Напряженность иммунитета к кори у медицинских работников

1.1. В методических указаниях изложены основные принципы организации и осуществления серологического мониторинга состояния коллективного иммунитета к инфекциям, управляемым средствами специфической профилактики (дифтерия, столбняк, коклюш, корь, краснуха, эпидемический паротит, полиомиелит, гепатит В).

1.2. Настоящие методические указания предназначены для специалистов органов, осуществляющих государственный санитарно-эпидемиологический надзор, и специалистов лечебно-профилактических организаций.

2.2. Целью серологического мониторинга является оценка уровня фактической защищенности от инфекций отдельных лиц, коллективов и населения в целом, а также оценка качества прививочной работы на конкретной территории и в конкретной организации здравоохранения.

2.3. Серологический мониторинг включает:

• оценку эффективности проведенной иммунизации.

Порядок сбора, транспортирования и хранения сывороток крови для исследований осуществляется в соответствии с прилож. 1.

2.5. Организация и проведение серологического мониторинга состояния коллективного иммунитета населения осуществляется организациями здравоохранения и органами, осуществляющими государственный санитарно-эпидемиологический надзор.

2.6. Проведение серологического мониторинга состояния коллективного иммунитета оформляется постановлением Главного государственного санитарного врача по субъекту Российской Федерации, в котором по согласованию с органами управления здравоохранением определяются территории, время (график), контингента и численность групп населения, подлежащих обследованию, определяются микробиологические лаборатории для проведения исследований, а также лица, ответственные за организацию и проведение этой работы.

В развитие постановления Главного государственного санитарного врача по субъекту Российской Федерации, издается приказ органа управления здравоохранением субъекта Российской Федерации.

Проведение серологического мониторинга ежегодно включается в планы работы территориальных органов Роспотребнадзора и организаций здравоохранения.

3.1. Материалом для исследования служит сыворотка крови, выявленные антитела в которой являются источником информации об уровне иммунитета к возбудителям инфекций, управляемым средствами специфической профилактики.

3.2. Используемые методы исследования сывороток должны быть безвредными, специфичными, чувствительными, стандартными и доступными для массовых обследований.

3.3. Для проведения серологических исследований сывороток крови в Российской Федерации применяются:

• реакция пассивной гемагглютинации (РПГА) - для выявления антител к вирусу кори, дифтерийному и столбнячному анатоксинам;

• реакция агглютинации (РА) - для выявления агглютининов коклюшного микроба;

• иммуноферментный анализ (ИФА) - для выявления антител к вирусам кори, краснухи, эпидемического паротита, гепатита В, а также возбудителя коклюша;

• реакция нейтрализации цитопатического действия вируса в культуре клеток ткани (макро- и микрометод) - для выявления антител к вирусам полиомиелита.

3.4. Для проведения серологических исследований должны использоваться зарегистрированные в Российской Федерации диагностикумы и тест-системы.

4.1.1. Единство места получения прививки (организация здравоохранения, детское дошкольное учреждение, школа и другие организации, где проводились прививки).

Этот принцип формирования групп позволяет выявить организации с низким качеством прививочной работы, а при последующем тщательном расследовании определить конкретные ее недостатки (нарушение правил хранения, транспортирования вакцин, фальсификацию прививок, их несоответствие срокам и схемам существующего календаря профилактических прививок, технические ошибки и др.).

4.1.2. Единство прививочного анамнеза.

Обследуемая группа населения должна быть однородной, для чего необходим отбор лиц с одинаковым числом прививок и сроком от момента проведения последней прививки.

4.1.3. Сходство эпидемиологической ситуации, в условиях которой формируются обследуемые группы.

Для осуществления требований этого принципа формирование групп проводится из коллективов, в которых в течение одного года и более не регистрировались случаи заболеваний дифтерией, коклюшем, корью, краснухой, эпидемическим паротитом, гепатитом В.

4.2. Отбор контингентов для обследования начинается с определения территорий.

Границы территории определяются сферой обслуживания той или иной организацией здравоохранения. Это может быть отдельный организованный коллектив детей и взрослых, врачебный участок, населенный пункт, приписанный к фельдшерско-акушерскому пункту, территория обслуживания одной поликлиники.

4.3. Серологический мониторинг целесообразно проводить в первую очередь на крупных административных территориях субъектов Российской Федерации (в городах, районных центрах) - ежегодно. Каждый год в обследование должны включаться разные районы и поликлиники города (районного центра). Периодичность их обследования должна составлять 6 - 7 лет (по графику).

