Ящур где провести анализ

Таблица 104 - Параметры лунок, рекомендуемые для постановки РИД

Показатели	1 вар	2 вар
Диаметр центральной лунки для антигена мм
Диаметр периферических лунок для сыворотки мм
Расстояние между центральной и периферической лунками мм

Минимальные необходимые требования, которым должен удовлетворять диагностиче­ский набор, заключаются в следующем: АГ должен содержать оболочечный гликопротеин ВБЛ, стандартизованный по референтной сыворотке Е-1; референтная сыворотка Е-4, раз­веденная отрицательной сывороткой в соотношении 1:10, должна быть выявлена как поло­жительная без повторной постановки реакции или предварительной концентрации. Рефе­рентные сыворотки Е-1 и Е-4 изготовлены в Национальной ветеринарной лаборатории Да­нии (P.O. Box 373, DK-1503 Copengagen) и предназначены для стандартизации всех диагно­стических наборов для постановки РИД и ИФА.

Реакцию учитывают через 48 ч и при следующих показаниях контролей: наличие четкой контрольной полосы преципитации между АГ и специфической положительной сывороткой и отсутствие таковой с отрицательной контрольной сывороткой. Животных, сыворотки кро­ви которых положительно прореагировали в РДП, считают зараженными ВЛКРС.

Описаны модификация метода иммунодиффузии - усиленная танином непрямая двойная иммунодифузия в геле (НИД-Р) и её применение для выявления AT и АГ ВЛКРС. Со­временная диагностика энзоотического лейкоза КРС основана большей частью на тестах иммунодифузии и ELISA. При использовании РИД необходимо придерживаться рекоменда­ций производителя очень дорогого АГ. В целях снижения затрат при сохранении надежно­сти результатов югославские исследователи уменьшили размер отверстий в розетке и слой агара в чашке Петри, сохраняя прежнюю чувствительность теста.

Предложен метод очистки вируса лейкоза КРС в градиенте плотности перколла. Метод рекомендован для получения очищенного вируса и специфического АГ. Молдав­скими исследователями показано значительное преимущество РИД при исследовании молозива: титр AT был в 8-32 раза выше, чем в пробах сыворотки крови; исследовать необходимо первые порции молозива. Аналогичные данные получены сотрудниками ВИЭВ. Титр AT к gp51 и р24 ВЛ КРС сразу после отела был наивысшим - 1:2187-1:59049 в ИФА и 1:16-1:512 в РДП. Через 1 сут титр AT составлял 25% от исходного.

РАЛ. В качестве теста для прижизненной диагностики лейкоза КРС можно использовать иммунохимическую реакцию агглютинации с латексом в соответствии с временными методическими рекомендациями. Животные, сыворотки крови которых дали положительную реакцию агглютинации с латексом, подлежат тщательному обследованию на лейкоз другими методами. Данная реакция перспективна для прижизненной диагностики лейкозов. Испытание этой реакции показало в 67% случаев совпадение результатов с гематологическими и около 90% с гистологическими методами диагностики гемобластозов КРС.

ИФ. Менее широко применяют для обнаружения AT в сыворотках крови инфицирован­ных животных. При этом используют в качестве клеток-мишеней перевиваемые культуры, иронически инфицированные ВЛКРС.

РНГА. Является чувствительным методом обнаружения AT в сыворотке крови и молоке. Рекомендуют использовать при экспертизе и санитарной оценке молока. Наибольший Процент совпадений гематологических показателей с результатами серологических исследо­ваний был отмечен в РНГА.

ELISA. Широко применяют в США, Бельгии с использованием монАТ для широко­масштабного выявления энзоотического лейкоза в стадах КРС. Чувствительность его выше, чем РДП. Метод ELISA при диагностике лейкоза КРС может существенно повысить чувст­вительность серодиагностики по сравнению с РДП. Он удобен для систематического кон­троля молока коров благополучных хозяйств.

ELISA с монАТ ставят с пулом сывороток крови, объединенных от животных одного стада. Предложено выявлять инфицированность ВЛКРС по наличию AT в молозиве коров ELISA. Все образцы молока, взятые от больных коров, позитивных по AT к вирусу в сыво­ротках, оказались положительными. Во ВНИИВиМ получены 6 гибридом, секретирующих монАТ к ВЛКРС. На основе мон AT к gp51 предложен "сэндвич" вариант ИФА для выявле­ния вирусного АГ. Установлено, что структура и доступность антигенных детерминант варьирует в разных системах титрования. Внесение радиоактивной метки может изменять конфигурацию АГ сайтов, что сказывается на результатах исследования сывороток. Анти ВЛ КРС AT конкурировали со специфическим пероксидазным конъюгатом на основе монАТ за связывание с gp51.

