Хламидийная инфекция в носоглотке

Показана высокая степень вероятности выявления хламидийных микроорганизмов с использованием комплекса лабораторных методов. Применение представленного алгоритма позволяет повысить качество лабораторной верификации хламидийной инфекции, определить тактику

We found high degree of possibility of revealing Chlamydia microorganisms with the help of the complex of laboratory techniques (tests). Practical implementation of the offered algorithm allows to improve the quality of laboratory verification for Chlamydia infection, Define diagnostics strategy and management of patients and estimate expected results of treatment.

Хламидийная инфекция является серьезной проблемой здравоохранения вследствие широкого распространения и негативного влияния на здоровье населения. В последние годы зарубежные и российские ученые рассматривают хламидии в качестве важного возбудителя, инициирующего воспалительные заболевания верхних отделов респираторного тракта и среднего уха. Однако представленные сведения по частоте обнаружения этой инфекции зачастую противоречивы. Так, диапазон разброса выявления хламидий у больных с патологией носа, околоносовых пазух и глотки колеблется в значительных пределах: от 7% до 74,4% [1–10]. Такие колебания в частоте выявления хламидийной инфекции находят свое объяснение в применении авторами разных по чувствительности и специфичности лабораторных тестов идентификации хламидий, а также различными методическими подходами в организации исследования.

Учитывая отсутствие четких пато­гномоничных клинических симптомов респираторного хламидиоза, решающее значение для верификации имеет лабораторная диагностика [4, 6–8], отличающаяся от традиционной, для клинической бактериологии верификации возбудителей инфекционных заболеваний. Это связано с биологическими свойствами хламидий, основным из которых является внутриклеточное существование, подразумевающее невозможность выделения возбудителя на питательных средах.

В настоящее время для идентификации хламидийной инфекции любой локализации применяются разно­образные лабораторные методы, отличающиеся друг от друга выявляемыми маркерами возбудителя, специфичностью и чувствительностью, трудоемкостью, временными параметрами тестирования, сферой применения, стоимостью и т. д. Причем чувствительность и специфичность методов исследования будет разная в зависимости от локализации хламидийной инфекции.

На сегодняшний день самым достоверным и высокоспецифичным методом непосредственного обнаружения хламидий, но в то же время самым трудоемким, дорогостоящим и недостаточно распространенным и экстренным является бактериологический метод культивирования возбудителя in vitro на чувствительных клетках. Отрицательный результат бактериологического анализа является пока единственным доказательством отсутствия живых хламидий и объективным подтверждением эффективности проведенной эрадикационной терапии.

Методы ДНК-диагностики позволяют с высокой точностью идентифицировать последовательность нуклеотидов в геноме исследуемого инфекционного микроорганизма (специфичность и чувствительность метода ДНК-диагностики от 90% до 94,8%). В настоящее время разработан ряд методов амплификации нуклеиновых кислот, но только один из них нашел применение для выявления хламидийной ДНК (РНК) — полимеразная цепная реакция. К преимуществам молекулярно-биологических методов относятся: ранняя диагностика хламидийной инфекции у серонегативных больных, выявление бессимптомных форм хламидиоза, отсроченный контроль после лечения, возможность определения широкого спектра возбудителей в одном клиническом образце. В настоящее время ведутся разработки по использованию методов амплификации нуклеиновых кислот для изучения генов вирулентности и генов антибиотикорезистентности хламидий.

Наиболее часто употребляемым методом выявления хламидийного инфицирования является иммуно­флюоресцентный анализ, который уступает по своей специфичности (65–98%) биологическому методу, а по чувствительности (65–87%) — генно-молекулярному методу. В основе этого метода лежит взаимодействие хламидийных антигенов с хламидийными антителами, содержащихся в стандартных диагностических иммунных сыворотках. Результаты этого взаимодействия регистрируются объективно с помощью люминесцентного микроскопа, поэтому иногда этот метод причисляют к бактериоскопическим методам. Для диагностики хламидиоза верхних дыхательных путей и идентификации вида возбудителя можно применять как прямой иммунофлюоресцентный метод, так и непрямой иммунофлюоресцентный метод. Кроме того, данные тесты способны выявлять не только корпускулярные, но и растворимые антигены хламидий.

К сожалению, отрицательные результаты иммунофлюоресцентного анализа и ДНК-диагностики являются отсроченными маркерами выздоровления. Это обусловлено тем, что, результаты этих тестов остаются позитивными в течение 1,5–2 месяцев после окончания этиотропной терапии до тех пор, пока не элиминируются пассивные следы инфекции (остатки структур хламидий, погибшие микроорганизмы).

Для серологической диагностики антител в настоящее время наиболее часто используется иммуноферментный анализ. Применяемые сегодня иммуноферментные тест-системы для выявления хламидийных антител этим методом более чувствительные, чем тест-системы для выявления хламидийных антигенов этим же методом. Это связано с тем, что в качестве антигена в диагностических системах используются не только родоспецифические фрагменты липополисахарида, но и видоспецифические белковые детерминанты основного белка наружной мембраны хламидий, обеспечивающие четкую видовую диагностику. Чувствительность иммуноферментного анализа для определения хламидийных антител колеблется в зависимости от применяемых тест-систем от 75% до 95%, специфичность — от 70% до 95%. Достоинством метода является возможность определения иммуноглобулинов классов G, A и М, а к недостаткам и ограничениям можно отнести требования специального оснащения и высокой квалификации врачей-лаборантов.

Поскольку хламидии обладают слабой антигенной активностью, наработка и накопление антител в инфицированном макроорганизме происходит в небольших количествах, поэтому иммуноферментный анализ наиболее информативен при первичной острой инфекции и в период реактивации хронической инфекции. Кроме того, диагностическая значимость этого метода значительно повышается в случаях генерализации хламидийной инфекции.

К недостаткам иммуноферментного анализа, как и других иммунохимических методов обнаружения антител, относится то, что даже у здорового населения может отмечаться фоновый титр антител к хламидиям в результате широких контактов с хламидиями, не приведших к развитию инфекции, как и у переболевших и самостоятельно выздоровевших лиц.

Цитологический метод недостаточно информативен для диагностики хламидийной инфекции из-за низкой чувствительности (от 5% до 30%).

Учитывая недостаточно высокие операционные характеристики каждого из лабораторных тестов, ряд исследователей предлагают одновременное использование двух и более лабораторных методов выявления хламидийного возбудителя, однако данные рекомендации касаются пациентов с патологией урогенитального тракта [11, 12]. В силу сказанного целью настоящего исследования явилась разработка наиболее эффективного комплекса лабораторных методов диагностики хламидийного инфицирования слизистой оболочки носа и околоносовых пазух у больных с хроническим синуситом.

Всего обследовано 168 пациентов в возрасте от 18 до 65 лет, поступивших в ЛОР-отделение с обострением хронического воспаления околоносовых пазух. Диагноз синусита подтверждался рентгенологическим исследованием околоносовых пазух. Шифровка диагнозов осуществлялась по статистической классификации болезней, травм и причин смерти (МКБ-10). Диагностика ЛОР-заболеваний проводилась по общепринятой в оториноларингологии семиотике болезней.

Учитывая, что хламидии имеют большую тропность к цилиндрическому эпителию, оптимальными местами для взятия мазков являются участки слизистой оболочки, покрытые цилиндрическим мерцательным многоядерным эпителием, локализующимся в области дна полости носа и боковых стенок носа до нижнего края средней носовой раковины. Забор мазков со слизистой оболочки носа для последующего проведения иммунофлюоресцентного анализа осуществлялся с помощью стерильного одноразового зонда с ватным тампоном или стерильной одноразовой специальной щеточкой в нескольких точках. При этом зонд или щеточка прижимались к поверхности слизистой оболочки и смещались легким поскабливающим движением. В случаях избытка слизи или наличия гнойного отделяемого поверхность слизистой оболочки очищалась от них другим ватным тампоном. Обязательными условиями, определяющими качество забора материала для исследования, является наличие в мазке неразрушенных эпителиальных клеток и отсутствие примеси крови. Взятый материал распределялся тонким слоем по поверхности лунок обезжиренного предметного стекла, подсушивался на воздухе. В случае невозможности доставки в лабораторию образца в тот же день последний фиксировался в этиловом спирте 96 °C с последующим хранением при температуре +4–8 °C не более 7 дней.

Материалом для проведения серологического метода (иммуноферментного анализа) являлась венозная кровь в объеме 2,5–3,0 мл, взятая у обследуемых лиц натощак из локтевой вены в сухую центрифужную пробирку.

Анализируемые качественные признаки представлены в виде относительной частоты и 95% доверительного интервала (ДИ).

Хламидийные структуры в мазках, взятых со слизистой оболочки носа у больных с хроническими синуситами, методом полимеразной цепной реакции были обнаружены у 56 исследуемых лиц (в 33,3%, ДИ 26,4–40,6%). В то время как методами прямой иммунофлуоресценции и иммуноферментного анализа хламидии были верифицированы у меньшего числа больных: соответственно у 47 (в 27,9%, ДИ 21,5–35%) и 42 пациентов (в 25%, ДИ 18,8–31,8%).

Причем у 7 больных (в 4,2%, ДИ 1,7–7,7%) с положительными результатами исследования методом прямой иммунофлюоресценции ДНК-диагностика не выявила наличие хламидийной инфекции. В то время как у 9 больных (в 5,4%, ДИ 2,5–9,3%) с верифицированным хламидийным возбудителем тестом ДНК-обследование методом прямой иммунофлюоресценции не подтвердило наличие хламидийной инфекции.

При положительном результате иммуноферментного анализа у 5 больных (в 3%, ДИ 1,0–6,1%) отрицательными оказались оба прямых теста. А у 3 лиц (в 1,79%, ДИ 0,3–4,3%) был отрицательный или прямой иммунофлюоресцентный анализ или полимеразная цепная реакция.

Снижение чувствительности прямых методов может быть обусловлено неправильным забором и хранением клинического материала, отсутствием хламидийного возбудителя в месте забора мазка, полным или частичным разрушением специфических белков и генома, различным качеством используемых тест-систем. Загрязнение исследуемых образцов хламидиями при несоблюдении мер для предупреждения контаминации из внешней среды может быть одной из причин снижения специфичности. Ложноположительные результаты могут быть получены при отсутствии живых хламидий, но при наличии их остатков в виде отдельных структур (антигенов, ДНК, РНК). Кроме этого результаты иммунофлюоресцентного исследования определяются субъективизмом и квалификацией врача-лаборанта.