4.6. Сыворотки крови взрослых для исследования могут быть взяты на станциях переливания крови.

Порядок сбора, транспортирования и хранения сывороток крови определен в прилож. 1.

Многоцелевые серологические исследования предполагают определение в одной пробе сыворотки крови максимального спектра антител к возбудителям изучаемых инфекций.

• переболевших коклюшем, дифтерией, столбняком, корью, краснухой, эпидемическим паротитом, полиомиелитом и острым гепатитом В, а также больных хроническим гепатитом В и носителей вируса гепатита В;

• детей, у которых отсутствуют сведения о прививках;

• не привитых против этих инфекций;

• перенесших какое-либо заболевание за 1 - 1,5 месяца до обследования, так как отдельные болезни могут привести к временному снижению титра специфических антител.

5.3. Состояние коллективного иммунитета к дифтерии, столбняку, эпидемическому паротиту, полиомиелиту, гепатиту В у взрослых определяется без учета данных о прививках. Состояние иммунитета к кори и краснухе - без учета данных о прививках определяется у взрослых только в возрастной группе 40 лет и старше.

5.4. Дифтерия и столбняк.

По результатам серологического обследования детей в возрасте 3 - 4 лет проводится оценка формирования базисного иммунитета, в возрасте 16 - 17 лет - оценивается качество прививок, проводимых в школе и средних учебных заведениях.

Результаты серологических обследований взрослых в возрасте 18 лет и старше (по возрастным группам) без учета их привитости позволяют оценить фактический уровень защищенности от дифтерии и столбняка взрослых в каждой возрастной группе и выявить группы риска по заболеваемости и тяжести течения болезни.

По результатам серологического обследования детей в возрасте 3 - 4 лет проводится оценка формирования базисного иммунитета.

5.6. Корь, эпидемический паротит, краснуха.

По результатам серологического обследования детей в возрасте 3 - 4 лет и 9 - 10 лет проводится оценка уровня противокоревого, противопаротитного и противокраснушного иммунитета после вакцинации и ревакцинации.

Серологическое обследование детей в возрасте 16 - 17 лет, позволяет оценить результативность ревакцинации в отдаленные сроки, а также уровень иммунной прослойки к этим инфекциям во вновь формирующихся коллективах средних и высших учебных заведений.

Результаты обследования взрослых в возрасте 25 - 29 и 30 - 35 лет, привитых против кори, краснухи и эпидемического паротита, характеризуют состояние специфического иммунитета среди молодого взрослого населения, в том числе при краснухе - женщин детородного возраста.

По результатам обследования взрослых в возрасте 40 лет и старше (доноры, без учета прививочного анамнеза) проводится оценка фактической защищенности взрослого населения от кори, краснухи и эпидемического паротита.

По результатам серологического обследования детей в возрасте 1 - 2 года, 3 - 4 года и 16 - 17 лет проводится оценка уровня иммунитета к полиомиелиту в ближайшие сроки после вакцинации и ревакцинации полиомиелитной вакциной, у взрослых - фактического состояния иммунитета к полиомиелиту в возрастных группах 20 - 29 лет, 30 лет и старше.

По результатам серологического обследования детей в возрасте 3 - 4 года и 16 - 17 лет, а также взрослых и медицинских работников в возрасте 20 - 29 лет, 30 - 39 лет и 40 - 49 лет проводится оценка уровня, иммунитета к гепатиту В.

5.9. По усмотрению специалистов, осуществляющих государственный санитарно-эпидемиологический надзор, серологическое обследование при рассматриваемых инфекциях может быть проведено и в других возрастных и профессиональных группах.

6.2. Для оценки фактической привитости и защищенности детей и взрослых от дифтерии и столбняка сыворотку крови исследуют параллельно с дифтерийным и столбнячным антигенными диагностикумами. Защищенными от этих инфекций являются лица, в сыворотках крови которых определяются антитоксические антитела в титре 1:20 и выше.

6.3. При оценке уровня поствакцинального противококлюшного иммунитета, защищенными от коклюша являются лица, в сыворотках крови которых определяются агглютинины в титре 1:160 и выше.

6.4. Серопозитивными к вирусам кори, краснухи и эпидемического паротита являются лица, в сыворотках крови которых определяются специфические антитела на уровне, указанном в соответствующих инструкциях к тест-системам.

6.5. При оценке уровня поствакцинального иммунитета к вирусу гепатита В защищенными являются лица, в сыворотке крови которых определяются антитела к HBsAg в концентрации 10 МЕ/л и более.

6.6. О напряженности коллективного иммунитета к полиомиелиту и качестве вакцинопрофилактики можно судить на основании трех показателей:

• удельный вес лиц, серопозитивных к вирусам полиомиелита типов 1, 2 и 3 (серопозитивными считаются сыворотки, в которых титр антител равен или выше 1:8; удельный вес серопозитивных результатов рассчитывается на всю группу обследованных сывороток);

• удельный вес лиц, серонегативных к вирусам полиомиелита типов 1, 2 и 3 (серонегативными считаются сыворотки, в которых в разведении 1:8 отсутствуют антитела к одному из типов полиовируса; удельный вес серонегативных результатов рассчитывается на всю группу обследованных сывороток);

• удельный вес серонегативных лиц (отсутствие антител ко всем трем типам вируса) считаются лица, в сыворотках у которых отсутствуют антитела ко все трем типам вируса полиомиелита.

Показателем напряженности коллективного иммунитета к полиомиелиту является средняя геометрическая величина титра антител, которая рассчитывается только для группы сывороток, имеющих антитела к соответствующему серотипу полиовируса в титре 1:8 и выше (прилож. 3).

6.7. Результаты серологического обследования контингентов фиксируются в рабочих журналах лабораторий с указанием населенного пункта, организации, фамилии, инициалов, возраста обследуемого и титра антител. Результаты также вносятся в учетные формы (историю развития ребенка (ф. № 112/у), амбулаторную карту больного (ф. № 025/у), карту профилактических прививок (ф. № 063/-у), прививочный сертификат и иные учетные формы.

6.8. Выявление в каждой обследуемой группе детей и подростков не более 5 % лиц с титром дифтерийных и столбнячных антител менее 1:20 и не более 10 % лиц с отсутствием защитных титров дифтерийных и столбнячных антител в группе взрослых служит показателем достаточной защищенности от дифтерии и столбняка.

6.9. Критерием эпидемиологического благополучия при коклюше следует считать выявление не более 10 % лиц в обследуемой группе детей с уровнем антител менее 1:160.

6.11. Среди привитых против эпидемического паротита доля серонегативных не должна превышать 10 %.

6.12. Выявление в каждой обследуемой группе не более 10 % серонегативных к каждому из трех серотипов вируса полиомиелита служит показателем достаточной защищенности от полиомиелита.

6.13. Среди привитых против гепатита В процент лиц с концентрацией антител менее 10 МЕ/л не должен превышать 10 %.

• более 5 % лиц среди детей и подростков и более 10 % лиц среди взрослых с титром дифтерийных и столбнячных антител ниже защитного уровня;

• более 10 % лиц с титром противококлюшных антител ниже защитного уровня;

• более 7 % лиц серонегативных к вирусу кори и краснухе;

• более 10 % серонегативных среди привитых против эпидемического паротита;

• более 10 % лиц, серонегативных к каждому из трех серотипов вируса полиомиелита;

• более 10 % лиц, серонегативных к вирусу гепатита В, с концентрацией антител к HBsAg менее 10 МЕ/л

• провести анализ прививочной документации на выявленных серонегативных лиц для установления факта наличия прививки - сопоставить сведения о прививках во всех учетных формах (карта профилактических прививок (ф. № 063/у), история развития ребенка (ф. № 112/у), амбулаторная карта больного (ф. № 025/у), рабочие журналы и прочие);

• оценить условия хранения и транспортирования вакцин, порядок проведения иммунизации;

• дополнительно проверить состояние иммунитета к дифтерии, столбняку, коклюшу, кори, краснухе, эпидемическому паротиту, полиомиелиту и гепатиту В у лиц того же возраста в количестве не менее 100 человек, но в 2 других коллективах той же организации здравоохранения, где выявлен высокий удельный вес серонегативных лиц;

• привить выявленных серонегативных лиц в соответствии с действующими нормативными документами.

6.15. Если после дополнительного обследования количество незащищенных к этим инфекциям будет превышать приведенные критерии, следует провести проверку наличия прививок у лиц тех же возрастных групп с высокой долей серонегативных, медицинское обслуживание которых осуществляется данной организацией здравоохранения с целью установления фальсификации прививок. Выявленных непривитых лиц привить в соответствии с действующими нормативными документами.

6.16. Материалы серологического мониторинга состояния коллективного иммунитета обобщаются по организациям разного типа, поликлиникам, району, городу (районному центру) и субъекту Российской Федерации в целом (прилож. 2, табл. 3, 4, 5, 6). Далее по каждой инфекции результаты серологического обследования сопоставляют с показателями заболеваемости и уровнем охвата прививками, что позволит подтвердить официальные данные об иммунизации населения или выявить несоответствие охвата прививками уровню коллективного иммунитета.

6.17. Динамическое слежение за состоянием иммунитета населения к инфекциям, управляемым средствами специфической профилактики, позволяет своевременно установить признаки эпидемиологического неблагополучия. Прогноз эпидемиологической ситуации по каждой из наблюдаемых инфекций считается неудовлетворительным, если выявляется тенденция к увеличению доли серонегативных.

6.18. При выявлении на какой-либо территории первых прогностических признаков, свидетельствующих о приближении ухудшения эпидситуации по любой из рассматриваемых инфекций, принимаются управленческие решения, направленные на увеличение уровня иммунной прослойки среди населения.

1. Техника взятия и первичная обработка крови

Капиллярную кровь берут из пальца в асептических условиях. Перед взятием крови кисть руки пациента согревают горячей водой, затем насухо вытирают чистым полотенцем. Палец, протерев 70 ° -м спиртом, прокалывают стерильным скарификатором одноразового пользования. Кровь в объеме 1,0 - 1,5 мл собирают непосредственно через край стерильной одноразовой центрифужной пробирки с пробкой (или в специальные микропробирки для взятия капиллярной крови). После взятия крови место укола смазывают 5 %-м раствором йода.

Пробирку следует пронумеровать и приложить к ней этикетку с указанием регистрационного номера, фамилии, инициалов, даты взятия крови.

Для получения сывороток пробирку с кровью ставят в кабинете, где проводился забор крови, в наклонном (под углом 10 - 20°) положении при комнатной температуре на 20 - 30 мин для образования сгустка, после чего пробирку с кровью встряхивают для отделения сгустка от стенки пробирки.

Составляется список обследованных лиц, в котором указываются город (район), номер детского дошкольного учреждения, группы, школы, класса, номер среднего специального учреждения, группы, название вуза, факультета, группы, регистрационный номер, фамилия, имя пациента, дата рождения, дата прививок против дифтерии, столбняка, кори, краснухи, эпидемического паротита, полиомиелита и гепатита В, дата взятия крови, подпись ответственного лица.

Пробирки вместе со списками направляют в клинико-диагностическую лабораторию ЛПО, где пробирки с кровью оставляют на ночь в холодильнике при температуре 4 - 8 °С.

После отделения сыворотки от сгустка (пробирки обводят по внутренней поверхности стерильной пастеровской пипеткой) ее центрифугируют при 1000 - 1200 об./мин в течение 15 - 20 мин. Затем сыворотку осторожно переливают или отсасывают пипеткой с грушей в стерильные центрифужные (пластиковые) пробирки или эппендорфы с обязательным переносом на них этикетки с соответствующей пробирки.

2. Транспортирование образцов сыворотки (крови)

Перед транспортированием собранного материала из района обследования очень важно принять меры предосторожности: проверить наличие собранной информации, прочно закрыть пробирки пробкой, расположить пробы согласно их номерам и пр. На месте сбора следует хранить списки обследованных лиц. Для транспортирования сыворотки крови используют термоконтейнеры (сумки холодильники). При транспортировании и хранении крови в зимнее время года необходимо создать условия, при которых не происходит её замораживание.

При пересылке проб железнодорожным или воздушным транспортом лаборатории необходимо известить (по телефону, телеграммой) о номере поезда (рейса), дате и времени отправки и прибытия, количестве проб и пр.

[youtube.player]

*Импакт фактор за 2018 г. по данным РИНЦ

Журнал входит в Перечень рецензируемых научных изданий ВАК.

Читайте в новом номере

Антропонозные вирусные инфекции с аэрозольным механизмом передачи составляют многочисленную группу. Это такие инфекции, как корь, краснуха, эпидемический паротит и ветряная оспа. В настоящее время эти инфекции все чаще встречаются у взрослых и протекают у них тяжелее, чем у детей. Вирусные инфекции, особенно вовлекающие в патологический процесс кожу, могут послужить триггером для запуска или фактором обострения аллергопатологии.
Цель исследования: проанализировать напряженность популяционного иммунитета к вирусу кори, краснухи, эпидемического паротита и ветряной оспы на примере 93 здоровых взрослых в возрасте 18–30 лет.
Материал и методы: обследованы 93 случайно выбранных условно здоровых человека в возрасте 18–30 лет. У всех пациентов была исследована сыворотка крови с определением защитных уровней антител к вирусам кори, краснухи, эпидемического паротита и ветряной оспы методом иммуноферментного анализа с использованием тест-систем (Россия).
Результаты исследования: большинство обследованных имели защитные уровни антител: против вируса краснухи 96%, против ветряной оспы 87%, против эпидемического паротита 87%, что может говорить об эффективности вакцинопрофилактики или о перенесенной ранее инфекции. Средний уровень специфических антител к вирусам краснухи, эпидемического паротита и ветряной оспы в индикаторной группе (18–30 лет) превышает установленные защитные уровни антител. В отношении кори 56% обследованных оказались серонегативными и еще 13% имели следы специфических антител, но ниже защитного уровня. Таким образом, 68% обследованных оказались не защищенными от вируса кори. Доля восприимчивых к кори составила в среднем 68%, что не соответствует критерию эпидемического благополучия для этой инфекции.
Заключение: полученные результаты свидетельствуют, что обследованная группа имеет низкую восприимчивость к вирусу краснухи, паротита и ветряной оспы. Лица, не защищенные от кори, составляют группу высокого риска инфицирования и распространения инфекции.

Ключевые слова: заболеваемость, корь, краснуха, эпидемический паротит, ветряная оспа, антитела, вакцинопрофилактика, популяционный иммунитет, серологический мониторинг.

Для цитирования: Топтыгина А.П., Клыкова Т.Г., Смердова М.А., Зеткин А.Ю. Оценка напряженности популяционного иммунитета к вирусам кори, краснухи, эпидемического паротита и ветряной оспы у здоровых взрослых. РМЖ. 2019;3:36-39.

Herd immunity to measles, rubella, mumps, and chickenpox in healthy adults

A.P. Toptygina 1,2 , T.G. Klykova 3 , M.A. Smerdova 1 , A.Yu. Zetkin 3

1 G.N.Gabrichevsky Research Institute for Epidemiology and Microbiology, Moscow
2 M.V. Lomonosov Moscow State University
3 Main Center of State Sanitary and Epidemiological Supervision (of special purpose) of the Ministry of Defense of the Russian Federation, Moscow

Anthroponotic viral infections with aerosol transmission are a large nosologic group. Among them are measles, rubella, mumps, and chickenpox. Currently, these infections are common in adults who are more likely than children to have severe symptoms. Viral infections especially those involving skin may trigger or exacerbate allergic disorders.
Aim: to analyze herd immunity to measles, rubella, mumps, and chickenpox in 93 healthy individuals aged 18–30 years.
Patients and Methods: 93 accidentally enrolled healthy individuals aged 18–30 years were examined. Blood serums were examined for protective antibodies against measles, rubella, mumps, and chickenpox viruses by ELISA using relevant test systems.
Results: protective levels of antibodies against rubella, chickenpox, and mumps were detected in most individuals (96%, 87% and 87%, respectively) thus indicating the efficacy of vaccination or prior infection. Average levels of specific antibodies against rubella, mumps, and chickenpox were higher than protective levels. 56% of individuals were found to be seronegative for measles and 13% had residual specific antibodies less than protective levels. Therefore, 68% had no protection against measles. On average, 68% of individuals were susceptible to measles. This rate does not satisfy the criterion of epidemiological welfare.
Conclusion: our findings demonstrate that this group of individuals has low susceptibility to rubella, mumps, and chickenpox. Individuals without protection from measles have high risk of the infection and spread of the infection.

Keywords: incidence, measles, rubella, mumps, chickenpox, antibodies, vaccination, herd immunity, serological monitoring.
For citation: Toptygina A.P., Klykova T.G., Smerdova M.A., Zetkin A.Yu. Herd immunity to measles, rubella, mumps, and chickenpox in healthy adults. RMJ. 2019;3:36–39.

В статье представлены результаты исследования, посвященного анализу напряженности популяционного иммунитета к вирусу кори, краснухи, эпидемического паротита и ветряной оспы у взрослых.

Введение

Материал и методы

Результаты и обсуждение

Заключение

Только для зарегистрированных пользователей

[youtube.player]

Аннотация научной статьи по фундаментальной медицине, автор научной работы — Чеботарева Ирина Викторовна, Северская Наталья Викторовна

Рост заболеваемости корью среди взрослого населения в последние годы поставил вопрос о необходимости вакцинации взрослого населения, в том числе медработников. Для выявления лиц, восприимчивых к вирусу кори , предложено определение антител класса IgG к вирусу кори .

Похожие темы научных работ по фундаментальной медицине , автор научной работы — Чеботарева Ирина Викторовна, Северская Наталья Викторовна

Russian clinical laboratory diagnostics. 2016; 61(9)

Сравнительный анализ уровня АТ к ЦМВ в крови не выявил различий между мужчинами и женщинами. Из 870 образцов плазмы непривитых доноров в 98 случаях (10,8±1,0%) содержание АТ к ЦМВ составило от 10,0 до 19,9 РЕ/мл, в 45 (5,3±0,5%) - более 20 РЕ/мл, что является достаточным для использования их при производстве препарата Мегавир. Содержание в плазме АТ к ЦМВ более 10 РЕ/мл чаще обнаруживается у доноров в возрасте от 30 до 45 лет, что позволяет рекомендовать использовать их плазму для производства специфического иммуноглобулина.

Нами установлено, что все ЦМВ-серонегативные доноры являются и ПЦР-негативными; доля таких доноров составляет 25-30%. Среди остальных 70-75% доноров (ЦМВ-серопозитивных) при исследовании методом ПЦР в 15% случаев в крови была обнаружена ДНК ЦМВ. Эти данные свидетельствуют о необходимости уделять особое внимание тщательному отбору сырья с применением метода генотести-рования минипулов донорской плазмы.

Исследования авидности IgG-антител в донорской плазме со специфической активностью антител к ЦМВ не менее 10 РЕ/мл показали, что из 40 образцов плазмы в 9 случаях (23%) обнаруживался низкий индекс авидности. Поэтому при производстве специфического иммуноглобулина в качестве второго этапа скрининга сырья нами предусмотрено определение индекса авидности в высокотитражных пробах плазмы.

Полученные нами результаты подтверждают имеющиеся данные о сниженной противовирусной резистентности у лиц с 0(1) группой крови: низкое содержание анти-ЦМВ антител у доноров с 0(1) группой крови встречается в 2 раза чаще, чем у лиц с другими группами крови системы АВ0, а из 106 доноров с первой группой крови минимальная активность АТ к ЦМВ (3,5±0,9 РЕ/мл) отмечена у 62 (58%) доноров.

Mycoplasmagenitalium является причиной 10-35% случаев негонококковых, нехламидийных уретритов (НГНХУ). У женщин инфекция, вызванная M. genitalium ассоциирована с цервицитами и воспалительными заболеваниями органов малого таза. В настоящее время одной из наиболее серьезных проблем является появление и распространение штаммов M. genitalium, устойчивых к препаратам выбора - макролидам. В Европейских странах доля таких штаммов M. genitalium варьирует от 18 до 80%, что приводит к формированию хронического рецидивирующего процесса и необходимости изменения тактики лечения. Обнаружение устойчивых к макролидам штаммов M. genitalium до начала или после окончания лечения требует применения альтернативных схем лечения с использованием фторхинолонов (моксифлоксацина).

Устойчивость M. genitalium к действию макролидов обусловлена появлением мутаций в V домене гена 23S рРНК, главным образом в положениях 2058, 2059 и 2062 (нумерация по Escherichia coli). Разработанные на сегодняшний день методики выявления мутантных штаммов включают различные варианты пост-амплификационного этапа исследования, что затрудняет их использование в рутинной лабораторной практике особенно при скрининговых исследованиях. Для

этих целей была разработана методика на основе мультиплексной ПЦР в реальном времени с модифицированными генотип-специфическими гибридизационными зондами, позволяющая одновременно выявлять наличие ДНК M. genita-lium в количественном формате и дифференцировать мутант-ный генотип от дикого. С помощью разработанной методики было исследовано 393 образцов биологического материала от пациентов, инфицированных M. genitalium. В 21 (5,3%) образце были выявлены мутантные штаммы M. genitalium. Последующее секвенирование продуктов амплификации фрагмента гена 23S рРНК подтвердило наличие мутаций устойчивости к макролидам: 13 - А2059G, 5 - А2058G, 1 -А2058Т, 1 - А2058С и 1 - А2062G.

Внедрение разработанной методики в лабораторную практику позволит изучать распространенность мутантных генотипов M. genitalium и корректировать тактику лечения пациентов при выявлении мутантного штамма.