Первым этапом в постановке "классического " варианта ИФА для выявления AT против ВЛКРС является непосредственное покрытие лунок микропанелей вирусным АГ. При этом получают большой процент ложноположительных результатов из-за неспецифического взаимодействия невирусных компонентов АГ с испытуемыми сыворотками. Более того, ис­пользование очищенных вирусных белков в качестве АГ экономически неоправданно и не позволяет получать стандартный препарат, что сказывается на воспроизводимости результа­тов ИФА. Поэтому в настоящее время почти все наборы для постановки ИФА изготавлива­ются с использованием захвата AГ AT, сорбированными на стенки лунок микропанелей. Существующие варианты ИФА включают 5 принципиальных этапов постановки реакции.

Этап I. Реагенты для захвата АГ: а).монАТ против gp51; б).монАТ против р24; в).Поликлональные AT (gp51+p24) КРС. Этап 2. Антиген:
а) надосадочная жидкость после культивирования клеток FLK-BLV;
б) культуральная жидкость, содержащая продукты генов env или gag ВЛКРС, экспрессируемые рекомбинантными векторами. Этап 3. Испытуемые сыворотки. Этап 4. Реагенты для обнаружения иммунного комплекса.

Непрямые варианты ИФА: монАТ против бычьего IgG; полиАТ против бычьего IgG.

Конкурентный или блокирующий варианты ИФА: а) монАТ против gp51 (направленные против других эпигонов нежели использованных на этапе 1a); 6) Бычьи поликлональные AT (такие, как на этапе 1в)

Этап 5. Цветная индикация. Реагенты для индикации иммунного комплекса (этап 4) можно метить биотином или ферментами, чаще используют пероксидазу хрена. При поста­новке ИФА каждая микропанель должна содержать лунки, заполненные положительной и отрицательной контрольными сыворотками.

ИФА позволяет выявлять AT в титрах в 10-100 раз меньших, чем обнаруживает РИД. Все коммерческие наборы ИФА должны быть стандартизированы по референтной сыворот­ке Е-4. Причем, процедура стандартизации предусматривает 3 возможных варианта исполь­зования наборов ИФА для исследования: 1) индивидуальных проб сыворотки; 2) индивиду­альных проб молока; 3) пулов сыворотки и молока.

Параллельно с ИФА AT определяли РИД и электрофореза в полиакриламидном геле. Чувствительность ИФА, испытанного в 5 лабораториях Германии, составляла в среднем 97,6%, что в 4 раза выше РИД. Специфичность ИФА равнялась в среднем 98,1 % . При использовании АГ из культуральных жидкостей клеток почки эмбриона ягнят, персистентно инфицированных ВЛКРС в положительных сыворотках с помощью иммуноблотинга, обна­руживали AT к р24, р15, р12, pl0, gp30, и gp51. В иммуноблотинге оказались активными монАТ к р24 и gp51. Данный метод оказался более чувствительным, чем иммунодиффузия в агаровом геле и ИФА. В ИФА возможно использование синтетических пептидов -фрагментов структурного гликопротеина gp51, синтезированных во ВНИИЗЖ.

Аллергическая реакция. Разработан аллерген для диагностики лейкоза у животных. Для проведения аллергических реакций наиболее подходящее место хвостовая складка у овец и КРС и дорсальная поверхность уха у свиней.

Дифференциальный диагноз. Лейкоз необходимо отличать от актиномикоза, туберку­леза, паратуберкулеза и бруцеллеза. При актиномикозе поражаются, главным образом, лимфоузлы головы и грудной области (подчелюстные, заглоточные, околоушные и др.). Они плотной консистенции, с инкапсулированными абсцессами. В центре актиномикозного узла (гранулемы) гистологически обнаруживают друзы гриба. При туберкулезе чаще поражения в виде узелков, имеющих специфическое гистологическое строение, находятся в легких, кишечнике. Для паратуберкулеза характерно наличие изменений в кишечнике и брыжееч­ных лимфоузлах. В кишечнике развиваются продуктивное воспаление и очаговые инфильт­раты из эпителиоидных клеток, в результате чего стенка утолщается в 5 и более раз. В лим­фоузлах отмечают обширные скопления из эпителиоидных элементов с наличием среди них гистиоцитов и клеток типа Лангерганса. Специфическим методом окраски выявляют бакте­рии паратуберкулеза, локализующиеся в эпителиоидных и гигантских клетках. Бруцеллез диагностируют с помощью РСК, РА и аллергической пробы.

Ящур - остро протекающая высококонтагиозная болезнь парнокопытных, проявляющаяся лихорадкой, везикулярным поражением слизистых оболочек рта, кожи венчика и вымени; у молодых животных - поражением миокарда и скелетных мышц.

Возбудитель: РНК - содержащий вирус, относящийся к роду Aphthovirus,сем. Picornaviridae, имеющий 7 серологических типов (О, А, С; SАТ-1, SАТ-2, SАТ-3, Азия-1). Вирион вируса имеет форму икосаэдра, размером диаметра 25 нм, содежит 31% РНК и 69% белка. В организме естественно восприимчивых животных вирус индуцирует образование типоспецифических ВНА, КСА и ПА. Резистентность переболевших животных к повторному заражению связана с титром ВНА. Вирус ящура устойчив во внешней среде, особенно в высушенном состоянии, при сухом воздухе, отсутствии света, при пониженной температуре. Так, при влажности 30-40% и температуре 18 0 С высушенный вирус сохраняется в течение 2 лет.

Лабораторная диагностика ящура основана на эпизоотологических данных, клинических признаках болезни, патологических изменениях и лабораторных исследованиях. Подозрение на ящур вызывает любое заболевание восприимчивых животных, характеризующееся появлением везикулярной сыпи в ротовой полости, на конечностях и вымени, повышенной саливацией, чмоканьем, затрудненным приемом и пережевыванием корма, а при осмотре ротовой полости - обнаружением афт и эрозий. Кроме того, обращают внимание на продолжительную яромоту, афты на венчике и в области межкопытной щели, иногда спадение рогового башмака, афты на сосках и болезненность последних при доении и сосании с сильно выражен­ным защитным рефлексом.

Эпизоотологический диагноз - высокая контагиозность, избирательное поражение только парнокопытных. Методы лабораторной диагностики ящура варьируют в зависимости от того, необходимы ли раннее обнаружение и типовая (вариантная) идентификация вируса (ранняя диагностика) или обнаружение и идентификация специфических противоящурных АТ у животных-реконвалесцентов (ретроспективная диагностика).

Лабораторная диагностика основана на выделении вируса, индикации, идентификации и типировании вируса ящура.

Выделение вируса. Эффективность выделения вируса из патологического материала повышается при использовании методов очистки и концентрирования вируссодержащих суспензий. Благодаря удобству выполнения, экономичности, а главное, возможности быстрого получения результатов, позволяющих одновременно определить типовую и вариантную принадлежность эпизоотического вируса, чаще всего применяют РСК или РДСК. Однако, когда доставленное количество вирусного материала недостаточно для исследования или РСК дает отрицательный результат или неспецифическую задержку гемолиза, то ставят боиопробу на КРС (не менее 2 голов) в возрасте 18 мес, вводя 0,1 мл суспензии полученного; материала в несколько точек слизистой оболочки языка и мякишей конечностей; общий объем испытуемого материала 2-3 мл. Появление афт на месте введения материала с последующим подтверждением в РСК свидетельствует о наличии ВЯ. Однако метод дорог и связан с опасностью выноса вируса за пределы учреждения. Поэтому в диагностической практике он применяется очень редко. Чаще для биопробы используют мышат-сосунков 4-6-дн возраста, морских свинок массой не менее 500 г и первичную культуру клеток почек телят, поросят, ягнят, щитовидной железы КРС и перевиваемые клетки - ВНК-21, IB-RS-2. Биопроба на мышах удобна и экономична. ИД₅о испытуемого штамма на мышатах-сосунах и крупном рогатом скоте одинаковы. Мышата-сосуны более чувствительны к вирусу ящура, чем морские свинки. Однако необходимо иметь в виду, что оценка результатов титрования на мышатах-сосунках нередко затруднительна.

Морские свинки легко заражаются при интрадермальном введении вируссодержащего материала в плантарную поверхность задних лапок в дозе 0,2-0,5 мл. Заражают не менее 5 голов. Первичные поражения обычно появляются через 2-5 дн (по мере созревания). Вторичные поражения - везикулы в ротовой полости - обычно развиваются при заражении штаммами, адаптированными к морским свинкам.