Таким образом, вероятность получения как ложноотрицательных, так и ложноположительных результатов лабораторных методов диагностики хламидийной инфекции определяет необходимость в их комплексном применении. Одновременное использование двух прямых и одного непрямого тестов лабораторной диагностики позволило установить наличие хламидийной инфекции у 61 из 168 обследуемых больных (в 36,9%, ДИ 29,2–43,7%).

Сопоставление результатов всех трех лабораторных методов исследования определяет тактику ведения пациентов с подозрением на хламидийное инфицирование слизистой оболочки верхних дыхательных путей (табл.).

Так, положительные результаты трех или двух методов указывают на наличие хламидийной инфекции, требующей назначения этиологического лечения. Обнаружение хламидий в мазках со слизистой оболочки верхних дыхательных путей одним из двух прямых тестов при отрицательном результате иммуноферментного анализа не может трактоваться однозначно, и в этом случае необходимо повторное исследование. Положительные результаты серологического анализа не позволяют выявить очаг хламидийной инфекции, но при наличии отрицательного результата прямого метода выявления хламидийного возбудителя из предполагаемого очага поражения нацеливают врача на повторную индикацию возбудителя или на поиск другой локализации хламидий. Необходимо учитывать и тот факт, что отрицательные результаты серологических тестов не исключают наличие персистирующей хламидийной инфекции.

Неравнозначное диагностическое значение разных методов лабораторной диагностики хламидийного поражения определяет необходимость комплексного использования диагностических тестов для верификации хламидий у больных с воспалительными заболеваниями носа и околоносовых пазух. Наиболее оптимальным комплексом является одновременное применение двух прямых и одного непрямого методов. Результаты лабораторных методов идентификации хламидийного возбудителя обязательно должны сопоставляться с анамнестическими сведениями, клиническими проявлениями заболевания и данными объективного осмотра ЛОР-органов.

Применение лабораторного комплекса позволяет повысить эффективность диагностики воспалительных заболеваний носа и околоносовых пазух, ассоциированных с хламидийной инфекцией, а также определить диагностическую тактику ведения пациентов с этой инфекцией.

Предложенный алгоритм лабораторной диагностики можно использовать не только для доказательства или опровержения хламидийного инфицирования, но и в качестве контроля результативности проводимых противохламидийных лечебных мероприятий. Во избежание получения ложноположительных результатов проверку качества лечения следует проводить по истечении 1,5 месяцев после окончания эрадикационной терапии, т. к. только к этому сроку наступает полная элиминация пассивных следов инфекции и смена эпителиального покрова [13–15].

Важность предложенного комплекса лабораторной диагностики хламидийной инфекции данной локализации будет способствовать своевременному назначению этиотропного лечения определенными группами антибиотиков (макролидами, фторхинолонами, тетрациклинами), элиминирующими возбудителя, укорочению периода обострения заболевания, снижению вероятности осложнений и формирования тяжелых форм болезни, предотвращению диссеминации хламидий в организме с последующим развитием экстрареспираторных очагов поражения [16–18].

Литература

1. Белова Е. В. Клинико-эпидемиологические аспекты хламидийного инфицирования верхнего отдела респираторного тракта у детей: автореф. … канд. мед. наук. Красноярск, 2008. 22 с.
2. Капустина Т. А., Белова Е. В., Манчук В. Т., Кин Т. И. Инфицированность хламидиями детей с хроническими заболеваниями носоглотки и придаточных пазух носа // Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2006. Т. 51. № 6. С. 65–66.
3. Маркина А. Н., Капустина Т. А., Белова Е. В., Парилова О. В. и др. Распространенность хламидийной инфекции у взрослых лиц с заболеваниями верхних дыхательных путей // Успехи современного естествознания. 2006. № 2. С. 50.
4. Лайко А. А., Бредун А. Ю. Роль хламидийно-бактериальных ассоциаций в развитии хронического верхнечелюстного синусита у детей // Рос. ринология. 2005. № 2. С. 188.
5. Линьков В. И., Цурикова Г. П., Нуралова И. В., Панькина Н. А. Значение хламидийной инфекции в развитии хронических воспалительных заболеваний глотки/Тез. докл. XV Российского съезда отоларингологов. СПб, 1995. С. 164.
6. Лиханова М. А., Мингалев Н. В., Лебедева Р. Н. Роль хламидийной инфекции при аллергической риносинусопатии // Вестн. оториноларингологии. 2006. № 5. С. 244–245.
7. Нечаева С. В., Полякова Т. С., Чувиров Г. Н. Хламидийная и микоплазматическая инфекция у больных хроническим риносинуситом/Тез. докл. науч. конф. современные проблемы оториноларингологии. М., 2002. С. 89.
8. Сидоренко И. В. Место атипичной флоры в этиологии хронических синуситов и выявление ее методом ПЦР-диагностики // Рос. ринология. 2004. № 4. С. 32–34.
9. Andersen P. Pathogenesis of lower respiratory tract infections due Chlamydia, Mycoplasma, Legionella and viruses // Thorax. 1998. V. 53. № 4. P. 302–307.
10. Falck G., Heyman L., Gnarpe J., Gnarpe Н. Chlamydia pneumonia and chronic pharyngitis // Scand. J. Infect. Dis. 1995. V. 27. № 2. P. 179–182.
11. Сидорович С. Ю., Латыпова М. Ф., Коликова Т. Г., Вахнина Т. Е. и др. Сравнительный анализ методов лабораторной диагностики урогенитального хламидиоза // Вестник дерматологии и венерологии. 2001. № 1. С. 9–10.
12. Шевченко Е. А. Особенности биохимических и иммунологических показателей при хламидиозе, микоплазмозе и уреаплазмозе. Автореф. … канд. мед. наук. Н. Новгород, 2002, 24.
13. Гавалов С. М. Хламидиоз — дисбактериоз. Интегральные взаимоотношения. Новосибирск: РТФ, 2003. 219 с.
14. Гранитов В. М. Хламидиозы. М.: Мед. кн., 2002. 192 с.
15. Лобзин Ю. В., Ляшенко Ю. И., Позняк А. Л. Хламидийные инфекции. СПб: Фолиант, 2003. 395 с.
16. Белова Е. В., Капустина Т. А., Парилова О. В., Маркина А. Н. Антибактериальное лечение детей с острым верхнечелюстным синуситом, ассоциированным с хламидийной инфекцией // Лечащий Врач. 2014. № 10. С. 25–29.
17. Страчунский Л. С., Козлов С. Н. Современная антимикробная химиотерапия: Руководство для врачей. М.: Боргес, 2002. 429 с.
18. Аверьянов А. В. Хламидийная и микоплазменная инфекция при патологии нижних дыхательных путей // Лечебное дело. 2009. № 4. С. 52–62.

Е. В. Белова 1 , кандидат медицинских наук
Т. А. Капустина, доктор медицинских наук
А. Н. Маркина, кандидат медицинских наук

Как передается оральный хламидиоз

Хламидиоз может передаваться тремя способами:

• бытовой;
• контактный;
• интранатальный.

Наиболее часто вирус передается половым путем. Передача может происходить вагинальным, оральным или анальным способом. Может передаваться от животных, птиц и грызунов, а также заноситься в организм человека с различных поверхностей, например, с кафеля в общем душе бассейна или с бытовых предметов больного человека. Возможно инфицирование через плаценту и при родах.

Инкубационный период инфекции длится 72 часа. Уже на третьи-четвертые сутки проявляются первые симптомы.

Группа риска

Чаще всего, хламидиоз идентифицируется у молодых людей, которых не смущают беспорядочные половые связи или в семейных парах, где неверен один из партнеров. Высокий уровень распространения данного заболевания обусловлен бессимптомным течением болезни в большинстве случаев. На протяжении нескольких лет человек может являться носителем заболевания и даже не подозревать об этом. Со временем хламидиоз приводит к очень серьезным осложнениям, таким как:

• бесплодие;
• спайки на матке;
• цистит;
• простатит;
• пиелонефрит и др.

Будьте осторожны

По статистике более 1 миллиарда человек заражено паразитами. Вы даже можете не подозревать, что стали жертвой паразитов.

Определить наличие паразитов в организме легко по одному симптому — неприятному запаху изо рта. Спросите близких, пахнет ли у вас изо рта утром (до того, как почистите зубы). Если да, то с вероятностью 99% вы заражены паразитами.

Заражение паразитами приводит к неврозам, быстрой утомляемости, резкими перепадами настроениями, в дальнейшим начинаются и более серьезные заболевания.

У мужчин паразиты вызывают: простатит, импотенцию, аденому, цистит, песок, камни в почках и мочевом пузыре.

У женщин: боли и воспаление яичников. Развиваются фиброма, миома, фиброзно-кистозная мастопатия, воспаление надпочечников, мочевого пузыря и почек. А так же сердечные и раковые заболевания.

Сразу хотим предупредить, что не нужно бежать в аптеку и скупать дорогущие лекарства, которые, по словам фармацевтов, вытравят всех паразитов. Большинство лекарств крайне неэффективны, кроме того они наносят огромный вред организму.

Что же делать? Для начала советуем почитать статью с главного института паразитологии Российской Федерации. В данной статье раскрывается метод, с помощью которого можно почистить свой организм от паразитов без вреда для организма. Читать статью >>>

Симптоматика оральной формы хламидиоза

Симптомы хламидиоза в горле:

• инкубационный период трое-четверо суток;
• первый симптом – это воспаленный покрасневший язык, а также боли в горле, на котором отмечается соответствующий белесый или желтоватый налет;
• неприятный запах из ротовой полости;
• увеличение региональных лимфоузлов;
• человек быстро утомляется, чувствует слабость, на лицо общая интоксикация, процесс может сопровождаться повышением температуры тела.

Через десять дней симптомы, даже без лечения, исчезают или начинают появляться несколько позже регулярно в менее выраженной форме. Со временем без соответствующего лечения хламидиоз гортани переходит в хроническую форму. При затяжном течении болезнь под воздействием провоцирующих факторов, обостряется, и каждый раз поражает новые органы и системы, постепенно выводя их из строя.

Симптоматика заболевания не специфическая, поэтому ее практически невозможно отличить от других инфекций.

Медикаментозное лечение

Лечение хламидиоза в горле действует в двух основных направлениях. Это комплексная терапия, направленная на уничтожение возбудителя и лечение сопутствующих нарушений в системах органов и повышение иммунитета.

Главная роль в лечении хламидиоза отдается антибиотикам. Хламидии паразитируют в горле внутри клеток, поэтому и спектр препаратов ограничен теми, которые могут проникать внутриклеточно. Такими свойствами характеризуются тетрациклины, фторхинолы, макролиты. Из препаратов назначают один из антибиотиков: азитромицин, джозамицин, кларитромицин, офлоксацин. Применять необходимо курсом 7-10 дней, при осложнениях урогенитального хламидиоза курс продлевают от 14 до 21 дня. С целью профилактики молочницы вместе с антибиотиками назначают нистатин, натамицин, флуконазол, итраконазол. Для профилактики дисбактериоза прописывают эубиотические препараты.

Показано применение иммуномодуляторов для нормализации иммунного статуса и для участия в непосредственном уничтожении хламидий. Из медикаментов прописывают: меглумина акридонацетат, ИФН альфа2, гропринозин, интерфероновую группу.

Лечение будет успешным при использовании препаратов, которые способны накапливаться в клетках и обладают высоким антихламидийным действием. Во время лечения медикаментами будет перекрываться шесть-семь циклов развития бактерий, соответственно, от 48 до 72 часов. Для назначения адекватного лечения должна быть учтена степень инфицирования.

Через три-четыре недели проводят контрольное исследование. Неправильно подобранное лечение может стать причиной осложнений.

Профилактические меры

Во время лечения одного из партнеров лучше всего ограничить половые контакты или использовать барьерные контрацептивы. Здоровому партнеру должны быть назначены соответствующие профилактические препараты и иммуномодуляторы. Пациент должен пользоваться только личными предметами быта. Уборка дома и санузла может производиться только с антибактериальным средством, особенно, если в семье есть дети, потому как очень велик риск заражения ребенка бытовым способом. Все вещи и постельное белье необходимо проглаживать с двух сторон.

Профилактика хламидиоза совершенно не отличается от предупреждения других венерических заболеваний. Прежде всего, это смена образа жизни, исключение случайных половых контактов, тщательная гигиена урогениталий. Несколько раз в год оба партнера должны посещать врача и сдавать анализы на ИППП.

При инфицировании хламидиозом и во время терапии все партнеры по сексу должны тоже пролечиться, чтобы не возник риск повторного заражения.

Правилам профилактики следовать не сложно, намного сложнее лечить заболевание в хронической форме.

Хламидиоз в горле – одно из самых неприятных венерических заболеваний. Наиболее часто передается половым путем. При своевременном выявлении лечится довольно успешно. Профилактикой данного заболевания является ведение здорового образа жизни и наличие одного постоянного сексуального партнера.

Аннотация научной статьи по клинической медицине, автор научной работы — Капустина Т. А., Игнатова И. А., Парилова О. В., Макаревич С. В., Кин Т. И.

Представлены результаты клинико-эпидемиологического исследования, проведенные в отношении хламидийного поражения слизистой оболочки носа, его придаточных пазух и носоглотки у детей и взрослых лиц с острой и хронической патологией верхних дыхательных путей. Установлена высокая частота сопряженности воспалительных заболеваний носа и носоглотки с хламидийной инфицированностью в 47-68% в зависимости от заболевания. Показаны клинико-лабораторные особенности проявления хламидийной инфекции , локализующейся в слизистой оболочке носа и носоглотки .

Похожие темы научных работ по клинической медицине , автор научной работы — Капустина Т. А., Игнатова И. А., Парилова О. В., Макаревич С. В., Кин Т. И.

Clinical epidemiologic peculiarities of nose and rhinopharynx chiamydiane infection

We show the results of clinical epidemiologic research, carried out for chlamydiae affection of nose mucous, nose sinus and rhinopharynx in adults and children with acute and chronic pathology of upper respiratory tract. We found out high frequency of combination of inflammatory diseases of nose and rhinopharynx with chlamydiae infection, namely 47% to 68% depending from the type of the disease. We showed clinical laboratory peculiarities of the signs of chlamydiae infection located in mucous of nose and rhinopharynx.

шении в сравнении с контрольной группой пиковых и скоростных параметров флуоресценции на адреналин (Р Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Мы посчитали возможным при анализе научного материала объединить больных с аллергическим и вазомоторным ринитом в одну группу — группу гиперчувствительных ринитов, так как не всегда возможно привести весомые доказательства наличия аллергического раздражителя, кроме этого, зачастую у больных одновременно обнаруживается гиперчувствительность к неспецифическим и специфическим стимулам.

Учитывая тенденцию к росту во всем мире хламидийной инфекции [1,2,5,7], недооценку оториноларингологами роли этого микроорганизма в развитии ЛОР-патологии, немногочисленность научных работ по данной тематике, цель нашего исследования состояла в изучении особенностей эпидемиологических и клини-ко-лабораторных проявлений хламидийной инфекции слизистой оболочки носа и носоглотки.

Материалы и методы

Под нашим наблюдением находилось 224 больных в возрасте от 3 до 65 лет с выявленной хламидийной инфекцией носа, носоглотки и придаточных пазух носа. Контрольная группа составила 24 человека без острой и хронической воспалительной патологии ЛОР-органов и других систем организма. Нами была произведена идентификация Chlamydia trachomatis и Chlamydophila pneumoniae, входящих в одно семейство Chlamydiacea, но принадлежащих к разным родам (соответственно к роду Chlamydia и Chlamydophila).

Для выявления хламидийных возбудителей в слизистой оболочке носа и глотки проводили два метода прямого его выявления: полимеразно-цепную реакцию с исполь-

Лицам с гиперчувствительным ринитом проводилась оценка концентрации сытороточнык иммуноглобулинов изотипов M, A, G и циркулирующих иммуннык комплексов методом радиальной иммунодиффузии в геле (G.Manchini et al., 1965). Уровень общего иммуноглобулина Е определялся с помощью моноклональнык антител. Исследование клеточного иммунитета проводилась методом непрямой иммунофлуоресценции с использованием моноклональных антител к экспрессированныш поверхностным клеточным антигенам лимфоцитов (CD3+, CD4+, CD8+, CD16+, CD72+). У всех больнык гиперчувствитель-ныш ринитом определись наличие и уровень специфического иммуноглобулина E, а также целенаправленно велся опрос в отношении возможный ирритантов и аллергенов.

Описательная статистика показателей, оценка их точности и достоверности, оценка значимости различий показателей в группах проводилась с помощью ППП Microsoft Excel и Statistica 5.0 for Windows. При проверке статистической гипотезы о соответствии изучаемых количественных признаков закону нормального распределения использовался метод Шапиро-Уилки. Учитывая, что критерии Шапиро-Уилки в большинстве полученный нами эмпирических распределений быти больше принятой критической величины (0,05), то сравнение групп быто проведено с использованием непараметрического метода Ман-на-Уитни. Оценка значимости различий относительный величин частоты в независимый группах проводилась по z-критерию.

Описание анализируемых количественных переменных представлено в виде медианы и нижнего и верхнего квартилей, для бинауральнык признаков — в виде относительной частоты и 95% доверительного интервала (ДИ) с поправкой на непрерытность. Для определения относительной частоты и ее 95% доверительного интервала менее 25% и более 75% применялась вспомогательная переменная Фишера.

Результаты и обсуждение

Результаты проведенный исследований показали высокую частоту вышвления хламидийной инфекции у лиц с острыши и хроническими воспалительными заболеваниями верхних дыкательных путей: более чем у половины больных. Так, хламидийные структуры быти обнаружены в мазках-отпечатках у 37 (66%) из 56 детей с хроническим аденоидитом, протекающем на фоне гипертрофии носоглоточной миндалины II и III степени. У взрослый лиц, страдающих острыш и хроническим гайморитом, результаты исследования мазков-соскобов на наличие хламидийных антигенов были положитель-ныши соответственно в 67% (у 6 из 9) и в 68% (у 17 из 25) больных.

У больных с хронической патологией носа и носоглотки значительно чаще обнаруживалась Chlamydophila pneumoniae, соответственно у детей и у взрослых лиц в 51% и в 71% случаев. Одновременное наличие двух видов хламидийного возбудителя обнаружено в 12% случаев у взрослый и в 30% — у детей.

Несколько иная картина отмечалась в группе взрослых лиц с острыми заболеваниями придаточных пазух носа: хламидийная микст-инфекция вышвлялась у половины больныгх (50%). Но, также как и у больных с хронической патологией верхних дыхательных путей, частота обнаружения Chlamydophila pneumoniae превалировала над частотой Chlamydia trachomatis и составила 33% против 17%.

Из 134 больнык с аллергическим и вазомоторныш ринитом гиперчувствительность к различным стимулам

(физическим, химическим, пищевым, лекарственным, пыльцевым, бытовым и т.д.) по данным анамнеза, по результатам кожных реакций или по определению содержания специфического IgE была обнаружена только у 90 лиц.

У лиц с гиперчувствительными формами хронического ринита хламидийные антигены были идентифицированы у 63 (47%, 95% ДИ 37-56%) больных. Среди лиц с установленными хламидиями значительно чаще (р Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Наличие хламидийной инфекции, Отсутствие

Лейкоциты, 109/л 6,2 (5,1-7,4) 7 (5,7-8,3) 5,3 (4,6-5,8)**

Эозинофилы, % 3 (2-4) 2 (2-6) 1(0-1)***

Эозинофилы, 109/л 0,2 (0,1-0,3) 0,2 (0,1-0,4) 0,04(0 — 0,1)***

Сегментоядерные, % 64,5 (56-68) 61 (58-70) 59 (50-67)

Сегментоядерные, 109/л 3,9 (2,8-4,7) 4,1 (3,3-5,6) 3,0 (2,5-3,6)*

Лимфоциты, % 27 (22-32) 27 (17-29) 36 (29-44)*

Лимфоциты, 109/л 1,7 (1,4-2) 1,5 (1,1-2,5) 1,9 (1,5-2,3)**

Моноциты, % 6(4-10) 7 (4-8) 4 (2-6)**

Моноциты, 109/л 0,3 (0,2-0,4) 0,4 (0,2-0,6)* 0,2 (0,2-0,3)*

СОЭ, мм/час 5(7-11) 6 (5-11)

