Взятие и пересылка материала при паразитарных болезнях

При подозрении на сибирскую язву патологический матери­ал немедленно направляют в лабораторию для исследования. От трупа животного берут кровь из сосудов уха или из других пери­ферических сосудов (общие положения, см. с. 69). Чтобы кровь не попала на землю, подкладывают ванночку или лист железа. Место надреза тщательно дезинфицируют, а после взятия крови прижигают огнем или раскаленным металлическим предметом.

Надрезают сосуд стерильным инструментом. Кровь на предмет­ное стекло наносят толстой каплей или толстым слоем, высуши­вают на воздухе (не фиксировать!). Из крови каждого павшего животного готовят 2-4 мазка; складывают их попарно (кровью внутрь), проложив между ними отрезки спичек; тщательно упа­ковывают в полиэтиленовую пленку или пергаментную бумагу, перевязывают шпагатом, упаковывают в металлический, затем в деревянный ящик и опечатывают.

В лабораторию можно посылать ухо павшего животного, отре­занное с той стороны, на которой лежал труп. Перед взятием ухо перевязывают двумя лигатурами у основания и отрезают между перевязками. Место разреза прижигают раскаленным металли­ческим предметом. Упаковку уха для пересылки производят, как описано выше.

Подозрение на сибирскую язву у свиней чаще всего возникает во время вскрытия или ветсаносмотра туши при наличии при­пухлости и воспалительных явлений в области глотки и гортани. Дальнейшее вскрытие или ветсаносмотр немедленно прекраща­ют, для исследования берут участки отечной соединительной ткани, заглоточные и брыжеечные лимфоузлы, а также кусочки селезенки. Упаковывают этот материал в марлю или полотно, пропитанное 3%-ным раствором фенола, обертывают пергамент­ной бумагой, пленкой или клеенкой и помещают в стеклянный сосуд (лучше с притертой пробкой). Пробку заливают сургучом или парафином, сосуд упаковывают в металлический или дере­вянный ящик, перевязывают его шпагатом и опечатывают.

Для исследования на сибирскую язву кожевенного сырья по­сылают кусочки кожи размером 10×10 см.

На взятый патологический материал оформляют препроводи­тельный документ.

Бактериоскопическое исследование на сибирскую язву.При поступлении материала в лабораторию сразу же проводят бакте­риоскопию мазков крови и на основании результатов дают пред­варительный ответ. Мазки из подозрительного материала окра­шивают по Граму и на капсулы (по Михину, Ольту и другими способами, см. с. 13). Сибиреязвенная бацилла окрашивается по Граму положительно. В мазках из крови или селезенки пав­шего животного обнаруживают прямые палочки с обрубленными концами и с капсулами. Расположены они одиночно, попарно или короткими цепочками. В мазках из культур палочки имеют слегка закругленные концы. Могут также образовываться длин­ные нити бацилл.

Эпизоотологическое обследование неблагополучного хозяйства.Краткая примерная схема эпизоотологического обследования не­благополучного по сибирской язве хозяйства (пункта): 1) наиме­нование хозяйства, пункта; 2) количество животных (по видам); 3) размещение, содержание, уход, кормление, водопой, эксплу­атация животных; 4) откуда поступает скот для комплектования хозяйства; 5) связь с соседними пунктами и их благополучие по заразным болезням; 6) было ли данное хозяйство благополучным ранее по заразным болезням; 7) был ли поставлен диагноз и какими методами; 8) характеристика данной вспышкизаразной болезни: когда появились первые случаи болезни; вид поражен­ных животных; предполагаемые источники возбудителя инфек­ции; как протекала болезнь в стаде (по дням и месяцам); 9) про­тивоэпизоотические мероприятия, проведенные в хозяйстве с момента возникновения болезни до дня обследования; их эф­фективность; 10) заключение.

План мероприятий по ликвидации инфекционной болезни со­ставляют по следующей форме:

№ п/п

Наименование мероприятий

Время выполнения

Ответственный за выполнение

Кто контролирует

Примечание

Примерные вопросы, которые нужно отразить в плане меро­приятий по ликвидации болезни: 1) меры по выявлению и устра­нению источника возбудителя инфекции и путей заноса его в хозяйство; 2) организация карантинно-ограничительных, меро­приятий, предусмотренных инструкцией при этой болезни; 3) когда и какие исследования животных должны проводиться; 4) изоляция больных и подозрительных по заболеванию живот­ных, лечение больных; 5) проведение прививок; б) сроки прове­дения механической очистки и дезинфекции; 7) закрепительные мероприятия перед снятием карантина.

Из лаборатории, куда был послан патологический материал (мазки крови), получен положительный ответ на сибирскую язву.

3 августа 1995 г. при осмотре коров (80 голов), совместно содержавшихся с павшей ранее, выявлено 2 коровы, подозрительные по заболеванию сибирской язвой. Поголовье животных в КСП: крупного рогатого скота взрослых — 220 гол., молодняка — 360, лошадей взрослых — 14, молодняка — 19; индивидуальный сек­тор: крупного рогатого скота взрослых — 21, молодняка — 24 гол.

Задание:провести эпизоотологическое обследование, составить акт; разрабо­тать план мероприятий по ликвидации болезни; написать проект решения адми­нистрации района о наложении карантина.

Взятие материала при паразитарных болезнях

От больных животных берут кровь (в период наиболее выраженных симптомов болезни) к делают мазки обычно из первой капли крови (в ней больше паразитов). Мазки можно готовить и из крови трупов. В лабораторию вместе с мазками посылают в пробирке клещей, собранных с разных участков тела и фиксированных в 70%-ном спирте. Внутрь пробирки вкладывают этикетки из плотной бумаги с обозначением наименования хозяйства, даты и др. Нередко при тех или иных паразитарных болезнях в лабораторию направляют мазки-отпечатки из разных органов, а также сами пораженные органы. Для исследования на гельминты в лабораторию доставляют пробы кала (завернутые в пергаментную бумагу); паразитических червей консервируют в 70%-ном спирте или в жидкости Барбагалло (3%-ный раствор формалина на изотоническом растворе поваренной соли, 30 мл формалина, 9 г поваренной соли, 1000 мл дистиллированной воды) и помещают в пробирки или флаконы.

Для исключения паразитов кожи берут соскобы, чаще на границе со здоровой тканью с мелкими корочками и патогистологическое. Консервируют обычным способом и помещают в пробирки для отправки в лабораторию.

АНАТОМИЯ ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ

• ВВЕДЕНИЕ (9)
• АППАРАТ ДВИЖЕНИЯ (46)
  • КОСТНАЯ СИСТЕМА, ИЛИ СИСТЕМА СКЕЛЕТА (2)
  • ОСЕВОЙ СКЕЛЕТ (7)
  • ЧЕРЕП, ИЛИ СКЕЛЕТ ГОЛОВЫ (7)
  • СКЕЛЕТ ГРУДНОЙ КОНЕЧНОСТИ (6)
  • СКЕЛЕТ ТАЗОВОЙ КОНЕЧНОСТИ (5)
  • СОЕДИНЕНИЕ КОСТЕЙ СКЕЛЕТА (14)
  • СКЕЛЕТНАЯ МЫШЕЧНАЯ СИСТЕМА (4)

ПАТОЛОГО-АНАТОМИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА БОЛЕЗНЕЙ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА

• АНАТОМО-ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ (15)
• ПАТОЛОГО-АНАТОМИЧЕСКОЕ ВСКРЫТИЕ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА (20)
• ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ И ПЕРЕСЫЛКИ ПАТОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА ДЛЯ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ (6)
• ДОКУМЕНТАЦИЯ ПАТОЛОГОАНАТОМИЧЕСКОГО ВСКРЫТИЯ (8)
• МЕТОДЫ СОХРАНЕНИЯ ОРГАНОВ (7)
• ИНФЕКЦИОННЫЕ БОЛЕЗНИ, ВЫЗЫВАЕМЫЕ МИКРОБАМИ (17)
• КЛОСТРИДИОЗЫ (7)
• БОЛЕЗНИ НОВОРОЖДЕННЫХ ТЕЛЯТ (7)
• БОЛЕЗНИ, ВЫЗЫВАЕМЫЕ ВИРУСАМИ (17)
• БОЛЕЗНИ, ВЫЗЫВАЕМЫЕ МИКОПЛАЗМАМИ, РИККЕТСИЯМИ И ХЛАМИДИЯМИ (4)
• БОЛЕЗНИ, ВЫЗЫВАЕМЫЕ ПРОСТЕЙШИМИ (11)
• ГЕЛЬМИНТОЗЫ (16)
• ЛЕЙКОЗЫ (2)
• УРОДСТВА (1)
• НЕЗАРАЗНЫЕ БОЛЕЗНИ (84)
  • ГИПОВИТАМИНОЗЫ (5)
  • ЭНДЕМИЧЕСКИЕ БОЛЕЗНИ (10)
  • ОТРАВЛЕНИЯ (15)
  • БОЛЕЗНИ ОРГАНОВ ПИЩЕВАРЕНИЯ (9)
  • БОЛЕЗНИ ПЕЧЕНИ (7)
  • БОЛЕЗНИ ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ И ПЛЕВРЫ (2)
  • ПНЕВМОНИИ (4)
  • БОЛЕЗНИ СЕРДЕЧНО-СОСУДИСТОЙ СИСТЕМЫ (5)
  • БОЛЕЗНИ ОРГАНОВ КРОВЕТВОРЕНИЯ И ИММУННОЙ СИСТЕМЫ (5)
  • БОЛЕЗНИ МОЧЕПОЛОВОЙ СИСТЕМЫ (5)
  • БОЛЕЗНИ ЦЕНТРАЛЬНОЙ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ (10)
• ФИЗИОПРОФИЛАКТИКА (3)

Последние записи

ВНУТРЕННИЕ НЕЗАРАЗНЫЕ БОЛЕЗНИ СЕЛЬСКО-ХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

• ТЕОРЕТИЧЕСКИЕ И ОРГАНИЗАЦИОННЫЕ ОСНОВЫ ОБЩЕЙ И ЧАСТНОЙ ПРОФИЛАКТИКИ (9)
• ОСНОВЫ ОБЩЕЙ ТЕРАПИИ (17)
• СЕРДЕЧНО-СОСУДИСТЫЕ БОЛЕЗНИ (25)
• БОЛЕЗНИ ДЫХАТЕЛЬНОЙ СИСТЕМЫ (25)
• БОЛЕЗНИ ПИЩЕВАРИТЕЛЬНОЙ СИСТЕМЫ (61)
  • БОЛЕЗНИ РТА, ГЛОТКИ, ПИЩЕВОДА (11)
  • БОЛЕЗНИ ПРЕДЖЕЛУДКОВ ЖВАЧНЫХ (13)
  • ЗАБОЛЕВАНИЯ ПЕЧЕНИ (13)
• БОЛЕЗНИ МОЧЕВОЙ СИСТЕМЫ (17)
• БОЛЕЗНИ СИСТЕМЫ КРОВИ (12)
• НАРУШЕНИЯ ОБМЕНА ВЕЩЕСТВ (37)
• БОЛЕЗНИ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ (17)
• БОЛЕЗНИ МОЛОДНЯКА (15)
• БОЛЕЗНИ ПТИЦ (29)

ПОИСК ПО САЙТУ

КОРМЛЕНИЕ МОЛОДНЯКА КРС

ПРАКТИКУМ ПО ВЕТЕРИНАРНОЙ ПАТОЛОГИЧЕСКОЙ АНАТОМИИ И ВСКРЫТИЮ

• ВОСПАЛЕНИЕ (6)
• ПОСМЕРТНЫЕ ИЗМЕНЕНИЯ (1)
• РАССТРОЙСТВА ОБМЕНА ВЕЩЕСТВ В ТКАНЯХ (15)
• ПРИСПОСОБИТЕЛЬНЫЕ И ВОССТАНОВИТЕЛЬНЫЕ ПРОЦЕССЫ В ОРГАНИЗМЕ (5)
• РАССТРОЙСТВА КРОВООБРАЩЕНИЯ И ВОДНОГО ОБМЕНА (6)
• ОПУХОЛИ (11)
• НЕИНФЕКЦИОННЫЕ БОЛЕЗНИ (6)
• ГРИБКОВЫЕ ЗАБОЛЕВАНИЯ (5)
• ИНВАЗИОННЫЕ БОЛЕЗНИ (6)
• ВСКРЫТИЕ ТРУПОВ ЖИВОТНЫХ (13)
• ТЕХНИКА ИЗГОТОВЛЕНИЯ ГИСТОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ (3)

