После введения зонда в желудок к наружному концу трубки присоединяют воронку и наполняют ее жидкостью, затем воронку поднимают вверх. Когда жидкость опустится до нижней части конуса воронки, ее опускают до уровня головы ребенка.

4. Как только воронка заполнится содержимым желудка и промывной жидкостью, резиновую трубку пережимают пальцами ниже воронки и все сливают в таз. Это повторяют до тех пор, пока из желудка не будут поступать чистые промывные воды.

5. Собранные промывные воды собирают в стерильную посуду и отправляют в лабораторию для исследования.

1. Кровь для посева подвергают исследованию при подъеме температуры у больного в начале озноба.

2. Объем крови составляет 5-10 мл, берут из локтевой вены.

3. Посев рекомендуется производить непосредственно после взятия в 50-100 мл среды обогащения в колбу объемом 250 мл.

4. При невозможности проведения посева, сразу после забора крови, помещают в стерильную пробирку, содержащую антикоагулянт и транспонируют в лабораторию. Хранить материал можно не более 2 часов в холодильнике при +4°С.

Для получения копрокультуры у больных забирают испражнения:

1. Посев для выделения сальмонелл производят из жидкой части испражнений.

2. Посев фекалий можно производить прямым способом - на среды обогащения и плотные; при этом небольшое количество испражнений размешивают в физиологическом растворе. Оставляют на 30 минут для оседания крупных частиц. С поверхности берут одну каплю материала, которую засевают на дифференциально-диагностические среды для выделения сальмонелл (агар Плоскирева, висмут-сульфитный агар).

Для этиотропного лечения используют антибиотики или другие химиотерапевтические препараты.

Специфическая профилактика тифо-паратифозного заболевания проводится убитыми и химическими вакцинами по эпидемическим показаниям, контактным лицам - экстренная фагопрофилактика сальмонеллезными поливалентными бактериофагами.

Сальмонеллы - возбудители гастроэнтероколитов. К данной группе относятся возбудители сальмонеллезов, кли нически проявляющиеся у людей в виде гастроэнтероколитов, возни кающих в результате пищевых токсикоинфекций. К ним относятся разнообразные серовары сальмонелл: S. typhimurium, S. enterididis, S. anatum Патогенность и патогенез. К факторам вирулентности относятся микрокапсула, белки наружной мембраны клеточной стенки, которые способствуют адгезии на энтероцитах тонкой кишки. Затем они проникают в энтероциты и в составе фагосомоподобных вакуолей, где фагоцитируются макрофагами. Вместе с тем сальмонеллы мед ленно размножаются в организме из-за того, что они нуждаются в F++. Многие из них, например, S. typhimurium, имеют плазмиду ColB, которая способна отбирать Fe-н - от гемоглобина. Этот признак также можно рассматривать как проявление вирулентных свойств патоген ных бактерий. Существенное значение в возникновении и развитии сальмонеллезов имеет количество бактерий, поступивших в кишечник. При разрушении сальмонелл освобождается эндотоксин (ЛПС), оказывающий неспецифическое полифункциональное действие (на рушение функций нервной, сердечно-сосудистой и пищеварительной систем). Кроме того, сальмонеллы продуцируют энтеротоксин (типа термолабильного токсина Е. coli), механизм действия которого заключается в нарушении водно-солевого обмена, что приводит к диа рее и обезвоживанию организма. Заболевание обычно протекает в течение 3-5 дней и заканчивается выздоровлением. При генерализации процесса болезнь затягивается.

Иммунитет. При сальмонеллезах имеет место гуморальный и частично клеточный иммунный ответ, которые не приводят к развитию напряженного иммунитета, в отличие от брюшного тифа и паратифов.

Экология и эпидемиология. Как указывалось выше, сальмонеллезы являются зоонозно-антропонозными инфекциями. Заражение происходит при употреблении в пищу мяса крупного рогатого скота, свиней, кур, а также яиц. Инфицирование мяса может быть прижизненным, а также происходить в процессе убоя, разделки туш, при хранении, транспортировке и кулинарной обработке. Кроме мяса источником инфекции могут быть кондитерские изделия, при изготовлении которых используют зараженные яйца. К сальмонеллезам одинаково восприимчивы взрослые и дети, у которых заболевание про текает тяжелее. В отличие от многих других бактерий сальмонеллы могут размножаться при 4-6°С и длительно сохраняться в замороженных мясных изделиях. Лабораторная диагностика. Окончательный диагноз пищевой токсикоинфекции устанавливают только после выделения возбудите ля из организма больных людей и пищевых продуктов. Для этого проводят бактериологические исследования, которые обязательно за вершаются определением серовара выделенной чистой культуры саль монеллы, что необходимо для выявления источника инфекции. При пищевых токсикоинфекциях, вызванных другими бактериями (Е. coli, Proteus и др.), также необходима их идентификация с установлением вида и серовара или биовара. Определение серовара проводят с по мощью монорецепторных сывороток.

Профилактика и лечение. Основное значение в профилактике сальмонеллезов придается проведению ветеринарно-санитарных и других противоэпидемических мероприятий. Антибиотики применя ют только для лечения генерализованных форм сальмонеллеза

Читайте также: