Паразитарные болезни рептилий васильев

"Криптоспоридиоз у рептилий: современное состояние проблемы"

Д. Б. Васильев(1), Е. В. Блинова(2)

1Московский зоопарк, 2РУДН, кафедра ветеринарной патологии
Криптоспоридиоз – протозойная болезнь с подострым или хроническим течением, характеризующаяся дисфункцией желудка и тонкого кишечника и выделением ооцист. Болезнь медленно прогрессирует и почти всегда приводит к гибели чувствительных животных, у других видов (возможно, параспецифических хозяев) проявляясь, как оппортунистическая инвазия, развивающаяся в комплексе с другими инфекционными и паразитарными патогенами. Криптоспоридиоз вызывают протозойные паразиты рода Cryptosporidium, которых раньше считали кокцидиями, близкими к семейству Eimeriidae. В настоящее время их статус остается спорным, так как недавно проведенный филогенетический анализ олигонуклеотидных последовательностей рибосомальных РНК криптоспоридий, полученных с помощью ПЦР, показал их близкое родство с грегаринами беспозвоночных (Carreno et al., 1999). Правда, в более поздней работе, выполненной также с помощью ПЦР, но на других праймерах, было показано сходство криптоспоридий с эймериями, хотя сравнительный анализ с грегаринами в этом исследовании не проводили (Sulaiman et al., 2002).
В пределах рода систематика криптоспоридий основана на морфологических, генетических и биологических особенностях. Различные виды отличаются по размерам и форме ооцист, которые могут быть круглыми или овальными, диаметром от 3 до 8 мкм. Кроме того, криптоспоридии отличаются по своей гостальной специфичности (т.е. паразитируют у разных видов животных), органной локализации, патогенности, длительности прелатентного периода и интенсивности выделения ооцист. Генетические различия определяются олигонуклеотидными последовательностями хорошо охарактеризованных генов. В будущем, также как в ситуации с хламидиями, генетические тесты могут выявить значительно большее видовое разнообразие в этой группе, чем предполагалось ранее. Это может объяснить, почему криптоспоридиоз, хорошо диагностируемый и успешно поддающийся терапии в одной группе животных, значительно хуже диагностируется и лечится у других животных того же вида.
До недавнего времени выделяли 8 валидных видов криптоспоридий, за последний год этот список расширился до 12 видов (см. таблицу 1).
Такие виды, как C. muris, С. canis, C. felis и C. meleagridis относят к оппортунистическим патогенам человека. Некоторые виды криптоспоридий являются высоко специфичными, другие поражают много видов животных, третьи проявляют патогенность только у иммунодепрессивных особей. C. serpentis до недавнего времени считали единственным видом, инвазирующим рептилий (Cranfield et al., 1999). Сейчас принято считать, что у рептилий паразитирует 3 вида криптоспоридий: C. serpentis, C. saurophilum (Koudela, Modry, 1998) и C. muris (Egyed et al., 2003). Первые два специфичны для змей и ящериц соответственно, второй вид также инвазирует черепах. Выделение ооцист С. muris у рептилий, питающихся мышами, считают псевдопаразитизмом. Во всяком случае, клинического криптоспоридиоза, вызванного этим видом, у рептилий пока не наблюдали
Таблица 1. Валидные виды криптоспоридий, паразитирующие на позвоночных (по T.K. Graczyk, 2004)
Вид криптоспоридий Дефинитивные хозяева
C. parvum Человек, новорожденные мыши, жвачные
C. hominis Человек
C. muris Грызуны, человек
C. andersoni Жвачные
C. felis Кошки, человек
C. canis Собаки, человек
C. wrairi Морские свинки
C. meleagridis Индюки, человек
C. baileyi Птицы
C. nasorum Рыбы
C. serpentis Змеи
C. saurophilum Ящерицы, черепахи

Таблица 2. Методы диагностики криптоспоридиоза
Метод Окраска Примечания
Окрашеный мазок фекалий Кислый фуксин/брилиантовый зеленыйКислый фуксин/метиленовый синий PAS Исследовать крупные порции фекалий
Смыв из желудка AFSМодификация по Файту Ауроамино Не позже 3 дней после кормленияТест в 3 раза чувствительнее
IFA (Merifleur test) Окраска иммунофлуоресцентными антителами В 16 раз чувствительнее
ELISA (Alexon-Trend) - Разработан только для змей

Терапия и профилактика
Строго говоря, успешная терапия криптоспоридиоза не разработана, хотя для этих целей пытались использовать множество препаратов. Лечение может приводить к купированию клинического заболевания и выделения ооцист, но, по-видимому, не вызывает полной элиминации паразита. Для терапии разные авторы предлагали галофугинон, спирамицин, бисептол, толтразурил (Cranfield et al., 1999), паромомицин (Pare et al., 1997), азитромицин, празиквантел и миразид (Allam, Shehab, 2002; Kadappu et al., 2002), бензидол – 4,9-хинон (Kayser et al., 2002), нитазоксанид (Amadi et al., 2002) и гипериммунное коровье молозиво (Graczyk et al., 1999, 2000). В настоящее время криптоспоридиоз у рептилий лечат, в основном, паромомицином. В гуманной медицине его назначают при лечении амебиаза и цестодозов. По фармакокинетике этот препарат близок к неомицину, то есть почти не всасывается в кишечнике, но при язвенном колите возможно его ото- и нефротоксическое системное действие. На ранних стадиях криптоспоридиоза при сильном увеличении доз (до 300 и даже 800 мг/кг в сутки) возможно улучшение, хотя этот препарат, также как и остальные, не профилактирует это заболевание и не препятствует его распространению. Бисептол при длительном курсовом применении (до месяца и более) также вызывает временное улучшение, не препятствуя выделению ооцист. Ремиссия может длиться от нескольких месяцев до двух и более лет. Более успешно действует разработанная нами схема с комбинацией спирамицина, бисептола и метронидазола. Складывается впечатление, что антибиотики, возможно, влияют не на самих криптоспоридий, а на секундарную микрофлору, купируя диарейный синдром и регургитацию. Кокцидиостатики, применяемые для терапии птиц, такие как галофуразона гидробромид или толтразурил (Байкокс), имеют очень небольшую терапевтическую широту. Байкокс иногда назначают черепахам, у которых он не дает побочных эффектов, в случае обычных кокцидиозов, чаще с положительным результатом. Для змей же этот препарат высоко токсичен и вызывает у них острый гепатит и смерть. Наиболее успешной на сегодняшний день оказалась терапия гипериммунным коровьим молозивом. Этот препарат, разработанный для лечения криптоспоридиоза человека, получают от отелившихся коров, иммунизированных к C. parvum в стельный период. Для рептилий доза 10 мл/кг дается внутрь каждые 7 дней. Курс составляет 6 доз. Лечение было высоко эффективным для змей и варанов, у которых после лечения был получен отрицательный результат при окраске фекалий имунофлуоресцентными антителами. Менее впечатляющие результаты были достигнуты при лечении гекконов и черепах (Cranfield et al., 1999). Рекомендации по лечению см. в таблице 3.
Таблица 3. Рекомендации по лечению криптоспоридиоза у рептилий.
Препараты Схема применения Авторы
Бисептол
Спирамицин 40 мг/кг ежедневно, 4 недели300 000 ЕД/кг ежедневно, 2 недели Васильев, 2003
Паромомицин 100-360 мг/кг, ежедневно, 2 недели 300-800 мг/кг ежедневно (для гекконов) Cranfield et al., 1999 Coke, Tristan, 1998
HBC (гипериммунное коровье молозиво) 10 мл п/о,1 раз в неделю х 6 Graczyk et al., 1998
Кокцидиостатики
Толтразурил (байкокс) 15 мг/кг, каждые 48 часов х 3 (для черепах)4,5 мг/кг, каждые 24 часа х 2 (для всех рептилий) Frye, Williams, 1995Schoemaker, 2001
Галофугинон ? Cranfield et al., 1999 Токсичны для змей
Галофуразона гидробромид ? Cranfield et al., 1999 Токсичны для змей

Для многих пресмыкающихся эндопаразиты – один из основных факторов, вызывающих дизадаптацию и гибель в первые недели содержания. При стрессах, отловах, транспортировке, некомпетентной передержке, нарушении температурного режима у таких животных возможна суперинвазия и, вследствие нее, накопление токсичных продуктов жизнедеятельности гельминтов, что приводит к быстрой гибели животных. Большинство эндопаразитарных заболеваний протекает субклинически. Без копрологических исследований нативных мазков диагноз поставить затруднительно. Большую опасность представляют гельминты с прямым циклом развития. Их концентрация значительно увеличивается за счет закрытости системы террариума.

В экспозициях зоопарков смертность от гельминтозов составляет около 13 % (Barnard, 1994), уступая по количеству погибших животных лишь алиментарным факторам, таким как жировые дистрофии. Поэтому тема гельминтозов, их лечения и профилактики является крайне важной для герпетокультуры в целом.

Материалы и методы

Результаты и обсуждение

Наиболее распространенными гельминтозами у обследованных животных оказались заражение оксиурами, аскаридами и представителями подотряда спирурат, а также различные внекишечные нематодозы.

Патогенность оксиур невелика и при умеренной интенсивности инвазии не вызывает серьезных проблем. Наиболее часто в нашей практике мы сталкивались с оксиурами у растительноядных видов черепах, хамелеонов, агам и игуан. Все виды оксиур являются геогельминтами, имеют прямой жизненный цикл, и их полное развитие занимает не более 40 дней (Васильев, 2000). В неволе происходит многократное заражение животных гельминтами, что приводит к накоплению их биомассы в организме хозяина. Количество паразитов в одном животном может превышать несколько тысяч особей.

Аскариды, характерные для хищников, выявлены у хамелеонов, варанов и змей. Заражение происходит при заглатывании промежуточных хозяев – лягушек, ящериц, мелких грызунов. У видов, инвазирующих хамелеонов, развитие личинки происходит в беспозвоночных (Chabaud, 1962). Заражение аскаридами вызывает воспаление в местах локализации, анемию, иногда серозный целомит. Основным методом диагностики аскаридозов является микроскопия, так как яйца всех аскарид имеют типичную для них морфологию.

Для представителей подотряда спирурат рептилии могут являться окончательными и резервуарными хозяевами. Промежуточными хозяевами этих биогельминтов служат ракообразные и насекомые. Взрослые спирураты, в основном, локализуются в стенке желудка, проксимальном отделе кишечника (Jones, 1995). Наиболее часто мы встречали спирурат у варанов, сцинков, водных черепах и других плотоядных рептилий.

Внекишечные нематодозы характерны для животных, полученных из природы, так как переносятся комарами и клещами.

Нематоды циркуляторного русла, представители подотряда Filariata, встречаются у тропических змей, ящериц и черепах. Для мадагаскарских хамелеонов специфичен такой вид, как Filaria furcata. Заражение происходит только трансмиссивно при помощи комаров Culicidae, а также клещей Hirstiella trombidiformis. Взрослые филярии локализуются под кожей, где их патогенное влияние незначительно. Также бывает комбинированная локализация гельминтов, когда головным концом паразит находится под кожей, а хвостовым – в органе (Васильев, 2005). Такую локализацию следует учитывать при хирургическом удалении гельминтов. Их следует удалять, не повреждая покровов, иначе содержимое целома проникнет под кожу, что приведет к гибели животного вследствие интоксикации. Для этого необходимо пальпаторно определить локализацию гельминта, сделать разрез в нескольких миллиметрах от этого места, сдвинуть кожу в сторону гельминта и извлечь его с помощью иглы от шприца и пинцета (рис. 1).

Рис. 1. Извлечение филярии с подкожной локализацией.

Легочные нематоды в нашей практике были обнаружены только у одной особи йеменского хамелеона (Chameleo calyptratus), которая содержалась совместно с животными, полученными из природы, в общем террариуме.

Заражение цестодами не представляет большой опасности при террариумном содержании ввиду отсутствия промежуточного хозяина. Случаи цестодозов были отмечены нами только у Phelsuma grandis, полученных из Мадагаскара.

В результате проведенной работы было показано, что наиболее частыми из обнаруженных гельминтных инвазий являются оксиуры (около 60 % от общего количества). Все обследованные животные, полученные из природы, были заражены филяриями, что составило около 15 % от общего количества случаев (табл. 1). У всех животных с филяриозами гельминтов удаляли хирургическим путем, при этом у каждого животного было обнаружено от 2 до 17 филярий с подкожной локализацией.

Таблица 1. Соотношение видов гельминтных инвазий у обследованных рептилий

Группа гельминтов	Хозяева	Частота встречаемости, % от общего кол-ва случаев
Оксиуры	Растительноядные черепахи, хамелеоны, агамы, игуаны	55-60 %
Аскариды	Хамелеоны, вараны, змеи	10-12 %
Спирураты	Вараны, сцинки, водные черепахи	8-12 %
Филярии	Змеи, ящерицы, черепахи из природы	15-17 %
Легочные нематоды	Хамелеоны	Крайне редко
Цестоды	Гекконы	Крайне редко

В многовидовых коллекциях необходимо учитывать пути и способы заражения животных гельминтами. Рептилии, получающие живые корма из природы, черепахи, для которых характерна копрофагия, будут инвазированы на сто процентов, тогда как змеи, рожденные в неволе, содержащиеся отдельно и получающие в качестве корма лабораторных грызунов, заражаются в исключительных случаях. По нашим данным, животные, полученные из природы, всегда являются носителями от одной до семи различных групп гельминтов.

Таблица 2. Препараты, применяемые при различных гельминтозах

Антигельминтный

препаратДозировка, способ и кратность введенияПоказания к применениюПримечанияАльбендазол30-50 мг/кг, п/о, повтор через месяцПри аскаридозах, оксиурозах, стронгилятозах, стронгилоидозах, спируратозахКроме некоторых спируратозовФенбендазол50-100 мг/мл, п/о, каждые 10 дней,

4 разаУ черепах20-50 мг/кг, п/о,

внутримышечно, повтор через

2 неделиКапилляриозы, микрофилярии, нематоды циркуляторного руслаПредварительно извлечь подкожных филярийЛевамизол5-10 мг/кг,

интрацеломически, повтор через

2 неделиДля черепах применять ограниченно

Важнейшую роль в комплексе противопаразитарных мероприятий, кроме собственно дегельминтизации, является дезинвазия террариумов. Для их обработки применяется кипяток, где это возможно (камни, коряги и пр.) и Vircon S 2%-й раствор с 24-часовой экспозицией для всех остальных декоративных частей и всего террариума. При данной обработке погибают абсолютно все яйца гельминтов и дегельминтизацию можно считать выполненной.

Заключение

1. Васильев Д. Б. Ветеринарная герпетология: ящерицы. – М.: Проект-Ф, 2005.
2. Васильев Д. Б. Паразитарные болезни рептилий (гельминтозы и пентастомозы, их диагностика, терапия и профилактика). Автореф. дисс. на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук, М., 2000. – С. 1-24.
3. Васильев Д. Б. Паразитарные болезни рептилий в условиях многовидовой ассоциации зоопарка. Материалы XI ММВК, 2003.
4. Barnard S., Upton S. A veterinary guide to the parasites of reptiles. Krieger Publishing Co, FL, 1994.
5. Chabaud A., Brygoo E., Petter A. Cycle evolutif de l’Ascaride des Cameleons malgaches. Bull. Soc. Zool. France, 1962.
6. Jones H. Pathology associated with Physalopterid larvae (Nematoda: Spirurida) in the gastric tissues of Australian reptiles. J. Wildl. Dis., vol. 31, No 3, 1995.

Номер работы: 369755

Без учета скидки. Вы получаете файл формата pdf

Вы получаете первые страницы диссертации в формате txt

Просмотр 1 страницы = 3 руб

Оглавление диссертации:

Этому вопросу посвящено большое количество исследований. Сведения о гельминтах некоторых видов рептилий содержатся в классических работах Рудольфи (Rudolph! C A . , 1819), Дюжардена (Dujardin F., 1843) и особенно, Лейкарта (Leuckart R., 1848; 1854). На территории России изучение гельминтов пресмыкающихся началось во второй половине X I X столетия и связано с именем А.П. Федченко. Собранный им материал был обработан Краббе (X. Краббе, 1879) и Линстов (Linstow О., 1883). После 20-х годов такие

2.2. Биология гельминтов и их патогенное влияние на организм хозяев Определенные исследования по гельминтофауне рептилий и отчасти по биологии этих гельминтов направленно проводились с начала становления общей гельминтологии как науки. Однако углубленное изучение гельминтозов рептилий началось сравнительно недавно. Рептилии среди всех позвоночных животных всегда имели наименьшее хозяйственное значение и в лабораторных исследованиях им уделялось меньшее внимание, чем, к примеру, амфибиям. Поэ

Коллекция рептилий Московского зоопарка входит в число трех крупнейших в мире и включает в себя 221 вид и 828 экземпляров представителей всех современных отрядов пресмыкающихся, за исключением клювоголовых. В такой сложной ассоциации содержатся животные, разведенные в других зоопарках и собственный подрощенный молодняк, а также животные, поступившие по обмену или купленные у зооторговых объединений. Это могут быть рептилии, адаптированные в неволе и не- -40давно отловленные в природе, поступи

3.3. Гельминты и гельминтозы черных новогвинейских питонов (Morelia boeleni) в Московском зоопарке Для исследования гельминтофауны, биологии возбудителей, их патогенного влияния на хозяев, терапии гельминтозов и их комплексной профилактики была отобрана группа редких питонов - Morelia boeleni. Для выбора именно этой группы змей для эксперимента имелось несколько оснований. Во-первых, данный вид питонов является редким эндемиком острова Новая Гвинея, имеет высокую стоимость на международном з

3.3.1. Видовой состав возбудителей гельминтозов черных новогвинейских питонов Московский зоопарк содержит черных питонов в коллекции с 1991 года. За этот период пало 14 экземпляров, 8 из них были исследованы методом полного гельминтологического вскрытия. Продолжительность жизни в неволе у этого вида колебалась в пределах от 2 мес. до 5,5 лет, хотя для большинства экземпляров благополучно перенесших транспортировку, прошедших первичную адаптацию и получивших комплекс лечебно-профилактических

. Об обнаружении цестод у черных питонов (Morelia boeleni) в литературе до сих пор не сообщалось. Впервые цестоды в количестве около 100 экз. были обнаружены нами в тонком кишечнике М. boeleni

24.01.96 г. Цестоды имели характерные шарообразные сколексы, но целостность стробил не сохранилась, так как материал был переморожен. В дальнейшем около 4-5 фрагментов стробил были обнаружены в фекалиях у питона, прожившего перед этим в неволе более 4-х лет (с

1.2 Нематоды - Ophidascaris papuanus. Herpetostrongylus pythonis и Capillaria longispicula Аскариоз. вызываемый Ophidascaris papuanus Систематическое положение Ophidascaris papuanus Данный вид описал Sprent J.F.A. (1973) вместе с другим sp. nov.

- Ophidascaris niuginiensis от аметистового питона (Morelia amethistina, в ранней литературе Liasis amethistinus), отловленных на территории Папуа, т.е. в восточной половине острова Новая Гвинея. Для описания указанного вида автор использовал

Пентастомы в количестве 2-10 особей были обнаружены нами у 8 черных питонов. В нашей стране исследования биологии этих паразитов вообще не проводились, а в зарубежной литературе данные о пентастомах, обнаруженных у рептилий, содержащихся в неволе, встречаются лишь в нескольких литературных источниках: Bams v., Komalik F. (1963); Bugnion E. (1910); Wyman J. (1865); Swierstra D. et al. (1959); Hett M . (1915); Herman C. (1939); Pugsley S. (1989); Scolombe J.O., Budd J. -85(1973). Поэтому мы в

Определение видовой принадлежности пентастом. обнаруженных у черных питонов (МогеИа boeleni^ Определение до рода проводилось нами по ключам Селфа (Self J., 1969). Характерные морфологические признаки пентастом рода Armillifer: Тело цилиндрическое, головной конец слегка уплощен и закруглен на дорзальной стороне. Семенник одинарный. Вульва открывается на последнем сегменте и не отделена от ануса полной кольцевидной структурой. Абдоминапьные кольца хорошо различимы, тело имеет ясно выраженную к

3.3.3 Диагностика и терапия паразитарных болезней питонов

Таким образом, на сегодняшний день проблема криптоспоридиоза затронула практически все сферы зооторговли. Связано это не только с тем, что в настоящее время животные, завозимые в нашу страну, не проверяются на криптоспоридиоз, как на особо опасное заболевание для рептилий, но и с низким уровнем знаний об этой патологии, как среди любителей, так и среди профессионалов. Достаточно много людей, содержащих рептилий, имеют поверхностное представление о путях передачи, клинических признаках и прогнозах этого заболевания. До сих пор не редко можно встретить мнение, что это все не серьезно и криптоспоридиоз является выдумкой врачей-герпетологов.

Подобное легкомысленное отношение к проблеме может стать не только трагедией, например, для ребенка, которому купили змею или ящерицу в качестве домашнего питомца, но и привести к серьезному ущербу для коллекции террариумиста-профессионала. Попадание зараженного криптоспоридиозом животного (даже носителя, без клинических проявлений болезни) в крупную коллекцию рептилий, может грозить потерей всех чувствительных особей, а те, кто станет носителем криптоспоридиоза, навсегда будут вычеркнуты из племенного разведения. По крайней мере, добросовестный заводчик, который дорожит своей репутацией, не станет держать в коллекции больных змей, а тем более пускать их в разведение. В противном случае, заболеваемость, даже среди разведенных в неволе животных, будет расти в геометрической прогрессии.

Типичный вид эублефара, больного криптоспоридиозом

В основном это оральный путь заражения: инфицированная еда - сверчки, (которые ели фекалии зараженной рептилии) или вода. Животные могут заразиться, облизывая зараженный грунт, декорации, фекалии от инфицированных особей. Из-за того, что ооцисты имеют мельчайшие размеры (4-6 мкм), они могут распространяться и по воздуху (во время уборки террариума).

Вертикальный путь передачи возбудителя (от матери- потомству) невозможен. Но яйца могут быть заражены во время откладки!

В большинстве случаев, коллекция становится инфицированной, как только в нее попадает новое животное, без правильно проведенного карантина и обследования. Перемещение и распространение инфекции внутри коллекции уже происходит при участии самого кипера, в процессе использования общих инструментов для всех животных, даже если все гигиенические протоколы выполняются.

Впервые криптоспоридии были обнаружены в 1907 г. Е. Tyzzer в слизистой оболочке желудка у лабораторной мыши без признаков патологии желудочно-кишечного тракта. Данный микроорганизм считался безвредным комменсалом в течение более 50 лет.

В 1955 г. был зарегистрирован первый случай заболевания криптоспоридиозом у животных – криптоспоридии были выделены при фатальном гастроэнтерите у домашних птиц. Начиная с 1970 г. криптоспоридии были обнаружены в желудочно-кишечном тракте (ЖКТ) и/или дыхательных путях большинства млекопитающих, птиц, рыб и рептилий.

У рептилий криптоспоридиоз был описан в 1925 году (Triffit).

Род Cryptosporidium (от греч. скрытая спора) принадлежит к семейству Cryptosporidiidae, подтипу Apicomplexa (в связи с тем, что спорозоиты имеют апикальные комплексы), классу Sporozoasida, подклассу Coccidiasina.

Криптоспоридии являются облигатными паразитами, инфицирующими микроворсинки слизистых оболочек ЖКТ и дыхательных путей животных и человека.

Первоначально считалось, что различные криптоспоридии строго специфичны определенному виду позвоночных или человеку, в связи с чем, их классификация была построена на основании инфицируемых ими животных. Однако в дальнейшем опыты по перекрестному инфицированию показали, что различные криптоспоридии гораздо менее специфичны, чем предполагалось ранее.

В связи с этим в 1984 г. ранее существовавшие виды (21 вид) были объединены в 4 вида.

А в настоящее время род Cryptosporidium официально включает 17видов (Enemark 23 April 2012):

• C. andersoni крс
• C. muris мыши
• C. parvum млекопитающие
• C. saurophilum ящерицы
• C. scopthalmi рыбы
• C. baileyi птицы
• C. serpentis рептилии
• C. bovis крс
• C. suis свиньи
• C. canis собаки
• C. felis кошки
• C. wrairi морские свинки
• C galli фазаны, куры
• C. hominis человек
• C. ryanae жвачные
• C. meleagridis индюки
• C. molnari рыбы

Однако, в процессе генетических исследований, было выделено 25 видов, но некоторые из них так и не были признаны как отдельный вид.

Типичные клинические симптомы криптоспоридиоза проявляются у змей и связаны с потерей веса и периодическим срыгиванием через 12-48 часов после приема пищи. Спустя несколько недель, а иногда и месяцев после начала регургитаций, у змей развивается характерное вздутие тела в области желудка. Оно связано с пролиферативными изменениями в желудке и тонком кишечнике и частичной или полной обструкцией просвета ЖКТ, что и вызывает регургитацию. Увеличение стенки желудка вызвано гиперплазией слизистой оболочки и гипертрофией туники. Слизистая отечна, подвержена слизистому набуханию с ненормальным увеличением и расширением продольных складок, покрытых вязкой слизью. Обычны петехии или полосчатые кровоизлияния по границе складки. Собственная кишечная пластинка инфильтрирована гетерофилами, лимфоцитами и макрофагами.

У змей с сопутствующей ретровирусной инфекцией, амебиазом, бактериальным энтеритом или находящихся под постоянным стрессом, клиника криптоспоридиоза проявляется быстрее, и болезнь протекает более остро и злокачественно.

У некоторых ящериц описан также внекишечный криптоспоридиоз, когда развивающиеся стадии паразитов были обнаружены в слюнных железах, эпителии почек и евстахиевых трубах (Frye et al., 1999). Во всех случаях, описанных этими авторами, криптоспоридий не выявили в кишечнике. Известно уже несколько документированных клинических случаев, когда у зеленых игуан с клиникой экссудативного отита в аспирате из тимпанической полости обнаруживали криптоспоридий (Fitzgerald et al., 1998)

Согласно рекомендациям наших зарубежных коллег, для предотвращения появления криптоспоридиоза в коллекциях необходимы изоляция инфицированных и карантинирование новых животных, тщательное соблюдение чистоты и графика дезинфекций. Недопущение скученного содержания и стрессовых ситуаций.

Получайте животных из надежных источников. Избегайте покупки животных в больших сетевых зоомагазинах, на фермах или у поставщиков, которые имеют дело с очень объемными партиями животных. Для них рептилии - это просто товар.

Все вновь полученные животные должны пройти карантин в течение не менее 90 дней, содержаться в отдельном от основных животных помещении. В течение всего карантина нужно особенно следить за чистотой в террариумах.

Тем не менее, необходимо отметить, как это ни печально, но самым лучшим для всей коллекции будет гуманная эвтаназия любой рептилии с положительным результатом анализа на криптоспоридиоз. Все террариумы и клетки вместе с иным инвентарем от инфицированных животных должны быть уничтожены или тщательно подвергнуты дезинфекции, чтобы не допустить заражения других животных коллекции.

До сих пор не разработана схема, которая приводит к полному излечению от криптоспоридиоза. Но есть достаточно обнадеживающие результаты использования некоторых препаратов, которые позволяют предотвратить размножение криптоспоридий до того количества, которое может вызвать клиническую картину заболевания. Существующие методы лечения оказались более эффективными у змей и в меньшей степени у ящериц и черепах.

В нашей практике есть достаточное количество рептилий, которые получали лечение от криптоспоридиоза, и это значительно продлило им жизнь (у некоторых, на несколько лет), но, не смотря на отсутствие клинических симптомов, все эти животные являются латентными носителями криптоспоридиоза и способны заразить других рептилий.

Правда, латентных носителей уже можно не лечить, а просто изолировать от других рептилий. Известны случаи даже спонтанного излечения змей и ящериц, имевших клинический криптоспоридиоз с синдромом регургитации или диареи.

Однако, конечно, что касается лечить или не лечить животное, которое содержится не в коллекции - решает владелец.

Наиболее важной является процедура строгого пространственного разделения животных. Инфицированные животные должны содержаться отдельно, в террариумах, удобных для ежедневной уборки. В качестве грунта можно использовать бумажные полотенца, поилки должны меняться каждый день. Фактор стресса необходимо минимизировать, чтобы стабилизировать иммунную систему. Некоторые зарубежные коллеги советуют использовать иммуномодуляторы, например: Zylexis, Инфузии и оральное введение протеиновых растворов, таких, как Bioserin, помогут предотвратить истощение.(Kornelis Biron, 2007)

Возможные секундарные инфекции или паразитарные инфекции должны быть пролечены, но только после постановки точного диагноза.

Антипротозойные препараты, такие как метронидазол (Metronidazole) и другие нитроимидазолы, макролиды, например азитромицин (Azithromycine), сульфаниламиды, толтразурил (Toltrazruile, Baycox), которые эффективны при кокцидиозах теплокровных - не показали достаточного эффекта.

Нитазоксанид (Nitazoxanide. Alinia), используемый в гуманной медицине, или галофугинон (Halofuginone (Halocur), используемый при лечении сельскохозяйственных животных, имеют ряд побочных эффектов. Особенно, при лечении рептилий с ярко-выраженным клиническим течением криптоспоридиоза.

Антибиотики ряда аминогликозидов Паромомицин (Paromomycin (Humatin)), который применяют для лечения лейшманиоза человека, может привести к сокращению количества и иногда к полному прекращению выделения криптоспоридий у больных рептилий, без каких либо последствий для организма пациента.