Глава 13. ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ ПАТОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА И ПЕРЕСЫЛКИ ЕГО ДЛЯ ЛАБОРАТОРНОГО ИССЛЕДОВАНИЯ

(Извлечение из Правил Главного управления ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР, утвержденных 24 июня 1971г.)

При необходимости определить или подтвердить причину заболевания или гибели животных (включая птиц, зверей, пчел, рыб), при подозрении на инфекционную или инвазионную болезнь или на отравление ветеринарный врач (фельдшер) обязан взять соответствующий патологический материал и направить его в ветеринарную лабораторию для исследования.

Во всех случаях взятия и пересылки материала специалист обязан руководствоваться изложенными ниже правилами, а также соответствующими инструкциями по борьбе с болезнями животных.

Взятие и пересылка патологического материала для бактериологического и вирусологического исследования. Патологический материал берут стерильными инструментами в стерильную посуду. Поверхность органа (ткани), от которого будут брать патологический материал, на месте разреза обжигают над пламенем или прижигают нагретой металлической пластинкой.

Патологический материал берут как можно раньше после смерти животного, особенно в теплое время года. При начавшемся разложении материал для исследования негоден.

В лабораторию материал отправляют в неконсервированном виде. Если доставить в лабораторию в течение ближайших 24—30 ч материал невозможно, то его консервируют.

Для бактериологического исследования патологический материал (органы или их части) консервируют в 30%-ном водном растворе химически чистого глицерина. Воду предварительно стерилизуют кипячением или автоклавированием в течение 30 мин. В качестве консерванта можно применять также стерильное вазелиновое масло. Материал заливают консервирующей жидкостью в количестве, в 4—5 раз превышающем его объем.

Материал, предназначенный для вирусологического исследования, консервируют в 30—50%-ном растворе химически чистого глицерина на физиологическом растворе поваренной соли. Физиологический раствор предварительно стерилизуют в автоклаве при 120 °С в течение 30 мин.

Небольшие трупы животных (поросята, ягнята, телята), а также трупы мелких животных посылают целыми в непроницаемой таре.

Трубчатые кости направляют целыми с неповрежденными концами. Предварительно их тщательно очищают от мышц и сухожилий и завертывают в марлю или полотно, смоченные дезинфицирующей жидкостью (5%-ный раствор карболовой кислоты). Кости можно также посыпать натрия хлоридом (поваренной солью) и завернуть в полотно или марлю.

Кишечник перед посылкой для бактериологического и вирусологического исследований освобождают от содержимого, а концы его перевязывают. На исследование посылают части кишечника с наиболее характерными патологическими изменениями. Помещают в банки с 30—40%-ным водным раствором глицерина или насыщенным водным раствором натрия хлорида. Объем консервирующей жидкости должен в 5—7 раз повышать объем взятого материала.

Кал для исследования отправляют в стерильных стаканах, пробирках или банках, которые закрывают пергаментной бумагой. От трупов животных кал можно послать в отрезке невскрытого кишечника, завязанного с обоих концов. В лабораторию кал должен быть доставлен не позднее 24 ч после взятия.

При посылке для исследования участков кожи берут наиболее пораженные части ее размером 10 х 10 см и кладут в стерильную, герметически закрывающуюся посуду.

Кровь, гной, слизь, мочу, желчь и другой жидкий патологический материал для бактериологического и вирусологического исследований посылают в запаянных пастеровских пипетках, стерильных пробирках или во флаконах, плотно закрытых стерильными резиновыми пробками.

Кроме того, выделения из различных полостей, естественных отверстий и др., предназначенные для микроскопического исследования (для обнаружения в них микробов, кровепаразитов и для определения лейкоцитарной формулы), посылают в виде мазков.

