Инфекционная анемия лососевых это
Полный текст:
Цель данной работы заключается в анализе современных научных представлений об инфекционной анемии лососевых (ИАЛ), этиологически связанной с одноимённым вирусом ISAV (infectious salmon anemia virus) (Orthomyxoviridae, Isavirus).
Обсуждение. ИАЛ представляет собой смертельно опасное заболевание рыб семейства Salmonidae, которое начало активно распространяться по лососевым рыборазводным фермам, начиная с конца XX века. На сегодняшний день, ИАЛ представляет серьёзную угрозу рыбной промышленности, поскольку отсутствуют не только анти-ISAV химиопрепараты и эффективные вакцины, но и научно-обоснованные представления об экологии ISAV. В предлагаемом обзоре обсуждаются данные об истории открытия ISAV, его таксономическом положении, строении вириона, структуре генома и экологии ISAV, клинических проявлениях, патогенезе и лабораторной диагностике, мероприятиях в эпизоотическом очаге по предотвращению распространения и профилактике ИАЛ, меры по защите от лососевых вшей и использованные подходы к разработке анти-ISAV вакцин. Принципиальное значение имеют данные о том, что ISAV способен передаваться лососевыми вшами – веслоногими рачками (Copepoda: Caligidae), что позволяет относить ISAV к экологической группе арбовирусов, передающихся путём биологической трансмиссии членистоногими (копеподами) позвоночным животным (лососевым рыбам). Это единственный известный пока пример, когда в качестве вектора для арбовирусов выступают представители ракообразных (Crustacea).
д.б.н., доцент, ведущий научный сотрудник лаборатории микробиологии, 690922, Приморский край, г. Владивосток, о. Русский, ул. акад. Касьянова, д. 25;
заведующий вирусологической лабораторией, 690022, г. Владивосток, пр-т 100-летия Владивостоку, д. 159;
младший научный сотрудник,
младший научный сотрудник,
к.м.н., старший научный сотрудник лаборатории молекулярной генетики,
к.б.н., старший научный сотрудник лаборатории вирусологии,
д.б.н., профессор; директор Научно-исследовательского института экспериментальной и клинической медицины Сибирского отделения Российской академии наук,
к.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории экологии микроорганизмов Школы биомедицины Дальневосточного федерального университета,
к.б.н., доцент; учёный секретарь,
1. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. Под ред. академика РАН Д.К. Львов. Москва: МИА, 2013. 1200 с.
2. Lvov D.K., Shchelkanov M.Yu., Alkhovsky S.V., Deryabin P.G. Zoonotic Viruses of Northern Eurasia. Taxonomy and Ecology. Elsevier Academic Press, 2015. 440 p.
3. Salama N.K., Murray A.G. A comparison of modelling approaches to assess the transmission of pathogens between Scottish fish farms: the role of hydrodynamics and site biomass // Prev. Vet. Med. 2013. V. 108. N4. P. 285–293. doi: 10.1016/j.prevetmed.2012.11.005.
4. Christiansen D.H., Østergaard P.S., Snow M., Dale O.B., Falk K. A low-pathogenic variant of infectious salmon anemia virus (ISAV-HPR0) is highly prevalent and causes a non-clinical transient infection in farmed Atlantic salmon (Salmo salar L.) in the Faroe Islands // J. Gen. Virol. 2011. V. 92. Pt. 4. P. 909–918. doi: 10.1099/vir.0.027094-0.
5. Kibenge M.J., Iwamoto T., Wang Y., Morton A., Routledge R., Kibenge F.S. Discovery of variant infectious salmon anaemia virus (ISAV) of European genotype in British Columbia, Canada // Virol. J. 2016. V. 13. N 3. doi: 10.1186/s12985-015-0459-1.
6. Gustafson L., Ellis S., Bouchard D., Robinson T., Marenghi F., Warg J., Giray C. Estimating diagnostic test accuracy for infectious salmon anaemia virus in Maine, USA // J. Fish Dis. 2008. V. 31. N 2. P. 117–125. doi: 10.1111/j.1365-2761.2007.00873.x.
7. Godoy M.G., Suarez R., Lazo E.S., Llegues K.O., Kibenge M.J., Wang Y., Kibenge F.S. Genetic analysis and comparative virulence of infectious salmon anemia virus (ISAV) types HPR7a and HPR7b from recent field outbreaks in Chile // Virol. J. 2014. V. 11. N. 204. doi: 10.1186/s12985-014-0204-1.