Лечение гипериммунным коровьим молозивом, (препарат был разработан для лечения человека от криптоспоридиоза, получают от отелившихся коров, иммунизированных к C. parvum в стельный период), в некоторых случаях тоже является терапией выбора.

Это, что касается монотерапии криптоспоридиоза. Но, как правило, на практике нам приходится использовать сочетанную терапию (с применением нескольких препаратов), в том числе, параллельно использовать симптоматическую поддерживающую терапию (внутривенные инфузии и т.п.) Естественно терапия проводится с постоянным контролем количества криптоспоридий и конечно, общего состояния животного. Животное считается полностью выздоровевшим, если в течение 3 месяцев в кале не обнаруживается ни одной криптоспоридии (Васильев Д.Б.).

Разные виды рептилий реагируют на терапию очень индивидуально и могут плохо переносить некоторые препараты - это тоже необходимо учитывать и, в этом случае, обязательно требуется поддерживающая терапия и более пристальный контроль!

Результат терапии и выбор схемы лечения зависит от степени зараженности и от чувствительности конкретного вида к криптоспоридиозу.

Лечение должно проводиться только при возможности отдельного содержания больного животного и не допущении распространения заболевания на других рептилий. Если такой возможности нет, то мы советуем прибегнуть к эвтаназии. Так же стоит подумать об эвтаназии, если, несмотря на лечение, у животного сохраняются клинические признаки, так как болезнь приводит к сильному истощению и значительному ухудшению качества жизни.

При желудочной форме у змей материал для исследования собирают с помощью лаважа полости желудка, который проводит герпетолог через 1-3 дня после кормления животного. При кишечной форме, которая обычно бывает у ящериц и черепах, исследуют фекалии.

Обнаружить криптоспоридии в нативном мазке кала, довольно затруднительно, т.к. они имеют чрезвычайно малые размеры 4-6 мкм.

Образцы (фекалии, отрыгнутый пищевой объект, проба, полученная путем лаважа желудка), мы красим с помощью дифференциального набора для окрашивания кислотоустойчивых микроорганизмов по ц иль-Нильсону. Иногда требуется дополнительная подготовка образцов с помощью флотации.

Существуют так же непрямые методы исследования, такие как идентификация антигена клеточной стенки криптоспоридий или иммунофлуоресцентный тест или серологический метод - ELISA, но он является чувствительным только спустя 3 месяца после возможного инфицирования. Иммунохроматографические методы, используемые для диагностики криптоспоридиоза у сельскохозяйственных животных, не чувствительны в отношении криптоспоридий рептилий(Biron, 2007). Возможно также, гистологическое исследование образцов пораженной ткани, что достаточно сложно сделать у живого пациента, поэтому, данный метод чаще используют постмортально. Некоторые институты используют полимеразно-цепную реакцию (PCR), которая позволяет определить видовую принадлежность криптоспоридий с помощью выделения ДНК
Kornelis Biron, Tierarzt (DVM)

Криптоспоридии очень устойчивы и имеют высокую резистентность к внешним воздействиям. В течение многих месяцев ооцисты остаются опасны. Обычные бытовые дезинфектанты не эффективны. Замораживание никак не влияет на криптоспоридии, и они сохраняют инвазионность.

Ооцисты C. parvum способны выживать и сохранять инвазионность в воде при температуре 15°С - более 7 месяцев, в моче человека – более 63 дней. В террариумах, по-видимому, они сохраняют жизнеспособность не менее 3 месяцев. Они, также как ооцисты других кокцидий, весьма устойчивы к активному хлору и йоду (Backer, 2002). Аммонийные соединения действуют на ооцисты в концентрации не менее 0,15 М, т.е. в разведении 1:2 – 1:5 по препарату.

Ооцисты чувствительны к высушиванию и температурам выше 65°С.. Эффективны горячий пар, формалин, 5-10% аммиак. Frye (1991) называет глутаровый альдегид одним из наиболее эффективных средств. Стерилизация при 200° в течение 2 часов, а также, препараты содержащие производные фенола, п-хлор-м-крезол, иногда в комбинации с сероуглеродом и хлороформом (Neopredisan-135-1, 4% раствор и экспозиция не менее 4 часов) так же весьма эффективны. Мы применяем четвертичные аммониевые и перекисные соединения в двойной концентрации рабочего раствора с экспозицией не менее 24 часов, и затем не используем террариумы в течение 2 месяцев. Декорированные фанерные ящики лучше вообще не использовать вторично.