Предметные стекла кипятят в течение 10—15 мин в 1—2%-ном водном растворе соды, затем тщательно промывают чистой водой, насухо вытирают и помещают в раствор спирта и эфира, взятых в равных частях, где и хранят до употребления.

Кровь берут из вены ушной раковины или края верхушки уха, у птиц — с поверхности гребня или из подкрыльцовой вены. Шерсть на месте взятия крови выстригают, кожу протирают ватными тампонами, смоченными сначала спиртом и затем эфиром. Инструменты (иглы, скальпель) должны быть стерильными.

Первую каплю крови удаляют стерильной ватой (исключение делается при исследовании крови на пироплазмидозы, когда для мазка берут первую каплю крови), а следующую свободно выступившую каплю берут на предварительно подготовленное предметное стекло быстрым и легким прикосновением к капле поверхностью стекла. Затем стекло быстро поворачивают вверх каплей и удерживают между пальцами левой руки в горизонтальном положении. К левому краю капли прикасаются под углом 45° шлифованным краем другого предметного (или покровного) стекла. Как только капля равномерно распределится по ребру этого стекла, его быстро проводят по поверхности предметного стекла слева направо, не доводя до края на 0,5—1 см. Ширина мазков должна быть уже предметного стекла. Для каждого нового мазка берут свежую каплю крови.

Готовые мазки крови высушивают только на воздухе. В холодное время года мазки делают в теплом помещении или на стеклах, подогретых на крышке теплого стерилизатора.

Метод фиксации мазков зависит от цели исследования.

Правильно приготовленные мазки крови должны быть тонкими, равномерными и достаточной длины. На высушенных мазках и отпечатках острым предметом делают надпись с указанием номера или клички животного и даты приготовления мазка.

Мазки из тканей, гноя, органов и различных выделений готовят путем размазывания материала на предметном стекле стерильной палочкой или ребром другого предметного стекла до тонкого слоя. Частицы органов плотной консистенции, твердые узелки, а также вязкий материал заключают между двумя предметными стеклами и растирают. Затем стекла разъединяют, растаскивая их в противоположные стороны в горизонтальном направлении. Получаются два довольно тонких мазка. Иногда делают препараты-отпечатки. Для этого вырезанный острым скальпелем кусочек органа захватывают пинцетом и свободной поверхностью кусочка делают на стекле несколько тонких отпечатков.

Взятие материала для патологогистологического исследования. Материал берут от свежих трупов или убитых животных не позднее 12, а летом — 2—3 ч после смерти от тех органов или тканей, где обнаружены патологические изменения, а также из главнейших паренхиматозных органов. Из разных участков патологически измененных органов (тканей) вырезают небольшие тонкие (не более 1— 2 см толщиной) кусочки. Вместе с пораженными участками ткани захватывают и граничащую с ней нормальную ткань. При иссечении кусочка учитывают микроскопическое строение (структуру) того или иного органа (ткани). Так, кусочки из почки, надпочечника, лимфатического узла берут с таким расчетом, чтобы попадали оба слоя — корковый и мозговой; из головного мозга — серое и белое вещество; из селезенки — белую и красную пульпу; из легкого — части органа с бронхами и плеврой. Из сердца берут несколько кусочков: из мышцы правого и левого желудочков, правого и левого предсердий, папиллярных мышц и области клапанов. Из всех органов при иссечении захватывают и их капсулу. Из разных отделов желудочно-кишечного тракта вырезают небольшие кусочки размером 2 х 3 см и перед погружением в фиксирующую жидкость их растягивают на картон и прошивают белыми нитками.

Взятый материал помещают в фиксирующую жидкость (10%-ный водный раствор нейтрального формалина), объем которой в 4—5 раз превышает объем взятого материала. В холодное время года во избежание промерзания при пересылке материал, профилированный в формалине, перекладывают в 30—50%-ный раствор глицерина (приготовленный на 10%-ном растворе формалина), в 70%-ный спирт или в насыщенный раствор натрия хлорида.

Если формалина нет, то в качестве фиксирующей жидкости используют 96%-ный этиловый спирт или ацетон. При применении спирта толщина кусочков не должна превышать 0,5 см. Для гистохимических исследований патологический материал можно фиксировать также в жидкости Карнуа (спирт абсолютный — 60 мл, хлороформ — 30 мл и ледяная уксусная кислота — 10 мл) или в жидкости Буэна (концентрированная пикриновая кислота — 15 мл, формалин — 5 мл, ледяная уксусная кислота — 1 мл). Фиксирующую жидкость меняют каждые сутки до тех пор, пока она не станет прозрачной. Оптимальная температура фиксации 37 °С.

Патологический материал фиксируют в стеклянной или в крайнем случае в глиняной посуде.

На банку с кусочками органов и тканей наклеивают этикетку, на которой указывают номер или кличку животного и кому принадлежит, а внутрь ее опускают кусочек плотной бумаги или картона с написанным на нем простым (не химическим) карандашом номером животного.

Помещать в посуду несколько объектов исследования от разных животных можно только при том условии, если каждый из них завязывают в марлю вместе с отдельной этикеткой.

Упаковка и пересылка патологического материала. Трупы мелких животных, части трупов крупных животных и отдельные органы в свежем (нефиксированном) виде отправляют для исследования в лабораторию только с нарочным. Посылаемый материал, особенно от животных, подозрительных по заболеванию инфекционной болезнью, тщательно упаковывают в плотный деревянный или металлический ящик, чтобы предупредить возможность рассеивания возбудителя инфекции в пути. Перед упаковкой материал завертывают в холст или мешковину, смоченную дезинфицирующим раствором (фенольным креолином, лизолом, известковым молоком), обертывают целлофаном или полиэтиленовой пленкой и кладут в ящик со стружками, мякиной или опилками.

Части органов, жидкости, отправляемые в лабораторию почтой в фиксированном или консервированном виде, помещают в герметически закупоренную стеклянную посуду с притертой стеклянной, пластмассовой, резиновой или корковой пробкой. Пробку закрепляют проволокой или бечевкой и заливают менделеевской замазкой (сургучом, смолкой, парафином или воском), чтобы укупорка была непроницаемой для жидкости. Укупоренную посуду вкладывают в прочно сбитый ящик, плотно обкладывают ватой, паклей, стружками, опилками или другим упаковочным материалом.

Стеклянную посуду, в которой заключен посылаемый материал с подозрением на наличие особо опасных болезней (сап, сибирская язва, эмфизематозный карбункул, бруцеллез, туляремия, перипневмония крупного рогатого скота, чума крупного рогатого скота, чума свиней, псевдочума птиц, ящур, бешенство), обязательно упаковывают в металлическую коробку, которую запаивают, пломбируют или опечатывают, а затем упаковывают еще в деревянный ящик.

Если такой материал отправляют с нарочным, его кладут в стеклянную посуду, герметически закупоривают и помещают в деревянный ящик.

Взятие и отправка патологического материала при подозрении на отравление. Подозрение на отравление могут вызвать следующие признаки:

а) характерный запах содержимого желудка (горькоминдальный, чесночно-хлороформенный и т. п. при исключении запаха примененных лекарств);

б) окраска содержимого желудка: желтая (от азотной и пикриновой кислот, солей хрома), зеленая, синяя (от солей меди) или иного цвета;

в) кровянистое содержимое желудка;

г) подозрительные включения в содержимом желудка — белые кристаллы сулемы и стрихнина, нерастворившиеся белые кристаллы мышьяка;

д) набухшие, увеличенные, дряблые, легко разрывающиеся серо-желтой окраски и т. п. слизистая оболочка желудка, почки, сердце;

е) поражения начальных отделов пищеварительного тракта (ротовой полости, пищевода, желудка);

ж) изменение цвета и консистенции крови.

При подозрении на отравление в лабораторию направляют материал от трупов павших животных для химического и гистологического исследований. Одновременно с целью определения источника отравления посылают все корма (по 1 кг корма каждого вида), которые скармливали животным. Обязательно посылают остатки кормов из кормушки.