Рост заболеваемости корью среди взрослого населения в последние годы поставил вопрос о необходимости вакцинации взрослого населения, в том числе медработников. Для выявления лиц, восприимчивых к вирусу кори, предложено определение антител класса IgG к вирусу кори.

Цель: оценить напряженность иммунитета к вирусу кори у сотрудников клиники по уровню антител класса IgG.

Уровень антител ниже порогового значения (0,18 МЕ/ мл) выявлен у 28/467 (6%) обследованных, из них у троих -неопределенный (0,12-0,18 МЕ/мл). Наиболее часто низкий уровень антител IgG встречался в группе лиц моложе 40 лет (20/86; 23%). В группе 41-50 лет - низкий уровень IgG наблюдался у 8/128 (6%) обследованных. Среди лиц старше 50 лет низкий уровень IgG встретился только у одного (1/253; 0,4%).

У 6% обследованных уровень антител IgG к вирусу кори ниже рекомендованного. Наиболее часто отсутствие иммунного ответа зарегистрировано у лиц моложе 40 лет (23%), что указывает на необходимость обследования с целью последующей вакцинации этой возрастной группы.

Проведение микробиологического мониторинга в учреждении родовспоможения является неотъемлемой частью противоэпидемических мероприятий. Разнообразие циркулирующей микрофлоры позволяет прогнозировать развитие тех или иных форм ГСИ среди новорожденных.

Цель исследования: изучение распространения & epider-таШ (MRSE) среди новорожденных. Противоэпидемические мероприятия.

За 2014-2015 гг. обследовано бактериологически 63 новорожденных. Отобрано 315 проб. Анализ антибиотикорези-стентности проведен с помощью программы WHONET.

Ежемесячно, выборочно, проводится лабораторное обследование 5 новорожденных 1-5 суток жизни. Это ново-

[youtube.player]

Полный текст:

105064, Москва, Малый Казенный переулок, 5а; 119991, Москва, ул. Трубецкая, 8, стр. 2, тел.: (495) 917-41-49

105064, Москва, Малый Казенный переулок, 5а; 119991, Москва, ул. Трубецкая, 8, стр. 2, тел.: (495) 916-22-03

Журавлев Павел Иванович – аспирант лаборатории вакцинопрофилактики и иммунотерапии.

105064, Москва, Малый Казенный переулок, 5а, тел.: (962) 939-76-98

105077, Москва, ул. 11-я Парковая, 32; 125993, Москва, ул. Тверская, 11, тел.: (499) 750-01-11

Полищук Валентина Борисовна – кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник лаборатории вакцинопрофилактики и иммунотерапии.

105064, Москва, Малый Казенный переулок, 5а, тел.: (495) 917-41-49

Шмитько Анна Дмитриевна – кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник лаборатории вакцинопрофилактики и иммунотерапии.

105064, Москва, Малый Казенный переулок, 5а

Пахомов Дмитрий Владимирович – кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник лаборатории вакцинопрофилактики и иммунотерапии.

105064, Москва, Малый Казенный переулок, 5а, тел.: (495)917-41-49

Хромова Екатерина Александровна – кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник лаборатории вакцинопрофилактики и иммунотерапии.

105064, Москва, Малый Казенный переулок, 5а, тел.: (495)917-41-49

Васильева Галина Витальевна – младший научный сотрудник лаборатории вакцинопрофилактики и иммунотерапии.

105064, Москва, Малый Казенный переулок, 5а, тел.: (495) 917-41-49

Тихонова Ирина Александровна – врач-эпидемиолог.

105077, Москва, ул. 11-я Парковая, 32, тел.: (499) 750-01-11

Рыжов Алексей Анатольевич – младший научный сотрудник лаборатории вакцинопрофилактики и иммунотерапии.

105064, Москва, Малый Казенный переулок, 5а, тел.: (495) 917-41-49

Благовидов Дмитрий Алексеевич – младший научный сотрудник лаборатории иммунотерапии и вакцинопрофилактики аллергических заболеваний.

105064, Москва, Малый Казенный переулок, 5а, тел.: (963) 782-35-23

Костинов Антон Михайлович – студент IV курса.

119991, Москва, Ленинские горы, 1,тел.: (916) 618-81-05

1. Костинов М.П., Балаболкин И.И., Игнатьева Г.В., Садыкова Д.К. Особенности клинического течения поствакцинального периода и формирования противокоревого иммунитета у детей с аллергическими заболеваниями. Педиатрия. Журнал им. Г.Н.Сперанского. 1989; 68 (9): 33–38.