Для выделения вируса чаще всего используют культуру первично-трипсинизированных клеток почек свиней или телят. Наблюдение за инфицированными культурами клеток ведут 7 дн, микроскопируя их ежедневно. Специфическая дегенерация клеток при подтверждении её специфичности в РСК свидетельствует о наличии ВЯ в испытуемом материале.

Индикация и идентификация вируса. В качестве экспресс-метода в настоящее время широко применяется ПЦР. Это быстры и чувствительный метод обнаружения ВЯ в тканях путем энзиматической амплификащи РНК гена полимеразы.

РСК по 100%-ному гемолизу. Применяется для определения типов и подтипов (вариантов) ВЯ, вызвавших заболевание животных, а также для проверки производственных штаммов ВЯ при изготовлении вакцин и лабораторных штаммов в научно-исследовательской работе.

Антигенное родство (R) более 70% свидетельствует о том, что штаммы по антигенным свойствам идентичны друг другу и относятся к одному и тому же варианту, от 10 до 70% - к различным вариантам (подтипам) и менее 10%- к различным типам.

РСК по 50%-ному гемолизу. Успешно применяют в работе научно-исследовательских лабораторий и учреждений биологической промышленности. Разработан способ изучения иммунного статуса вакцинированных против ящура животных в РСК. Он позволяет спе­циалистам на уровне областных ветлабораторий проводить мониторинг за иммунным со­стоянием стад в простой и достоверной реакции.

РПГА. Это простой, ускоренный, чувствительный метод идентификации ВЯ. По чувст­вительности реакция превосходит общепринятый метод типирования ВЯ в РСК в 8-16 раз. Сущность её заключается в том, что нагруженные AT эритроциты агглютинируются при контакте с ящурным АГ гомологичного типа.

Типирование ВЯ.Определение типа ВЯ методом перекрестного иммунитета. Испытание перекрестно­го иммунитета на КРС с целью определения типовой принадлежности полевого штамма ВЯ проводится лишь в том случае, если по лабораторным тестам обнаруживается новый тип ВЯ, ранее не встречавшийся в стране. Определение типа ВЯ методом перекрестного имму­нитета возможно и на морских свинках.

Штаммы считают идентичными, если вакцина предохраняет животных от развития генерализованного процесса при заражении используемыми штаммами. В случае иммуноло­гического отличия штаммов вакцинированные животные, инфицированные гетерологичным штаммом, заболевают генерализованной формой ящура.

При определении в культуре леток типа ВЯ его относят к тому типу, сыворотка против которого предотвращает ЦПД. Разработан вариант универсальный эритроиммуноадсорбции (УЭИА), позволяющий определять АГ ВЯ в более высоких титрах, чем в РСК и РПГА.

ИФА. Высокоэффективен для выявления как 146S-, так и 125-компонентов ВЯ. Этот метод в 500 раз чувствительнее РСК при исследовании проб афтозного эпителия. Установ­лена высокая степень специфичности и чувствительности ELISA для идентификации и типирования ВЯ всех 7 серотипов в эпителиальных тканях. Установлена высокая чувстви­тельность сэндвич-варианта ИФА (на основе щелочной фосфатазы), который по эффектив­ности превосходит в 207-219 раз, а с хромогенными субстратами - в 4-64 раза.

ИФА может быть пригодной в системе лабораторной диагностики ящура при исследо­вании диагностических штаммов. Для выявления AT к ВЯ в ИФА можно использовать про­бы крови, высушенной на фильтровальной бумаге. Первоначальный объем гепаринизированной крови равен 7,65 мкл.

Основные направления деятельности:

- выпуск диагностических наборов, препаратов в соответствии с действующими ТУ и СТО;

- разработка биологических методов выделения и иммунохимических методов идентификации эпизоотических изолятов возбудителей ящура и других особо опасных болезней;

- усовершенствование технологии изготовления, контроля и применения препаратов для диагностики ящура и других особо опасных болезней (везикулярная болезнь свиней, везикулярная экзантема свиней, везикулярный стоматит);

- изучение антигенных свойств эпизоотических изолятов вируса ящура и возбудителей других особо опасных инфекций, а также степени их соответствия производственным штаммам;

- окончательное заключение о появлении на территории страны изолятов вируса, являющихся новыми вариантами известных типов, определение из их числа кандидатов на роль новых производственных штаммов в соответствии с действующими инструкциями по борьбе с ящуром и другими особо опасными болезнями;

- хранение коллекции эпизоотических изолятов и производственных штаммов вирусов, поддержание в активном состоянии и паспортизация музейных и эталонных штаммов вируса ящура и возбудителей других особо опасных болезней;

- разработка методов дифференциальной диагностики ящура и других вирусных болезней животных от клинически сходных болезней иной этиологии;

- оказание научно-методической и практической помощи краевым и областным лабораториям страны, диагностическим лабораториям и центрам, расположенным в странах СНГ, а также диагностика ящура и других особо опасных болезней;

- выдача эпизоотических изолятов возбудителей особо опасных болезней после идентификации и производственных штаммов другим подразделениям учреждения;

- осуществление авторского надзора за освоением в производстве новых разработок и технологических процессов по изготовлению диагностических препаратов;

- подготовка научных кадров через аспирантуру и повышение их квалификации, подготовка и рецензирование монографий, диссертаций, научных статей и научно-популярной литературы, систематическая учеба научно-технического и вспомогательного персонала;

- проведение курсов повышения квалификации ветеринарных врачей субъектов РФ в отношении эпизоотологии, диагностики, профилактики и мер борьбы с ящуром и другими особо опасными болезнями в современных условиях.

Диагностикумы референтной лаборатории диагностики ящура:

- набор для выявления антигена вируса ящура в иммуноферментном анализе;

- набор для определения противоящурных антител в сыворотках крови животных в иммуноферментном анализе (тип А);

- набор для определения противоящурных антител в сыворотках крови животных в иммуноферментном анализе (Тип О);

- набор для определения противоящурных антител в сыворотках крови животных в иммуноферментном анализе (Тип С);

- набор для определения противоящурных антител в сыворотках крови животных в иммуноферментном анализе (Тип Азия-1);

- антиген ящурный штаммоспецифический сухой для серологических реакций (А, О, Азия-1, Sat-1, Sat-2, Sat-3);

- сыворотка ящурная типо – и штаммоспецифическая для серологических реакций, используемая в диагностических целях (на типы А, О, Азия-1, Sat-1, Sat-2, Sat-3);

- набор для иммуноферментной диагностики везикулярной болезни свиней.

Диагностические исследования:

- исследования проб патологического материала для выявления и идентификации вируса ящура в реакции связывания комплемента (РСК);

- исследования проб патологического материала на выявление антигена вируса ящура в иммуноферментном анализе;-

- исследования по выделению вируса ящура в культуре клеток;

- определение антигенного соответствия эпизоотического изолята производственному штамму вируса ящура в реакции микронейтрализации (РМН);

- исследования мяса и кормов на наличие антигена вируса ящура методом иммуноферментного анализа;

- исследования сывороток крови животных на наличие противоящурных антител в реакции микронейтрализации (РМН);

- исследования сывороток крови животных на наличие антител против вируса везикулярной болезни свиней в реакции микронейтрализации (РМН);

Ящур - опасное вирусное инфекционное заболевание, при котором поражаются слизистые покровы кожи. Болезнь передается человеку от больных животных.

Заражение человека может произойти, главным образом, при употреблении сырого молока, молочных продуктов, мяса, реже - при непосредственном контакте с больными животными и при контакте с инфицированными предметами (подстилка, кормушка). Возможны случаи воздушно-капельного заражения. Передачи инфекции от человека к человеку не происходит. Но наиболее восприимчивы к ящуру дети, взрослые заболевают редко.

Ученые установили, что данное заболевание имеет широкое распространение, обладает высокой устойчивостью во внешней среде и долгое время сохраняет активность в условиях холода и высушенном состоянии.

В сырье и продуктах, полученных от больных животных, вирус остается жизнеспособным от нескольких суток до месяца и более. В условиях холода вирус сохраняется в сливках - до 4 дней, молоке - до 12 дней, масле - до 45 дней, субпродуктах - до 3 месяцев. Вирус ящура устойчив во внешней среде: на шерсти животных он сохраняется до четырех недель, на одежде - до 3,5 недели. Обратите внимание: низкие температуры и высушивание не уничтожают вирус.

Наиболее восприимчивы к ящуру крупный рогатый скот и свиньи; овцы, козы и дикие копытные животные - менее чувствительны. Описаны случаи возникновения ящура в естественных условиях у лосей, оленей, сайгаков, косуль, буйволов, антилоп и диких свиней, а также заражения диких копытных в зоопарках. На восприимчивость животных к ящуру существенное влияние оказывает возраст. Молодые животные более восприимчивы и болезнь может протекать тяжелее, чем у взрослых. Другие виды животных заболевают ящуром довольно редко. Однако имеются сообщения о единичных случаях заболевания ежей, собак, кошек, кроликов и крыс. Заболеть ящуром может и человек (особенно дети), однако процесс проникновения и репродукции вируса в организме неизвестен.

Источник возбудителя ящура - больные животные, в том числе находящиеся в инкубационном периоде заболевания, а также вирусоносители (более 400 дней). Такие животные выделяют вирус во внешнюю среду с молоком, слюной, мочой и калом. В результате этого происходит инфицирование помещений, выгульных дворов, различных предметов и инвентаря, пастбищ, водоисточников, кормов, транспортных средств, предприятий по заготовке и переработке животноводческой продукции и других объектов. Заражение животных происходит преимущественно через слизистые оболочки ротовой полости при поедании кормов и питья, облизывании различных инфицированных предметов. Большое значение в распространении вируса ящура имеет человек, так как он чаще всего соприкасается с животными и может перемещаться на большие расстояния. Механически переносится вирус ящура с транспортом, птицей и другими видами невосприимчивых животных (в том числе и дикими), а также насекомыми и клещами.

Инкубационный период заболевания - в среднем 3-4 дня, хотя он может укорачиваться до двух дней или удлиняться до 10-14 дней, очень редко протекает 21 день.

У людей болезнь начинается с сильного озноба, подъема температуры до 39-40°, головной боли, потери аппетита, мышечных болей, особенно в области поясницы. Уже в первые сутки больной ощущает сухость и жжение во рту, сильное слюнотечение. Затем появляются пузырьковые высыпания от 1 до 3 мм диаметром. Особенно их много на кончике и по краям языка, а также на слизистой оболочке щек, на деснах и губах. Содержимое пузырьков прозрачно, желтоватого цвета, затем мутнеет, пузырьки увеличиваются, образуя эрозии. Дети жалуются на затруднение при глотании, на боли при жевании, разговоре; становятся раздражительными, полностью отказываются от еды. Нередко выделение слюны столь обильно, что она вытекает струей. Высыпания имеются на слизистой оболочке носа, желудка, конъюнктиве, а также на коже лица, предплечий, кистей, голеней и стоп (особенно между пальцами рук и ног).

Проявление клинических признаков болезни у животных зависит от индивидуальной чувствительности животного к вирусу ящура, его физиологического состояния. Наиболее характерно признаки ящура выражены у взрослого крупного рогатого скота. Возможно доброкачественное и злокачественное проявление ящура. Первым признаком заболевания является повышение температуры тела животного до 41 °С и выше. У больных отмечают состояние прострации, покраснение слизистой оболочки ротовой полости и конъюнктивы и т.д. Голова у животных опущена, они часто стонут. Затем начинается обильное слюноотделение. Животные очень осторожно пережевывают корм, глотание болезненно. У них возникает жажда, появляется хромота. Через 3 дня заболевания температура тела снижается и появляется экзантема (греч. exanthema - сыпь, высыпание). Животные хромают, стоят, выгнув спину, подобрав ноги под живот. Иногда развивается острое воспаление сосков. Вымя отекает, становится болезненным. При неудовлетворительных условиях содержания и кормления, а также при несвоевременном оказании лечебной помощи возникают значительные осложнения. На конечностях появляются панариции и флегмоны, возможны глубокие поражения суставов и сухожилий. Нередко отмечают тяжелое воспаление вымени. Особенно опасны вторичные маститы, обусловленные гноеродными бактериями, стрептококками и стафилококками. Это приводит к преждевременной выбраковке продуктивных животных.

Диагноз на ящур ставят на основании:

• анализа эпизоотологических данных;
• наличия типичных клинических проявлений болезни;
• результатов лабораторных исследований.

Разработан ряд методов, позволяющих в течение короткого времени исследовать патологический материал с целью установления или исключения ящура.

Патологический материал для исследования доставляют в ветеринарную лабораторию нарочным, в герметически закрытых и опечатанных контейнерах, в термосе со льдом, при строгом соблюдении необходимых мер безопасности. При определении типов и вариантов вируса пользуются также биологическими методами исследований - проверкой перекрестного иммунитета на переболевших и вакцинированных животных (обычно на крупном рогатом скоте или морских свинках), реакцией серозащиты на мышатах-сосунах, реакцией нейтрализации вируса в культуре ткани. В отдельных случаях при исследовании патологического материала прибегают к постановке биопробы на восприимчивых сельскохозяйственных и лабораторных животных.