Для химического исследования в лабораторию посылают в отдельных банках следующий материал:

а) часть пищевода и пораженную часть желудка с содержимым (в количестве 0,5 кг), а от крупного и мелкого рогатого скота и верблюдов — часть пищевода, сычуга и небольшое количество содержимого из разных мест сычуга, рубца.

Желудок и его содержимое берут в следующем порядке.

При вскрытии трупа после осмотра внутренних органов перевязывают лигатурами пищевод и двенадцатиперстную кишку вблизи стенки желудка (по две лигатуры) и перерезают между ними. Желудок извлекают и кладут в кюветы, а затем вскрывают. Содержимое желудка предварительно (не выбирая из желудка) перемешивают (нельзя использовать металлические предметы), после чего осторожно, чтобы не загрязнить, берут часть его;

б) отрезок тонкого кишечника (длиной до 40 см) в наиболее пораженной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);

в) отрезок толстого кишечника ^длиной до 40 см) в наиболее пораженной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);

г) часть печени (0,5—1 кг) с желчным пузырем (от крупных животных), печень целиком (от мелких животных);

е) мочу в количестве 0,5 л;

ж) скелетную мускулатуру в количестве 0,5 кг.

Кроме того, в зависимости от особенностей предполагаемого отравления дополнительно посылают:

а) при подозрении на отравление через кожу (путем инъекции) — часть кожи, клетчатки и мышцы из места предполагаемого введения яда;

Отбор материала для прижизненной диагностики. В зависимости от вида инфекции у клинически больных животных берут соответствующий, специфический для данной болезни материал, соблюдая меры личной безопасности.

Секрет молочных желез служит объектом исследования при тех заболеваниях, при которых возбудитель активно выделяется с молоком (туберкулез, бруцеллез, сальмонеллез, мастит). У коров вымя обмывают теплой водой с мылом, соски обрабатывают 70%-м спиртом Первые струйки молока удаляют, в стерильные сосуды набирают 15. 20 мл секрета из первой и последней порций, полученных при выдаивании.

У овец и коз пробы получают путем пункции цистерны вымени Поле операции готовят у основания соска, стерильной иглой, соединенной со шприцем, делают пункцию, набирают в шприц секрет и переносят его в стерильные пробирки с резиновыми пробками.

Моча чаще всего служит объектом исследования при подозрении на лептоспироз. У коров и свиноматок мочу можно брать непосредственно из мочевого пузыря с помощью катетера или собирать при естественном мочеиспускании в чистые пробирки, банки. Легче всего мочу получать после утреннего подъема животных, а у свиней — в любое время дня после 1 . 2-часового лежания.

Кал берут из прямой кишки в стерильную посуду, которую закрывают плотной крышкой. При обнаружении на стенке прямой кишки слизи, утолщений или других патологических изменений дополнительно делают соскобы; их помещают в отдельную посуду.

Выделения из верхних дыхательных путей и ротовой полости собирают в посуду при естественном истечении или поступают так:

Крылья носа и переднюю часть носовых ходов обмывают водой, после чего выделения собирают стерильными тампонами из глубоких частей носа. Тампоны помещают в стерильные пробирки, содержащие по 0,5 мл стерильного физиологического раствора.

Содержимое синовиальных бурс и абсцессов берут следующим образом. Шерсть выстригают, кожный покров обрабатывают 70%-м спиртом и смазывают настойкой йода. Затем стерильным шприцем с иглой большого диаметра делают пункцию и переносят пунктат в стерильную пробирку с резиновой пробкой.

Материал из язв и ран получают методом соскоба на границе пораженной и здоровой тканей.

Волосы и участки кожи исследуют при кожных заболеваниях. При этом волосы выщипывают, а соскобы с кожи делают скальпелем на границе пораженной и здоровой тканей.

Кровь для серологических исследований берут в разгар заболевания, а в некоторых случаях повторно через 10. 20 дней по 10 мл от двух-трех больных животных в разные пробирки.