8. Thorud K., Djupvik H.O. Infectious anaemia in Atlantic salmon (Salmo salar L.) // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. 1988. N 8. P. 109–111.
9. Временная инструкция по борьбе с заболеванием лососевых рыб инфекционной анемией. Утверждена 01.12.1970 главным управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР. М.: Минсельхоз, 1970. 5 с.
10. Hastein T., Hill B.J., Winton J.R. Successful aquatic animal disease emergency programmes // Rev. Sci. Tech. 1999. V. 18. P. 214–227.
11. Hovland T., Nylund A., Watanabe K., Endresen C. Observation of infectious salmon anemia virus in Atlantic salmon, Salmo salar L. // J. Fish Dis. 1994. V. 17. P. 291–296.
12. Dannevig B.H., Falk K., Krogsrud J. Infectivity of internal tissues of Atlantic salmon, Salmo salar L., experimentally infected with the aetiological agent of infectious salmon anemia (ISA) // J. Fish. Dis. 1994. V. 17. P. 613–622.
13. Dannevig B.H., Falk K., Press C.M. Propagation of infectious salmon anaemia (ISA) virus in cell culture // Vet. Res. 1995. V. 26. N 5–6. P. 438–442.
14. Falk K., Dannevig B.H. Demonstration of infectious salmon anaemia (ISA) viral antigens in cell cultures and tissue sections // Vet. Res. 1995. V. 26. N 5–6. P. 499–504.
15. Dannevig B.H., Falk K., Namork E. Isolation of the causal virus of infectious salmon anaemia (ISA) in a long-term cell line from Atlantic salmon head kidney // J. Gen. Virol. 1995. V. 76. Pt. 6. P. 1353–1359. doi: 10.1099/0022-1317-76-6-1353.
16. Sommer A.I., Mennen S. Multiplication and haemadsorbing activity of infectious salmon anaemia virus in the established Atlantic salmon cell line // J. Gen. Virol. 1997. V. 78. Pt. 8. P. 1891–1895. doi: 10.1099/0022-1317-78-8-1891.
17. Mjaaland S., Rimstad E., Falk K., Dannevig B.H. Genomic characterization of the virus causing infectious salmon anemia in Atlantic salmon (Salmo salar L.): an Orthomyxo-like virus in a teleost // J. Virol. 1997. V. 71. N 10. P. 7681–7686.
18. Krossoy B., Hordvik I., Nilsen F., Nylund A., Endresen C. The putative polymerase sequence of infectious salmon anemia virus suggests a new genus within the Orthomyxoviridae // J. Virol. 1999. V. 73. N 3. P. 2136–2142.
19. Альховский С.В., Львов Д.К., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Дерябин П.Г., Львов Д.Н., Львов С.C., Самохвалов Е.И., Гительман А.К., Ботиков А.Г., Краснослободцев К.Г. Генетическая характеристика вируса Баткен (BKNV – Batken virus) (Orthomyxoviridae, Thogotovirus), изолированного из иксодовых клещей Hyalomma marginatum Koch, 1844 и комаров Aedes caspius Pallas, 1771 и Culex hortensis Ficalbi, 1889 в Средней Азии // Вопросы вирусологии. 2014. Т. 59. N 2. С. 33–37.
20. Львов Д.К., Альховский С.В., Щелканов М.Ю., Щетинин А.М., Дерябин П.Г., Аристова В.А., Гительман А.К., Самохвалов Е.И., Ботиков А.Г. Таксономический статус вируса Тюлёк (Tyulek – TLKV) (Orthomyxoviridae, Quaranjavirus, группа Кваранфил), изолированного в Киргизии из клещей Argas vulgaris Filippova, 1961 (Argasidae) из норовых биотопов с гнёздами птиц // Вопросы вирусологии. 2014. Т. 59. N 2. С. 28–32.
21. Щелканов М.Ю., Федякина И.Т., Прошина Е.С., Пономаренко Р.А., Львов Д.Н., Чумаков В.М., Галкина И.В., Бурцева Е.И., Львов Д.К. Таксономическая структура Orthomyxoviridae: современное состояние и ближайшие перспективы // Вестник РАМН. 2011. N 5. С. 12–19.
22. Hastings T., Olivier G., Cusack R., Bricknell I., Nylund A., Binde M., Munro P., Allan C. Infectious salmon anaemia // Bull. Euro. Assoc. Fish Pathol. 1999. V. 19. P. 286–288.
23. Cook-Versloot M., Griffiths S., Cusack R., McGeachy S., Ritchie R. Identification and characterisation of infectious salmon anaemia virus (ISAV) haemagglutinin gene highly polymorphic region (HPR) type 0 in North America // Bull. Euro. Assoc. Fish Pathol. 2004. V. 24. P. 203–208.
24. McBeath A.J., Bain N., Snow M. Surveillance for infectious salmon anaemia virus HPR0 in marine Atlantic salmon farms across Scotland // Dis. Aquat. Organ. 2009. V. 87. P. 161–169. doi: 10.3354/dao02128.
25. Fourrier M., Lester K., Markussen T., Falk K., Secombes C.J., McBeath A., Collet B. Genotype promote viral fusion and activation by an ubiquitous host protease // PLoS One. 2015. V. 10. N 10. P. e0142020. doi: 10.1371/journal.pone.0142020.
26. Markussen T., Sindre H., Jonassen C.M., Tengs T., Kristoffersen A.B., Ramsell J., Numanovic S., Hjortaas M.J., Christiansen D.H., Dale O.B., Falk K. Ultra-deep pyrosequencing of partial surface protein genes from infectious salmon anaemia virus (ISAV) suggest novel mechanisms involved in transition to virulence // PLoS One. 2013. V. 8. P. e81571. doi: 10.1371/journal. pone.0081571.
27. Cardenas C., Carmona M., Gallardo A., Labra A., Marshall S.H. Coexistence in field samples of two variants of the infectious salmon anemia virus: a putative shift to pathogenicity // PLoS One. 2014. V. 9. P. e87832. doi: 10.1371/journal.pone.0087832.
28. Kibenge F.S.B., Garate O.N., Johnson G., Arriagada R., Kibenge M.J.T., Wadowska D. Isolation and identification of infectious salmon anaemia virus (ISAV) from Coho salmon in Chile // Dis. Aquat. Org. 2001. V. 45. P. 9–18. doi: 10.3354/dao045009.
29. MacWilliams C., Johnson G., Groman D., Kibenge F.S.B. Morphologic description of infectious salmon anaemia virus (ISAV)-induced lesions in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) compared to Atlantic salmon (Salmo salar) // Dis. Aquat. Org. 2007. V. 78. P. 1–12. doi: 10.3354/dao01866.
30. Nylund A., Wallace C., Hovland T. The possible role of Lepeophtheirus salmonis (Kroyer) in the transmission of infectious salmon anemia // In: Pathogens of wild and farmed fish: sea lice / Eds.: G. Boxshall, D. Defaye. – Chichester: Ellis Harwood Ltd., 1993. P. 367–373.
31. Gustafson L., Ellis S., Robinson T., Marenghi F., Endris R. Efficacy of emamectin benzoate against sea lice infestations of Atlantic salmon, Salmo salar L.: evaluation in the absence of an untreated contemporary control // J. Fish Dis. 2006. V. 29. N 10. P. 621–627. doi: 10.1111/j.1365-2761.2006.00761.x.
32. Gustafson L., Antognoli M., Lara Fica M., Ibarra R., Mancilla J., Sandoval del Valle O., Enriquez Sais R., Perez A., Aguilar D., Madrid E., Bustos P., Clement A., Godoy M.G., Johnson C., Remmenga M. Risk factors perceived predictive of ISA spread in Chile: applications to decision support // Prev. Vet. Med. 2014. V. 117. N 1. P. 276–285. doi: 10.1016/j.prevetmed.2014.08.017.
33. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Львов Д.К. Грипп: история, клиника, патогенез // Лечащий врач. 2011. N 10. С. 33–38.
34. Weli S.C., Aamelfot M., Dale O.B., Koppang E.O., Falk K. Infectious salmon anaemia virus infection of Atlantic salmon gill epithelial cells // Virol. J. 2013. V. 10. N 5. doi: 10.1186/1743-422X-10-5.
35. Aamelfot M., McBeath A., Christiansen D.H., Matejusova I., Falk K. Infectious salmon anaemia virus (ISAV) mucosal infection in Atlantic salmon // Vet. Res. 2015. V. 46. N 120. doi: 10.1186/s13567-015-0265-1.
36. Hellebø A., Vilas U., Falk K., Vlasak R. Infectious salmon anemia virus specifically binds to and hydrolyzes 4-O-acetylated sialic acids // J. Virol. 2004. V. 78. N 6. P. 3055–3062.
37. Щелканов М.Ю., Колобухина Л.В., Львов Д.К. Коронавирусы человека (Nidovirales, Coronaviridae): возросший уровень эпидемической опасности // Лечащий врач. 2013. N 10. P. 49–54.
38. Nerette P., Stryhn H., Dohoo I., Hammell L. Using pseudogold standards and latent-class analysis in combination to evaluate the accuracy of three diagnostic tests // Prev Vet Med. 2008. V. 85. N 3-4. P. 207–225. doi: 10.1016/j.prevetmed.2008.01.011.
39. Kibenge M.T., Opazo B., Rojas A.H., Kibenge F.S. Serological evidence of infectious salmon anaemia virus (ISAV) infection in farmed fishes, using an indirect enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) // Dis. Aquat. Organ. 2002. V. 51. N 1. P. 1–11. doi: 10.3354/dao051001.
40. Hoare R., Thompson K.D., Herath T., Collet B., Bron J.E., Adams A. Development, characterisation and application of monoclonal antibodies for the detection and quantification of infectious salmon anaemia virus in plasma samples using luminex bead array technology // PLoS One. 2016. V. 11. N 7. P. e0159155. doi: 10.1371/journal.pone.0159155.
41. O'Shea B., Wadsworth S., Pino Marambio J., Birkett M.A., Pickett J.A., Mordue Luntz A.J. Disruption of host-seeking behaviour by the salmon louse, Lepeophtheirus salmonis, using botanically derived repellents // J. Fish Dis. 2016. doi: 10.1111/jfd.12526.
42. Dempster T., Kristiansen T.S., Korsøen Ø.J., Fosseidengen J.E., Oppedal F. Technical note: modifying Atlantic salmon (Salmo salar) jumping behavior to facilitate innovation of parasitic sea lice control techniques // J. Animal Sci. 2014. V. 89. N 12. P. 4281–4285. doi: 10.2527/jas.2011-3894.
43. Leclercq E., Davie A., Migaud H. Delousing efficiency of farmed ballan wrasse (Labrus bergylta) against Lepeophtheirus salmonis infecting Atlantic salmon (Salmo salar) post-smolts // Pest Manag. Sci. 2014. V. 70. N 8. P. 1274–1282. doi: 10.1002/ps.3692.
44. Lauscher A., Krossøy B., Frost P., Grove S., Kö-nig M., Bohlin J., Falk K., Austbø L., Rimstad E. Immune responses in Atlantic salmon (Salmo salar) following protective vaccination against infectious salmon anemia (ISA) and subsequent ISA virus infection // Vaccine. 2011. V. 29. N 37. P. 6392–6401. doi: 10.1016/j.vaccine.2011.04.074.
45. Wolf A., Hodneland K., Frost P., Hoeijmakers M., Rimstad E. Salmonid alphavirus-based replicon vaccine against infectious salmon anemia (ISA): impact of immunization route and interactions of the replicon vector // Fish Shellfish Immunol. 2014. V. 36. N 2. P. 383–392. doi: 10.1016/j.fsi.2013.12.018.
46. Rivas-Aravena A., Fuentes Y., Cartagena J., Brito T., Poggio V., La Torre J., Mendoza H., GonzalezNilo F., Sandino A.M., Spencer E. Development of a nanoparticle-based oral vaccine for Atlantic salmon against ISAV using an alphavirus replicon as adjuvant // Fish Shellfish Immunol. 2015. V. 45. N 1. P. 157–166. doi: 10.1016/j.fsi.2015.03.033.
47. Chang C.J., Robertsen C., Sun B., Robertsen B. Protection of Atlantic salmon against virus infection by intramuscular injection of IFNc expression plasmid // Vaccine. 2014. V. 32. N 36. P. 4695–4702. doi: 10.1016/j.vaccine.2014.05.059.
48. Caruffo M., Maturana C., Kambalapally S., Larenas J., Tobar J.A. Protective oral vaccination against infectious salmon anaemia virus in Salmo salar // Fish Shellfish Immunol. 2016. V. 54. P. 54–59. doi: 10.1016/j.fsi.2016.03.009.
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.
1. Область применения
1. Настоящая Инструкция обязательна для выполнения на всей территории Приднестровской Молдавской Республики исполнительными органами государственной власти, организациями, независимо от их организационно-правовых форм и форм собственности, должностными лицами и гражданами, в том числе индивидуальными предпринимателями.