2. Костинов М.П., Гервазиева В.Б., Балаболкин И.И. Иммунологическая реактивность детей с аллергическими заболеваниями при коревом вакцинальном процессе. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1990; 67 (3): 81–84.

3. Костинов М.П., Озерецковский Н.А., ред. Клинико-иммунологическая эффективность иммунобиологических препаратов: Справочник. М.: Миклош; 2004.

4. Соловьева И.Л. Костинов М.П., Кусельман А.И. Особенности вакцинации детей с измененным преморбидным фоном против гепатита В, кори, эпидемического паротита. Ульяновск: УлГУ; 2006.

5. Полищук В.Б., Рыжов А.А., Костинов М.П. и др. Состояние противокоревого иммунитета у пациентов листа ожидания трансплантации легких. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2016; (4): 55–60.

6. Костинов М.П., Балаболкин И.И., Гервазиева В.Б., Овсянникова И.Г. Значение исследования общего иммуноглобулина Е при иммунизации живой коревой вакциной детей с аллергическими заболеваниями. Иммунология. 1990; 11 (1): 41–44.

7. Костинов М.П., ред. Вакцинация детей с нарушенным состоянием здоровья: Практическое руководство для врачей. 1-е изд. М.: Медицина для всех; 1996.

8. Костинов М.П., ред. Новое в клинике, диагностике и вакцинопрофилактике управляемых инфекций. М.: Медицина; 1997.

9. Соловьева И.Л., Лежень Е.М., Кусельман А.И. и др. Вакцинация часто болеющих детей отечественной паротитно-коревой вакциной. Ульяновский медико-биологический журнал. 2013; (2): 20–25.

10. Костинов М.П., ред. Вакцинация детей с нарушенным состоянием здоровья: практическое руководство для врачей. 4-е изд. М.: 4Мпресс; 2013.

11. Ибрагимова Е.М., Юминова Н.В., Костинов М.П. и др. Некоторые аспекты изучения популяционного иммунитета к кори, эпидемическому паротиту и краснухе на территории Приморского края. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2005; 3 (22): 21–23.

12. Костинов М.П., Шмитько А.Д., Соловьева И.Л. и др. Защищены ли от кори дети с аллергическими заболеваниями и часто болеющие после ревакцинации. Педиатрия. Журнал им. Г.Н.Сперанского. 2017; 96 (4): 140–145. DOI: 10.24110/0031-403X-2017-96-4-140-145.

13. Костинов М.П., Шмитько А.Д., Соловьева И.Л. и др. Необходима ли третья доза вакцины против кори – взгляд иммунолога. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2016; (5): 88–94.

14. Костинов М.П., ред. Вакцинация детей с нарушенным состоянием здоровья: Практическое руководство для врачей. 2-е изд. М.: Медицина для всех; 2000.

15. Костинов М.П., Зверев В.В., ред. Вакцинация против гепатита В, гриппа и краснухи взрослых пациентов с хроническими заболеваниями: практическое руководство. М.: МДВ, 2009.

16. Зверев В.В., Хаитов Р.М., ред. Вакцины и вакцинация: Национальное руководство. Кратк. изд. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2014.

17. Хаитов Р.М., Ильина Н.И., ред. Аллергология и иммунология: Национальное руководство. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2014.

18. Костинов М.П., ред. Иммунокоррекция в педиатрии: Практическое руководство для врачей. М.: Медицина для всех; 1997.

19. Соловьева И.Л., Кусельман А.И., Костинов М.П., Анохина Е.В. Применение иммуномодулирующих препаратов в подготовке детей к вакцинации. Аллергология и иммунология. 2007; 8 (2): 207–208.

20. Афиногенова В.П., Лукачев И.В., Костинов М.П. Иммунотерапия: механизм действия и клиническое применение иммунокорригирующих препаратов. Лечащий врач. 2010; 4: 9–19.

21. Костинов М.П., Соловьева И.Л., ред. Иммуномодуляторы и вакцинация. М.: 4Мпресс; 2013.

22. Чучалин А.Г., Хохлова А.Л., ред. Федеральное руководство по использованию лекарственных средств (формулярная система). Вып. XVIII. М.: Видокс; 2017.

23. Костинов М.П., Кулакова Н.А. Иммуномодуляция при вакцинации больных ХОБЛ. Lambert Academic Publishing; 2018.

24. Костинов М.П., Лавров В.Ф. Вакцины нового поколения в профилактике инфекционных заболеваний. 2-е изд., доп. М.: МДВ; 2010.

[youtube.player]