Отбор материала для посмертной диагностики. Патологический материал необходимо взять как можно раньше: не позднее 12ч после гибели животного зимой и 6 ч — в теплое время года, законсервировать или отправить в свежем виде. Аутолизированный пат-материал для выделения возбудителя непригоден. Для бактериологического исследования в лабораторию отправляют кусочки кожи, слизистых оболочек, паренхиматозных органов, трубчатую кость, спинной и головной мозг, лимфатические узлы' пробы жидкости из грудной и брюшной полостей, отрезок кишечника, изолированный лигатурами, плод, плодные оболочки и т. д. Пробы из каждого органа помещают в отдельную посуду и маркируют. В каждом случае необходимо брать тот материал, в котором можно обнаружить характерные для данной болезни изменения.

Для вирусологического исследования материалом могут служить:

Кровь или ее сыворотка, смывы из носоглотки и другие жидкости организма, стенки и содержимое афт, папулы (узелки), везикулы (серозные пузырьки), пустулы (гнойные пузырьки), кусочки головного мозга, печени, легких, селезенки или кусочки других органов и тканей, в которых вирус предполагаемого заболевания содержится в наибольшем количестве.

Для гистологического исследования патматериал берут только от свежих трупов. В лабораторию отправляют кусочки площадью 3. 4 см2, толщиной не более 1 см, при этом следят, чтобы в них вошли пораженные и граничащие с ними неизмененные участки ткани.

Поверхность органа или ткани трупа на участке, из которого предполагают брать пробу, очищают от загрязнений, обеззараживают спиртом, 3%-м раствором фенола или прижигают нагретой металлической пластинкой (шпателем). Материал берут стерильными инструментами и помещают в стерильную посуду (пенициллиновые флаконы, пробирки и другие стеклянные сосуды с резиновыми пробками). Жидкий патматериал (кровь, слизь мочу, желчь и т. д.) можно набирать в одноразовые шприцы или пастеровские пипетки, которые затем с обоих концов запаивают. Кроме того, различные выделения можно посылать в виде мазков или мазков-отпечатков, которые фиксируют на воздухе, заворачивают каждый в отдельности в пергаментную бумагу и маркируют.

Трупы мелких животных, части трупов крупных животных и отдельные органы в свежем виде направляют для исследования в лабораторию только нарочным. Посылаемый материал тщательно упаковывают в плотный деревянный или металлический ящик, чтобы предупредить рассеивание возбудителя по пути следования.

Консервирование патологического материала. Полученные пробы отправляют в лабораторию в свежем виде; если невозможно отправить в течение ближайших 24. 30 ч, то их фиксируют в консерванте.

Патматериал для гистологического исследования консервируют 10%-м водным раствором формалина или 96%-м этиловым спиртом. Объем консерванта должен в 10 раз превышать объем взятого материала.

Материал, предназначенный для бактериологического исследования фиксируют 30%-м химически чистым глицерином (лучше физиологическом растворе) или вазелиновым маслом. Соотношение патматериала и консерванта 1:4 или 1:5. Трубчатую кость и кишечник обычно консервируют поваренной солью.

Для вирусологического исследования материал консервируют 50% - м глицерином на стерильном физиологическом растворе Наилучший и простой метод сохранения биологических свойств вирусов в патматериале — охлаждение. Надежно закрытые (флаконы заворачивают в вату или упаковочную бумагу и плотно укладывают в термос, заполненный на 1/3 снегом или льдом. При этом в термосе в течение 12. 24 ч удерживается температура 2 6 "С, при которой вирусы сохраняются практически без изменений.

Оформление документов на отправляемый материал. На взятый патологический материал ветеринарный врач составляет сопроводительный документ (форма 3). В документе необходимо указать также эпизоотическую ситуацию хозяйства, лечили животное или нет' если лечили, то какими препаратами, как законсервирован материал; число отправленных упаковок с пробами.

В ______________________________ ветеринарную лабораторию

При этом направляется для ______________________________

Патологический материал (перечислить какой) _____________________

(вид и возраст животного) (название хозяйства, фермы)

Дата заболевания животного _______________________________

Дата падежа ________'_________________________________

Клиническая картина ____________________________________

Данные патологоанатомического вскрытия _______________________

Предположительный диагноз _______________________________

Дата отправления материала ______________________________

Должность ____________________ Подпись ______________