2. Общие положения
2. Инфекционная анемия — вирусная болезнь лососевых рыб (каспийского лосося, радужной и ручьевой форели), проявляется во все времена года у рыб разных возрастных групп.
3. Диагноз на инфекционную анемию устанавливают на основании эпизоотологических, патологоанатомических данных и подтверждают биопробой (Приложение к настоящей Инструкции).
4. Для проведения биологической пробы готовят предварительно суспензию из внутренних органов подозрительных по заболеванию инфекционной анемией рыб (включая обязательно почки) и пропускают ее через мембранные фильтры № 2 и № 3 или другие фильтры аналогичного размера. Фильтрат вводят внутримышечно 5-10 здоровым форелям или лососям в дозе по 0,25 мл. При положительной биопробе через 2-3 дня должно погибнуть не менее 70% лососей и в течение 2-3 недель 100% форелей. При этом у форелей могут отсутствовать резко выраженные для инфекционной анемии клинические и патологоанатомические признаки заболевания.
5. Рыбоводные организации (хозяйства), а также естественные водоемы, в которых установлено заболевание рыб инфекционной анемией, объявляют неблагополучными по этой болезни и на них накладывают карантин.
6. По условиям карантина запрещаются:
а) ввоз икры, рыб из других водоемов и организаций (хозяйств), а также вывоз икры, рыб, кормовых водных организмов и растений из неблагополучных водоемов в благополучные;
б) совместная посадка в пруды и бассейны здоровой и больной рыбы;
в) отлов в естественных водоемах больных производителей и получение от них спермы и икры для оплодотворения;
г) дача в корм рыбе мяса и внутренних органов от больных производителей и рыб других возрастов;
д) посещение неблагополучной организации (хозяйства) посторонними лицами; спортивный лов рыбы в естественных водоемах.
7. Оздоровление организации (хозяйств) и водоемов от инфекционной анемии проводят согласно плану, разработанному ветеринарной службой и утвержденному местным исполнительным органом государственной власти.
8. В целях ликвидации заболевания:
а) устанавливают тщательное ветврачебное наблюдение за находящимися в организации (хозяйстве) производителями и рыбой других возрастных групп;
б) изолируют рыб с начальными признаками заболевания и систематически отбирают погибшую икру и личинок;
в) уничтожают явно больных и погибших рыб;
г) выпускают в естественные водоемы только клинически здоровую молодь;
д) кормление рыб производят кормом, сбалансированным по протеиновому и аминокислотному составу и обогащенным микроэлементами;
е) за обслуживающим персоналом закрепляют при работе в каждом бассейне специально выделенный инвентарь;
ж) проводят дезинфекцию ложа прудов, бассейнов, лотков, инвентаря, оборудования, спецодежды обслуживающего персонала в установленном порядке;
з) при входе на территорию организации (хозяйства), бассейнов, кормоцехов, мест хранения инвентаря и у других производственных объектов устанавливают дезковрики с 1%-ным раствором едкого натра для дезинфекции обуви обслуживающего персонала.
9. Карантин с организации (хозяйства) снимают и объявляют благополучным по инфекционной анемии по истечении одного года, а с естественного водоема — по истечении двух лет после полного прекращения заболевания и только после проведения комплекса ветеринарно-санитарных и рыбоводно-мелиоративных мероприятий.
3. Контроль и ответственность
10. Контроль за выполнением настоящей Инструкции возлагается на Государственную ветеринарную службу и иные органы государственной власти в пределах компетенции, установленной действующим законодательством Приднестровской Молдавской Республики.
11. Ответственность за нарушение настоящей Инструкции устанавливается действующими нормативными правовыми актами Приднестровской Молдавской Республики.
к «Инструкции по борьбе
с заболеванием лососевых рыб
в Приднестровской Молдавской Республике
Инфекционная анемия лососевых рыб
1. Болезнь проявляется в острой и хронической форме и особенно усиливается при температуре воды 9,5-10°С.
2. При остром течении болезни больные рыбы совершают вялые и судорожные движения, вращаются вокруг своей оси, упираются головой о дно бассейна. На кожном покрове появляются по бокам поперечные черные полосы или кожный покров становится совершенно черным.
3. Гибель основной массы рыб наступает через 7-10 дней после появления первых клинических признаков заболевания или болезнь переходит в хроническую форму. Гибель отдельных экземпляров рыб может наблюдаться и через 2-4 часа после появления признаков болезни, при этом естественная окраска кожного покрова сохраняется, но часто отмечается экзофтальмия. Среди производителей наиболее часто гибель отмечается за 2-3 месяца до взятия у них половых продуктов.