В случае обнаружения указанных признаков для постановки диагноза и оказания своевременной квалифицированной помощи необходимо срочно обращаться к ветеринарным специалистам.

В случае обнаружения указанных признаков для постановки диагноза и оказания своевременной квалифицированной помощи необходимо срочно обращаться в медицинские учреждения.

Больных ящуром госпитализируют. Специальных средств лечения этой болезни нет.

Профилактика ящура состоит из комплекса санитарно-ветеринарных мероприятий и мер личной гигиены:

• В местах, где появляется ящур, строго запрещается пить сырое молоко и есть молочные продукты, приготовленные из него;
• Не допускаются к уходу за больными животными беременные женщины, дети и подростки;
• При обнаружении ящура на неблагополучные хозяйство или населенный пункт накладывают карантин, определяют угрожаемую по ящуру зону, вводят ограничения в хозяйственной деятельности на территории района, области, края, республики.

Эти ограничения могут предусматривать запрещение вывоза животных и сельскохозяйственной продукции, введение особого порядка ее заготовки и использования, временного запрета движения личного и общественного транспорта и т. д.

При появлении первых случаев заболевания животных ящуром в ранее благополучном регионе (местности) с целью недопущения дальнейшего распространения болезни рекомендуется немедленно убить всю неблагополучную группу животных на месте их нахождения с соблюдением ветеринарно-санитарных правил. Вывоз такого мяса и других продуктов убоя в сыром виде за пределы хозяйства запрещают. Одновременно с убоем животных в хозяйстве проводят и другие мероприятия, предусмотренные инструкцией. Трупы животных, павших в очаге ящура, уничтожают, молоко и навоз обеззараживают.

Карантин по ящуру снимают с неблагополучного пункта через 21 день после последнего случая выздоровления животных или их убоя, с обязательным проведением заключительной очистки и дезинфекции инфицированных животноводческих помещений, выгульных дворов, инвентаря, транспортных средств, оборудования и механизмов.

После снятия карантина в обязательном порядке проводят ограничительные мероприятия, относящиеся к перемещению переболевших животных, вводу невакцинированного поголовья в хозяйство, правилам пастьбы, убоя.

Ежегодно неблагополучными по ящуру являются 50 и более стран мира, в подавляющем большинстве – страны Азии и Африки. В развитых странах, проводящих жесткий контроль территорий от заноса инфекции и свободных от ящура, периодически возникают вспышки экзогенного происхождения, ликвидируемые радикальными мерами с большими экономическими издержками.

Однако, в результате некачественно проведенных вакцинаций животных (неполный охват сельскохозяйственных животных, неправильное хранение вакцины), а так же наличия в регионах переболевших сельскохозяйственных животных или диких инфицированных ящуром животных мигрировавших из сопредельных государств, вспышки болезни по-прежнему периодически фиксируются на территории России.

Начиная с 2006 года, когда вирус на территорию России был ввезен из Китая, ситуация значительно ухудшилась. Вспышки ящура регистрировались в Приморском крае, Амурской области и Забайкалье.

Спорадические вспышки ящура регистрировались на протяжении 2004, 2005, 2006 гг. С 2010 по 2012 года в Забайкальском и Приморском краях были так же зарегистрированы вспышки болезни.

В 2013 году вспышки ящура зарегистрированы в 5 субъектах: Забайкальский край, Карачаево-Черкесская Республика, Краснодарский край, Амурская область и Кабардино-Балкарская Республика.

В 2014 году зарегистрировано 3 вспышки ящура на территории Забайкальского края. Все вспышки зарегистрированы на ранее неблагополучных в 2013 году территориях. Так как после этих инцидентов вспышки ящура больше не возникали, 26 мая 2016 года, на генеральной сессии МЭБ (Международное Эпизоотическое Бюро), России был присвоен статус страны с зоной "свободной от ящура без вакцинации".

13 января 2017 статус России, как страны с зоной "свободной от ящура без вакцинации" был восстановлен.

Но, буквально через 8 месяцев, 30 сентября 2017 г. статус вновь был приостановлен в связи с вспышкой ящура в Башкирии. Указанный статус не восстановлен до сих пор.