Примечание: здесь и в табл.2 символами * (* - р Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

ЦИК, у.е. 21 (10-54) 24 (13-37) 17 (8-34)*

IgM, г/л 1,6 (1-2,1) 1,4 (1-1,7) 0,8 (0,4-1,6)**

IgA, г/л 1,8 (1,3-2,2) 2,8 (1-3) 1,4 (1,1-1,5)*

IgG, г/л 11(9-14) 12,5 (8-16) 9(9-12)

Циркулирующих иммунных комплексов было зафиксировано больше у лиц с хламидийной инфекцией. Соотношение концентраций СД4+Т-лимфоцигов и СД8+Т-лимфоцитов, характеризующего иммунорегуля-торный индекс, статистически значимо было ниже в группе лиц с гиперчувствительным ринитом, сочетан-ным с хламидийной инфекцией. Концентрация общих иммуноглобулинов изотипов А и М была выше у больных лиц в сравнении со здоровыми лицами.

При сравнении больных с гиперчувствительными ринитами, сопряженными и не сопряженными с хла-мидийной инфекцией, различия были получены по значительно меньшему числу показателей. В группе с выявленной хламидийной инфекцией отмечались более высокий уровень относительного показателя CD4+Т-лимфоцитов, за счет чего иммунорегуляторный индекс был в этой группе статистически значимо выше.

Итак, хламидийная инфекция у детей и взрослых, страдающих острыми и хроническими воспалительными заболеваниями верхних дыхательных путей, имеет высокую распространенность (47-68%). Большей троп-

ностью к слизистой оболочке глотки и носа обладают представители вида CЫamydophila рпеитотае. Серологические тесты по определению противохламидий-ных антител в сыворотке крови в двух третьих случаях не подтверждают положительные результаты тестов по выявлению хламидийных антигенов в слизистой оболочке носа. Этот факт объясняется локальностью инфекционного процесса и слабой антигенной нагрузкой при местном и часто вялотекущем хламидийном воспалении.

В группе больных с гиперчувствительными ринитами, ассоциированными с хла-мидийной инфекцией, значительно чаще наблюдались аллергические заболевания других органов и систем организма. Это связано с инициируемой этим микроорганизмом сенсибилизацией и с последующей аллергической перестройкой организма. У больных с ги-перчувствительны-ми ринитами, сопряженными с хламидийной инфекцией, отмечается более тяжелое течение ринита, что проявляется частыми обострениями.

Изменения в лейкограмме и в иммунограмме у лиц с гиперчувствительной формой ринита соответствуют стандартному ответу организма на имеющейся воспалительный процесс, угнетению Т-клеточного и активизации В-клеточного звеньев иммунитета. Повышение относительных и абсолютных показателей эозино-фильных лейкоцитов в сравнении с референтными показателями указывает на более активную деятельность этих клеток, поддерживающих состояние сенсибилизации и вызывающие или усугубляющие аллергические реакции.

Выявленные изменения в лейкограмме и иммунном статусе у больных с гиперчувствигельным ринитом свидетельствуют о системном влиянии патологического процесса, локализованного в слизистой оболочке носа, на организм человека, вызывающим дисбаланс в механизмах гомеостаза, причем наличие хламидийной инфекции способствует усилению этих нарушений.

CLINICAL EPIDEMIOLOGIC PECULIARITIES OF NOSE AND RHINOPHARYNX

T.I.Kapustina, I.A.Ignatova, O.V.Parilova, S.V.Makarevich, T.I.Kin (State Medical Research Institute for Northern Problems of Siberian Division of Russian Academy of Medical

We show the results of clinical epidemiologic research, carried out for chlamydiae affection of nose mucous, nose sinus and rhinopharynx in adults and children with acute and chronic pathology of upper respiratory tract. We found out high frequency of combination of inflammatory diseases of nose and rhinopharynx with chlamydiae infection, namely 47% "to 68% depending from the type of the disease. We showed clinical laboratory peculiarities of the signs of chlamydiae infection located in mucous of nose and rhinopharynx.

2 Гранитов В.М. Хламидиозы. — М.: Медицинская книга, 2002. — 187 с.

3. Демченко Е.В., Иванченко Г. Ф., Прозоровская К.Н. и др. Клиника и лечение хламидийного ларингита с применением амиксина // Вестник оториноларингологии. — 2000. — № 5. — С.58-60.

4. Исхаки Ю.Б. Аллергия в оториноларингологии. — Душанбе, 1980. — 169 с.

5. Кротов С.А., Кротова В.А., Юрьев С.Ю. Хламидиозы: эпидемиология, характеристика возбудителя, методы

лабораторной диагностики, лечение генитального хла-мидиоза. - Кольцово, 1998. - 62 с. Линьков В.И., Цурикова Т.П., Чурилина И.Е., Панъкина H.A. Значение хламидийной инфекции в развитии хронических воспалительных заболеваний глотки // Новости оториноларингологии и логопатологии. — 1995.

— Москва, 2002. — 390 с.

ТЕТЕНЕВ Ф.Ф., АГЕЕВА Т.С., ДАНИЛЕНКО В.Ю., ДУБАКОВ A.B. -

ПИКОВАЯ СКОРОСТЬ ВЫДОХА И БРОНХИАЛЬНОЕ СОПРОТИВЛЕНИЕ У БОЛЬНЫ1Х С ВНЕБОЛЬНИЧНОЙ

Ф. Ф. Тетенев, Т. С. Агеева, В.Ю. Даниленко, A.B. Дубаков

(Сибирский государственный медицинский университет, ректор — проф. В.В. Новицкий, кафедра пропедевтики внутренних болезней, зав. — проф. Ф.Ф. Тетенев; Томский военно-медицинский институт, начальник — проф. О.А Жаткин, кафедра терапии усовершенствования врачей, зав. — доц. Т.С. Агеева)

Резюме. У 52 больных внебольничной пневмонией (ВП) проведен пикфлоуметрический мониторинг с анализом результатов пиковой скорости выдоха (ПСВ) и сопоставлением их с бронхиальным сопротивлением (Raw), определенным бодиплетизмографически. В 88,5% больных ВП при поступлении в стационар ПСВ находилась ниже индивидуальных должных величин (ИДВ), в среднем — 59,27+2,16% ИДВ. Rawгрегuстрuровалось в пределах значений должных величин (0,22+0,01 кПаОсек/л) даже в случаяхрезкого снижения ПСВ. Снижение ПСВ у больных ВП не могло свидетельствовать о нарушении бронхиальной проходимости, поскольку одновременного повышения Raw зарегистрировано не было. Снижение ПСВ в остром периоде ВП, вероятно, было обусловлено внелегочными факторами: слабостью дыхательной мускулатуры и интоксикацией.

Ключевые слова. Внебольничные пневмонии, пиковая скорость выдоха, бронхиальное сопротивление.

У больных пневмонией часто регистрируются значительные нарушения вентиляционной функции легких [1]. В качестве причин, вызывающих снижение вентиляционных показателей, чаще всего указываются выраженные рестриктивные изменения в легочной паренхиме и обструктивные изменения в бронхах. Возможность развития при пневмониях бронхообструктив-ного синдрома, в основе которого лежит локальная обструкция (воспалительный отек слизистой оболочки бронхов) и/или механическая обтурация воздухоносных путей скопившимся эндобронхиальным содержимым, а также местный или генерализованный бронхос-пазм, у многих не вызывает сомнений [2,3,4,11]. В последние годы появились исследования, свидетельствующие о том, что почти в 80% случаев бронхообструк-тивного синдрома, обнаруженного у больных пневмонией, подтвержден его бронхоспастический генез [5]. Для диагностики последнего были использованы спирография и пикфлоуметрия. Мы не встретили в литературе данных, об исследовании с этой целью показателя, достоверно характеризующего состояние бронхиальной проходимости — бронхиального сопротивления.

В связи с этим целью исследования было проведение пикфлоуметрического мониторинга у больных вне-больничной пневмонией с момента поступления в стационар и в течение всего периода госпитализации, выполнение анализа результатов пиковой скорости выдоха (ПСВ) и динамики ряда клинических проявлений вне-больничной пневмонии, а также сопоставление их с состоянием бронхиального сопротивления (Raw).

Материалы и методы

Обследованы 52 больных внебольничной пневмонией, госпитализированных в соответствии с современными показаниями к госпитализации в стационар в порядке ско-

рой помощи, в возрасте от 15 до 68 лет (средний возраст — 35,3±2,01года), 39 мужчин и 13 женщин.

Диагноз пневмонии соответствовал современным стандартам диагностики внебольничной пневмонии [7,10], в частности, он основывался на рентгенологическом подтверждении очагово-инфильтративного процесса в легких, в части случаев для уточнения объема и степени поражения легочной ткани была проведена компьютерная томография легких. Диагностика этиологии пневмонии основывалась на результатах бактериологического исследования мокроты с определением КОЕ в 1 мл мокроты, и проведением ПЦР при подозрении микоплазменной этиологии пневмонии.

В исследование не включали пациентов с пневмониями крайне тяжелого течения, осложненными экссудатив-ным плевритом и деструкцией легочной ткани, а также в возрасте старше 70 лет, с сопутствующими заболеваниями сердца, печени, почек, хронической обструктивной патологией легких, беременных женщин.

У больных непосредственно при поступлении в стационар и во время периода госпитализации выполнялось тщательное ежедневное обследование с целью поиска физических признаков бронхиальной обструкции. Также при

(Россия). ПСВ определялась трижды, и выбиралось наи большее из полученных значений. Индивидуальная должная величина (ИДВ) ПСВ для каждого больного устанавливалась по общепринятым стандартным значениям ПСВ в зависимости от роста, возраста и пола [9].

Полученные данные подвергались статистической обработке при помощи пакетов программ Microsoft Excel 2002 на персональном компьютере. Для оценки достоверности различий данных использовали t-критерий Стьюдента. Критический уровень значимости (p) задавался величиной 0,05. Результаты исследования представлены как X±m, где X — среднее значение, m — ошибка среднего.

Результаты и обсуждение

При физическом обследовании ни у одного из наблюдаемых больных внебольничной пневмонией не было обнаружено аускультативных признаков генерализованной бронхиальной обструкции. И только у 9 в