4. При патологоанатомическом вскрытии в брюшной полости обнаруживают жидкость желто-коричневого цвета. Желудок пуст, а на слизистой оболочке его обнаруживают только серо-желтую слизь. Слизистая кишечника гиперемирована, анус выпячен и иногда из него выделяется желтоватая слизь. Селезенка уменьшена в размере и имеет темно-вишневую окраску. Почки темно-серые, рыхлые, отечные, легко разрушаются и часто на поверхности их видны беловатого цвета полоски. Печень имеет желтый или серо-желтый цвет с участками гиперемии. В желчном пузыре содержится прозрачная слизь. В головном мозге отмечается резкая инъекция кровеносных сосудов и точечные кровоизлияния. Сердечная мышца бледная и дряблая. Иногда наблюдается гидроперикардит или обнаруживают фибриозные наложения под эпикардом.
5. При хроническом течении болезни годовики, двухлетки и ремонт лососей совершают быстрые поступательные движения. На радужной оболочке глаз обнаруживают участок гиперемии и кровоизлияний в виде красного кольца вокруг зрачка, экзофтальмию и полное выпадение одного или обоих глазных яблок из орбит.
6. При патологоанатомическом вскрытии обнаруживают те же изменения, что и при остром течении, а у производителей, кроме того, наблюдается сильная гиперемия ястыков.
7. Продолжительность болезни составляет 1-3 месяца. Как и при остром течении, отмечается значительная гибель рыб.
8. Источник заражения — больные рыбы, их выделения, икра, трупы рыб, погибших от инфекционной анемии.
9. Возбудитель болезни передается при контакте больных рыб со здоровыми. Другие пути распространения болезни не изучены.
10. При постановке диагноза необходимо дифференцировать инфекционную анемию от цирроидной дегенерации печени радужной форели, возникающей при скармливании рыбам кормов, бедных витаминами и содержащих повышенное количество протеина. На вскрытии при цирроидном перерождении печени отмечают обильное жировое перерождение внутренних органов и мышечной ткани. Печень принимает окраску песочного цвета и часто на поверхности видны беловатые пятна. На окрашенных гистосрезах отмечают сильное переполнение печени жиром.
11. В отдельных случаях, когда указанных в инструкции данных для постановки диагноза на инфекционную анемию рыб недостаточно, проводят и гистологическое исследование. При этом обнаруживают эозинофильные включения в клетках печени, заднем отделе кишечника и в соединительной ткани почек.
Инфекционная анемия лосося или анемия (ISA) являются вирусным заболеванием Атлантического Лосося (Salmo salar), который затрагивает рыбоводческие хозяйства в Канаде, Норвегии, Шотландии и Чили, вызывая серьезные потери для зараженных ферм. Болезнь перечислена как неэкзотическая болезнь ЕС и поэтому наблюдается близко Справочной Лабораторией Европейского сообщества для Болезней Рыбы.
Вирусология
Геном кодирует по крайней мере 10 белков.
Есть несколько отличных напряжений вируса. Наиболее распространенным является европейское напряжение и североамериканское напряжение.
Патология
Поскольку имя подразумевает, оно вызывает тяжелую анемию зараженной рыбы. В отличие от млекопитающих, эритроциты рыбы имеют ДНК и могут стать зараженными вирусами. Рыбы развивают бледные жабры и могут плавать близко к водной поверхности, проглатывая для воздуха. Однако болезнь может также развиться без рыбы, показав любые внешние симптомы болезни, рыбы поддерживают нормальный аппетит, и затем они внезапно умирают. Болезнь может медленно прогрессировать всюду по зараженной ферме и в худших случаях, уровень смертности может приблизиться к 100%. Вскрытие рыбы показало широкий диапазон причин смерти. Печень и селезенка могут быть раздуты, переполнены или частично уже мертвые. Сердечно-сосудистая система может прекратить работать, и кровь может быть загрязнена мертвыми клетками крови. Эритроциты все еще часто представляют взрыв легко, и числа незрелых и поврежденных клеток крови увеличены.
Инфекционная анемия лосося, кажется, больше всего походит на вирусы гриппа. Его способ передачи и естественные источники инфекционного вируса анемии лосося не полностью поняты. Кроме Атлантического лосося, и управляемая морем озерная форель (Salmo trutta) и радужная форель (Onchorhyncus mykiss) могут быть заражены, но не становятся больными, таким образом, об этом думают возможное, что эти разновидности могут действовать как важные перевозчики и источники вируса.