Наиболее острая ситуация по заболеваемости ящуром в 2019 году была зафиксирована в Приморском крае, где зарегистрировано 6 неблагополучных пунктов по ящуру в Михайловском, Спасском, Октябрьском районах и Уссурийском городском округе. В Хабаровском крае зафиксирован 1 неблагополучный пункт в Хабаровском районе.

Группа компаний "Русагро" сообщала, что на свиноферме в Михайловском районе Приморского края, где произошла вспышка ящура, уничтожению подлежало 481 животное.

30 января заболевание ящуром было обнаружено на новой ферме "Скифагро-ДВ" в Хабаровском районе, еще не введенной полностью в строй. В октябре 2018 года они завезли поголовье в 1,75 тысячи животных. От руководства предприятия 28 января поступила информация о подозрении на заболевание… 30 января подтвердились результаты анализов.

14 февраля стало известно, что вирус ящура поразил еще одно личное подсобное хозяйство в Приморском крае. 18 февраля администрация Приморского края отрапортовала, что очаги заболевания ящуром ликвидированы.

По официальным данным Управления ветеринарии Республики Бурятия, в буферной зоне сосредоточено более 23 000 видов хозяйств, это ЛПХ, ИП, КФХ и СПК.

В целях недопущения ящура в Бурятии, как и по всей территории РФ, действует запрет на ввоз животных из Монголии. Благодаря оперативным действиям по ее недопущению, сохраняется благополучие республики на протяжении 50 лет.

- Ежегодно, ветеринарными специалистами осуществляется проведение полного комплекса профилактических мероприятий, включая систематическую вакцинацию животных против ящура с последующим контролем иммунного фона, – комментирует проводимые меры по предупреждению ящура начальник Управления ветеринарии Республики Бурятия Сангадиев Эрдэм.

Для сохранения благополучия на территории республики, в Бурятии прививают всех сельскохозяйственных животных, которые могут заразиться этой болезнью. Так, в 2018 году, вакцинировано 673 824 тысяч голов КРС и МРС.

Подозрительных случаев, характерных для ящура на территории Пензенской области за 2018 год не выявлено.

Ввоз сельскохозяйственных животных и продукции животного происхождения, кормов и кормовых добавок из благополучных и неблагополучных по ящуру регионов Российской Федерации осуществляется только по согласованию с главным госветинспектором Пензенской области, так же на постоянной основе проводится контроль за торговлей мясом, молоком и другими продуктами животного происхождения. Вновь завезенный скот в обязательном порядке проходит карантинирование в течение 30 дней.

Организовано проведение освещения через СМИ и собрания граждан аспектов, связанных с мерами по предотвращению заноса на территорию хозяйств возбудителя ящура, масштабов возможного ущерба от его распространения, а также первоочередных действий владельцев животных в случае возникновения подозрения на заболевание ящуром, об эпизоотической обстановке по ящуру в субъектах Российской.

Создан запас дезинфицирующих средств и проводится целый ряд мер для профилактики распространения заболевания на территории области.

Складывается впечатление, что в тех регионах России, где контроль за эпизоотической ситуацией поставлен на высокий уровень ветеринарные ведомства охотно делятся информацией с журналистами, а в тех, где ситуация с ящуром критична - решили отмолчаться, чтобы скрыть свои недоработки. К сожалению, в борьбе с распространением заболевания это не поможет.

По мнению экспертов Россельхознадзора, минимизировать риски возникновения очагов ящура на территории России возможно при условии наличия в субъектах РФ высококвалифицированных ветеринарных специалистов, обеспеченных современным лабораторным и техническим оборудованием для эффективного обнаружения биологических агентов и ликвидации очагов ящура ветеринарными препаратами и диагностическими средствами, отвечающим российским и международным стандартам.

Необходимо обеспечить жесткий контроль за полнотой и качеством проведения профилактических и противоэпизоотических мероприятий в регионах России, оперативно выявлять и пресекать несанкционированные перевозки восприимчивых к ящуру животных. А так же обеспечить учет и идентификацию сельскохозяйственных животных, содержащихся в личных подсобных и крестьянско-фермерских хозяйствах. Отсутствие объективного учета и идентификации животных чрезвычайно затрудняет контроль за полнотой охвата животных вакцинацией.

Как выяснилось, на лицо все та же огромная проблема российского АПК – нехватка квалифицированных кадров. Если добавить к этому безответственное отношение к профилактической вакцинации животных, то избавиться от периодических вспышек заболевания в России пока не представляется возможным, а ведь Минсельхоз рассчитывает, что в этом году, страна восстановит указанный статус по этому заболеванию.