Исследование показывает, что, в то время как несколько видов Тихоокеанского лосося могут быть перевозчиками вируса, даже высокопатогенных напряжений, Тихоокеанские лососи в настоящее время показывают высокое относительное сопротивление и никакие ISAV-связанные признаки. Однако потенциал для адаптации ISAV к Тихоокеанскому лососю существует.
Эпидемиология
Осенью 1984 года новая болезнь наблюдалась у Атлантического лосося, обрабатываемого вдоль юго-западного побережья Норвегии. Болезнь, которую назвали Инфекционной анемией лосося, медленно распространялась. К июню 1988 это стало достаточно широко распространенным и серьезным, чтобы потребовать, чтобы норвежское Министерство сельского хозяйства, рыболовства и продовольствия объявило его подлежащей регистрации болезнью.
В мае 1998 ферма лосося в Озере Невис на западном побережье Шотландии сообщила о своих подозрениях во вспышке инфекционной анемии лосося. Подозрения были подтверждены, и к концу года, болезнь распространилась еще к пятнадцати фермам не только на шотландском материке, но также и на Скае и Шетланде.
Позже (2008) была другая вспышка ISA в Шетланде. ISA был обнаружен у рыбы всего от одного места, которое было с тех пор получено и останется паровым. Нет никаких доказательств, которые болезнь распространила вне этого места, но две соседних клетки SSF находятся под подозрением в явлении носителем болезни и также теперь свободны от рыбы.
В Чили ISA был сначала изолирован от фермы лосося в 1990-х и описан впервые в 2001, хотя начальное присутствие никогда не приводило к широко распространенным проблемам. Однако с июня 2007, национальная промышленность имела дело с серьезной вспышкой ISA, которая еще не была полностью подчинена контролю и была ответственна за важное снижение промышленности, закрытия многих ферм и высокого уровня безработицы. Вирус был обнаружен в Атлантической ферме лосося в архипелаге Чилое в Лос Лагосском регионе и распространился к фьордам и каналам области Aysén на юг почти немедленно
Передача вируса была продемонстрирована, чтобы произойти контактом с зараженной рыбой или их выделениями. Контакт с оборудованием или людьми, которые обращались с зараженной рыбой также, передает вирус. Вирус может выжить в морской воде, и главный фактор риска для любой незараженной фермы - своя близость к уже зараженной ферме.
Морская вошь Lepeophtheirus salmonis, маленький ракообразный паразит, который нападает на защитную слизь, весы и кожу лосося, как показывали, несли вирус пассивно на его поверхности и в его пищеварительном тракте. При лабораторных условиях Lepeophtheirus salmonis был продемонстрирован, чтобы пассивно передать ISA. Не известно, может ли Инфекционный вирус анемии лосося размножиться у морской вши, хотя это - возможность, поскольку вирусы часто зависят от вторичных векторов для передачи как Arboviruses, таких как лихорадка денге, Западный Нильский вирус или африканский вирус чумы свиней.
Диагноз
Клинические знаки и патология могут предложить инфекцию. Вирусная идентификация - возможная иммунофлюоресценция использования и PCR.
Лечение и контроль
Нет никакого лечения, как только рыбы заражены.
ISA - большая угроза жизнеспособности сельского хозяйства лосося и теперь первый из болезней, классифицированных в Списке Один из медицинского режима рыбы Европейской комиссии. Среди других мер это требует, чтобы полное уничтожение всех рыбных ресурсов было должно вспышка болезни быть подтвержденным на любой ферме. Экономические и социальные последствия и болезни и мер, используемых, чтобы управлять им, таким образом очень далеко достигают.
Инфекционная анемия лосося в настоящее время расценивается как серьезная угроза не только обработанному Атлантическому лососю, но также и к истощающимся группам диких Атлантических лососей. Недавнее исследование, включающее многолетнее исследование дикого Атлантического лосося из Северной Америки, показывает, что заразил лососей, которые выживают, инфекция производят антитела против вируса. Работа должна теперь в стадии реализации развить вакцину против ISA.
Развитие
Есть несколько отличных напряжений вируса, некоторые патогенные, и некоторые не. Наиболее распространенным является европейское напряжение и североамериканское напряжение.
Другое исследование предполагает, что этот вирус был введен в Норвегию между 1932 и 1959 и что оригинальное напряжение было европейским подтипом, найденным в Северной Америке. Напряжения, найденные в Чили, были переданы из Норвегии между 1995 и 2007.
Смертельный вирус, практически уничтоживший атлантического лосося на фермах Чили в 2007-2009 годах, теперь грозит Тихоокеанскому бассейну.
В настоящее время в Тихоокеанском бассейневесьма велика вероятность распространения вирусной анемии тихоокеанского лосося. В связи с этим, Управление Россельхознадзора по Тверской и Псковской областям информирует об усилении мер ветеринарного контроля при ввозе на таможенную территорию Таможенного союза рыбы и рыбопродукции семейства лососёвых.
С целью выявления продукции, не соответствующей ветеринарно-санитарным требованиям,специалисты государственного ветеринарного пограничного контроля будут проводить досмотр каждой поступающей партии рыбы.
История заболевания
Заболевание известно еще с 1984 года. Тогда новая болезнь, названная инфекционной анемией лососевых, была отмечена у атлантического лосося, выращиваемого на юго-западном побережье Норвегии. Болезнь распространялась медленно, но уже к июню 1988 года она получила весьма широкое распространение и стала настолько серьезной, что министерство сельского хозяйства, рыболовства и питания Норвегии объявило болезнь подлежащей регистрации.
Что такое инфекционная анемия лососевых
Инфекционная анемия лососёвых — это вирусная болезнь рыб (каспийского лосося, тихоокеанского лосося, радужной и ручьевой форели). Характеризуется она поражением кроветворных органов, центральной нервной системы и развитием тяжёлой формы анемии. Проявляется во все времена года у рыб разных возрастных групп. Болезнь может протекать в острой и хронической формах и особенно усиливается при температуре воды 9,5 — 10°. Источником инфекции являются больные рыбы, их выделения и икра.
Опасность заболевания
Вирус, вызывающий инфекционную анемию, не влияет на человека, но для рыб он смертелен. От болезни умирают как дикие лососи, так и содержащиеся на рыбных фермах. Гибель основной массы рыб наступает через 7 — 10 дней после появления первых клинических признаков заболевания или болезнь переходит в хроническую форму.
При остром течении болезни рыба вялая, отказывается от корма, всплывает на поверхность воды, неподвижно стоит у берега и не реагирует на внешние раздражители. Перед гибелью рыба совершает стремительные винтовые движения или стоит в толще воды головой вниз и нередко погибает в таком положении.
При хроническом течении наблюдаются кровоизлияние в радужную оболочку глаз, кожа приобретает тёмно-лиловой окраски. Рабы совершают быстрые поступательные движения. Продолжительность болезни составляет 1 — 3 месяца. Как и при остром течении отмечается значительная гибель рыб.
Гибель отдельных экземпляров рыб может наблюдаться и через 2 — 4 часа после появления признаков болезни, при этом естественная окраска кожного покрова сохраняется, но часто отмечается экзофтальмия (выпячивание глаз). Большинство больных рыб погибает. Лечения на данный момент не разработано. Рыбохозяйства несут огромные потери.
Использование для рыбоводства, воспроизводства и акклиматизации рыбы и икры, имеющих признаки заболевания, не допускается. Рыбу и икру, если она не потеряла товарного вида и качества, допускают к использованию в пищевых целях без ограничений. Рыбу и икру, не имеющую товарного вида, направляют на утилизацию.
Профилактика распространения заболевания
Профилактика основана на своевременном выполнении комплекса ветеринарно-санитарных, рыбоводно-мелиоративных и зоотехнических мероприятий.Рыбоводные заводы и другие рыбоводные хозяйства, а также естественные водоемы, в которых установлено заболевание рыб инфекционной анемией, объявляют неблагополучными по этой болезни и на них накладывают карантин.
По условиям карантина проводится комплекс мероприятий, в том числе запрещается:
• ввоз икры, рыб из других водоемов и хозяйств, а также вывоз икры, рыб, кормовых водных организмов и растений из неблагополучных водоемов в благополучные;
• посещение неблагополучного хозяйства посторонними лицами;
• спортивный лов рыбы в естественных водоемах.
Карантин с рыбоводного завода или другого рыбоводного хозяйства снимают и хозяйство (рыбохозяйственный водоем) объявляют благополучным по инфекционной анемии по истечении одного года, а с естественного водоема — по истечении двух лет после полного прекращения заболевания и только после проведения комплекса ветеринарно-санитарных и рыбоводно-мелиоративных мероприятий.
Читайте также: