Лабораторная диагностика инфекционных болезней птиц

Автор (ы): Э.Д Джавадов, д.в.н, член-корреспондент РАСХН
Организация(и): ГНУ Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт птицеводства / All-Russian Research Veterinary Institute of Poultry Science

Инфекционные болезни, связанные с поражением респираторного тракта, при которых посредством воздушно-капельной передачи происходит быстрое распространение инфекции на значительное поголовье птицы, независимо от системы содержания заслуживают особого внимания. Новыми для РФ болезнями, связанными с поражением респираторного тракта можно отнести метапневмовирусную инфекцию (МПВИ), инфекционный бронхит кур (ИБК), вызываемый вариантными штаммами вируса ИБК.

Диагностика МПВИ и ИБК имеет свои особенности. Это связано с разнообразием серотипов вирусов, особенностями возбудителей, а также с тем, что данные инфекции очень часто протекают в ассоциированной форме с другими вирусными инфекциями и всегда их течение осложняется возникновением секундарных (вторичных) бактериальных инфекций, таких как колибактериоз, респираторный микоплазмоз, орнитобактериоз. Оценка клинических и патологоанатомических признаков может быть затруднена в ряде случаев, например, при микотоксикозах (поражение печени, почек), широком использовании антибиотиков (отсутствие опухания синусов) и т.д. Вышеуказанные болезни имеют ряд сходных признаков, поэтому при постановке диагноза недостаточно проведения только клинического и патологоанатомического исследований. Диагностика должна проводиться комплексно и основываться на результатах лабораторных исследований, включающих серологические, вирусологические, молекулярно-биологические исследования. Успех лабораторных исследований обеспечивает правильный отбор патологического материала. Результат исследования и его информативность зависят от сроков отбора проб, возраста птицы при отборе проб, соответствия патматериала (органов, тканей, содержащих возбудителя) предполагаемому диагнозу, от способа консервации, условий его доставки в лабораторию и выбора методов исследований.

При разработке схем профилактики данных болезней необходимо учитывать эпизоотическую обстановку в хозяйстве, эпизоотическую обстановку хозяйств-поставщиков племенной продукции, клинические и патологоанатомические признаки, результаты диагностических исследований. Выявление и устранение недостатков при проведении ветеринарно-санитарных мероприятий, в технологии производства и кормлении птицы, в работе обслуживающего персонала помимо корректировки схемы лечебно-профилактических мероприятий является неотъемлемой частью проведения противоэпизоотических мероприятий, позволяет ликвидировать вспышку болезни и обеспечить в дальнейшем эпизоотическое благополучие. При разработке схем специфической профилактики респираторных инфекций особое значение имеет создание у птицы местного иммунитета, соблюдение очередности, при проведении вакцинаций, интервалов между вакцинациями, подбор метода вакцинации, а также сочетаемость биопрепаратов при их одновременном введении.

Инфекционный бронхит кур (ИБК) - высоконтагиозная болезнь, характеризующаяся поражением респираторного тракта, а также мочеполовой системы птиц.

В настоящее время выделено и серотипировано более 100 полевых вариантов вируса. Болеют куры всех возрастов, но наиболее восприимчивы цыплята до 30 - дневного возраста. Возбудитель передается аэрогенным, контактным и трансовариальным путями.

У цыплят 1-30-дневного возраста клинические признаки проявляются вялостью, сонливостью, ухудшением аппетита, ринитами, синуситами, конъюнктивитами, хрипами, затрудненным дыханием. Смертность может составлять до 10-35%.

Патологоанатомические признаки при респираторном синдроме представлены наличием серозно-слизистого экссудата в носовой полости, трахее, бронхах, скоплением фибрина в области бифуркации трахеи в виде пробок, отеком легких. При нефрозо-нефритном синдроме: почки увеличены, набухшие, дряблые, с пестрым рисунком вследствие скопления в канальцах уратов. Поражение легких отсутствует. У взрослых птиц выявляется инволюция яичника, атрезия зрелых фолликулов, желточные перитониты, уменьшение длины и массы яйцевода, скопление уратов в канальцах почек, а также атрофия каудальных долей почек. В некоторых случаях могут выявляться признаки висцеральной подагры или мочекаменной болезни, кисты различной величины. ИБК всегда сопровождается признаками поражения секундарной микрофлорой (E.coli, Mycoplasma gallisepticum и др.). Некоторые патологоанатомические признаки представлены на фото 1-5.

Фото 1. Трахеит. Фибринозный экссудат в трахее

Фото 2. Поражение почек у цыплят-бройлеров

Фото 3. Поражение почек у кур-несушек

Фото 4. Поражение желточных фолликулов. Киста

При проведении иммунопрофилактики ИБК важен местный иммунитет, который может быть обеспечен применением живой вакцины спрей-методом, начиная с суточного возраста. При установлении циркуляции в хозяйстве вариантных штаммов вируса ИБК необходимо введение в схему специфической профилактики вакцинации против вариантного штамма вируса ИБК, не отменяя вакцинации с использованием вакцины, содержащей штамм Массачусетс. Сроки и кратность вакцинации следует определять исходя из эпизоотической ситуации в хозяйстве, а также с учетом результатов лабораторных исследований.

У кур-несушек и птицы родительских стад проводится 2-4-кратная вакцинация живой вакциной, а затем вакцинация инактивированной вакциной. При вакцинации против вариантного штамма вируса ИБК необходимо чередовать вакцины, содержащие штамм Массачусетс и вариантный штамм вируса ИБК. Инактивированная вакцина против ИБК должна также содержать в своем составе два штамма, т.е., штамм Массачусетс и вариантный штамм вируса ИБК. Только в этом случае птица может быть защищена от вариантного штамма вируса на весь продуктивный период. Использование живых вакцин после применения инактивированных негативно сказывается на состоянии птицы (стресс), усиливает вирусное давление, противоречит цели применения инактивированных вакцин, свидетельствует о недостатках схемы вакцинаций или низком качестве инактивированных вакцин.

Перед применением вакцины, содержащей вариантный штамм вируса ИБК, рекомендуется провести исследования по выделению и типированию циркулирующего вируса. С этой целью необходимо отобрать патматериал от больной или павшей птицы. Для исследования отбирают трахеи, легкие, почки, имеющие признаки поражения и в замороженном виде направляют в лабораторию. Типирование выделенного при проведении вирусологических исследований возбудителя проводят с использованием молекулярно-биологических методов (полимеразно-цепной реакции (ПЦР), геномного секвенирования).

Метапневмовирусная инфекция (МПВИ) - болезнь полиэтиологической природы. МПВИ проявляется серозно-гнойным воспалением носовых ходов и синусов, а также хроническими энтеритами, аэросаккулитами, перитонитами и воспалением яичников. В настоящее время известны серологические подтипы А, В, С (Colorado), D. Существует высокая вероятность появления новых антигенных и генотипных вариантов вируса. Возбудитель распространяется горизонтально и аэрогенным путем. Болезнь поражает птицу разных возрастов. Для данной инфекции характерны быстрое распространение и высокая контагиозность.

Экономический ущерб складывается из потерь, обусловленных смертностью (1-20%), низкой конверсией корма, повышенной выбраковкой, снижением продуктивности (у бройлеров – снижение среднесуточного привеса, у несушек – снижение яйценоскости на 5-30% и выводимости цыплят), затратами на антибиотикотерапию.

Выявляются такие клинические симптомы как поражение верхних дыхательных путей (чихание, кашель, трахеальные хрипы, частое позевывание), отек подчелюстного пространства, отиты, опухание пери- и инфраорбитальных синусов, зуд, искривление шеи, дезориентация, нервные явления, депрессия, сонливость, малоподвижность. Характерным признаком является наличие конъюнктивитов и ринитов, сопровождающихся выделением пенистого экссудата. Часто наблюдается диарея. Помет зеленовато-коричневого цвета. Зеленоватый оттенок помет приобретает из-за примеси желчи. Некоторые клинические признаки представлены на фото 7-11.

Фото 7. Отит, нервные признаки

Фото 8. Сонливость

Фото 10. Коньюнктивит

Фото 11. Опухание подглазничных синусов у индейки

В последнее время МПВИ часто протекает в ассоциации с такими болезнями как ньюкаслская болезнь, ИБК, респираторный микоплазмоз (РМП). Кроме этого, МПВИ имеет сходные клинические признаки с перечисленными инфекциями. Например, при НБ - искривление шеи, дезориентация, диарея и др.

Паталогоанатомическая картина не является характерной и обусловлена присутствием бактериальной флоры. МПВИ протекает совместно с бактериальными инфекциями, которые могут быть вызваны одним из возбудителей, таких как E.coli, Ornithobacterium rhinotracheale, Micoplasma gallisepticum, Bordatella spp., Pasteurella spp., Moraxella spp., Pseudomonas и др. При этом бактериальные инфекции являются вторичными.

При патологоанатомическом вскрытии могут выявляться такие поражения как ринит, трахеит, синусит, в тканях опухшей головы серозный или фибринозный экссудат, застойные явления в легких, при осложнении секундарной инфекцией (E.coli) имеет место аэросаккулит, перигепатит, перикардит. Иногда наблюдается скопление мочекислых солей в мочеточниках, мелкие некротические очаги в печени.

Диагноз на МПВИ ставится комплексно с учетом эпизоотологических данных, клинических, патоморфологических признаков и результатов лабораторных исследований.

При исследовании в ИФА наличие антител в сыворотке крови у птицы в условиях отсутствия вакцинации свидетельствует о циркуляции полевого вируса в стаде. В последнее время широко используется ПЦР. Данный метод важен при определении циркулирующего в птицеводческом хозяйстве серотипа вируса МПВИ. Соответствие между серотипом вируса, циркулирующим в хозяйстве и вакцинным штаммом, играет большую роль в эффективности проведения специфической профилактики.

При отборе патологического материала следует учитывать, что вирус МПВИ при первичном заражении находится в организме птицы короткое время, до появления клинических признаков. Опухание синусов обычно обусловлено действием вторичной бактериальной флоры, и циркуляция вируса в этот момент в организме птицы уже завершена. Для вирусологического и молекулярно-биологических исследований исследования в лабораторию следует направлять целую голову и шею птицы с трахеей.

Защита птицепоголовья от МПВИ может быть обеспечена только проведением специфической профилактики посредством вакцинации птицы живыми и инактивированными вакцинами в зависимости от группы птицы. При профилактике МПВИ также важен местный иммунитет. Поэтому лучшим методом вакцинации является спрей-метод или интраназальное (окулярное) введение. Чтобы снизить потери от МПВИ необходимо также устранить проблемы, связанные с течением в хозяйстве НБ, ИБК, РМП.

Вакцинация проводится без учета уровня материнских антител. Иммунизация родительских стад обеспечивает защиту только птицы родительского стада. Поствакцинальный материнский иммунитет обычно низкий неоднородный и определяется у 30-50% цыплят. Постинфекционный материнский иммунитет обычно высокий и определяется у 80-100% цыплят. Защиту бройлеров обеспечивает вакцинация бройлеров живой вакциной из циркулирующего серотипа вируса. Сроки вакцинации определяются в зависимости от эпизоотической ситуации в птицеводческом хозяйстве. Интервал между вакцинациями против МПВИ и другими респираторными инфекциями (особенно с инфекционным ларинготрахеитом птиц) должен быть не менее 7-10 дней.

При осложнении болезни бактериальной флорой необходимо проводить антибиотикотерапию.

К новым болезням также можно отнести инфекционную анемию цыплят (ИАЦ). Возбудитель ИАЦ вызывает иммунодепрессивное состояние птицы. Болезнь имеет широкое распространение в странах Европы, США, Австралии, Японии и др. В последнее десятилетие в связи с массовым завозом импортных высокопродуктивных кроссов ИАЦ получила широкое распространение и в России. Многие племенные хозяйства и птицефабрики, имеющие свои родительские стада, вакцинируют птицу против ИАЦ живой вакциной. Однако опыт показывает, что вакцинация живой вакциной не решает проблему в полном объеме. ИАЦ поражает не только цыплят раннего возраста, но и птицу всех возрастов. К примеру, у бройлеров ИАЦ имеет 3 пика смертности: в возрасте 7-14, 22-26 и 32-36 дней а вакцинация родительских стад обеспечивает защиту только до 2-х недельного возраста. Имеются данные о длительном носительстве вируса ИАЦ после проведения вакцинации. Аттенуированные штаммы вируса ИАЦ не стабильны и способны реверсировать к исходной патогенности в процессе нескольких (начиная от 10) пассажей на маленьких цыплятах.

Проявление болезни в возрасте 7-14 дней обусловлено трансовариальной передачей. В этом возрасте наблюдается отставание в росте и развитии цыплят, бледность, малоподвижность, сонливость, потеря аппетита, иногда кратковременная диарея. В связи с тем, что в большинстве хозяйств в возрасте 9-12 дней проводится вакцинация против ньюкаслской болезни, расслоение птицы и ее депрессивное состояние связывают с поствакцинальной реакцией. При патологоанатомическом исследовании часто выявляют признаки секундарных инфекций (колибактериоз), анемию, нарушение структуры и обесцвечивание костного мозга, наличие молочно-белого экссудата в бурсе. Иногда встречаются штрихоподобные кровоизлияния в мышцах бедра и голени.

Проявление болезни в возрасте 22-26 и 32-36 дней сопровождается кратковременными пиками смертности, отставанием цыплят в росте и развитии, взъерошенностью оперения, анемией слизистых оболочек, гребня, сережек, потерей аппетита, вялостью, малоподвижностью, дерматитами. На пораженных участках кожного покрова часто возникают трещины кожи, из которых вытекает кровянистый экссудат. В большинстве случаев разрывы кожи связывают не с ИАЦ, а с нарушением кормления (например, недостаток цинка), травмами или другими причинами. Также наблюдается увеличение пигментации (желтизна) нижних конечностей и клюва, пододерматиты.

При патологоанатомическом вскрытии обнаруживают поражение Фабрициевой сумки (наличие экссудата, атрофия), атрофию тимуса, анемию кожных покровов, слизистых оболочек, мышечной ткани (грудные мышцы или мышцы бедра), иногда находят студенистые соломенно-желтые подкожные инфильтраты в области живота, кровоизлияния в мышцах, анемию и аплазию костного мозга, признаки секундарных инфекций. Некоторые патологоанатомические признаки представлены на фото 12-18.

Фото 12. Бледность гребешка, сережек

Фото 13. Обесцвечивание костного мозга

Фото 14. Серозно-слизистый экссудат в бурсе

Фото 15. Студенистый инфильтрат в брюшной полости

Фото 16. Атрофия тимуса.

Фото 17. Геморрагии в мышцах голени и бедра

Фото 18. Пододерматиты, трещины кожного покрова

У птицы старше 6-7-недельного возраста клинические признаки не выражены. Однако в возрасте 10-12 недель в птицеводческих хозяйствах часто имеет место резкое снижение иммунитета против болезни Марека, ИБК, кокцидиоза. При этом наблюдается значительный падеж птицы, повышенная выбраковка.

При патологоанатомическом исследовании выявляются признаки БМ (или кокцидиоза, или висцеральной подагры), что и является основанием для постановки диагноза. Однако при проведении более детальных исследований у трупов птицы выявляется анемия костного мозга, атрофия тимуса, анемия мышечной ткани в области бедра, дерматиты. Исследование патматериала в ПЦР выявляет наличие вируса ИАЦ.

При проведении гематологических исследований при ИАЦ наблюдается снижение показателей гематокрита, тромбоцитопения, панлейкопения. Анемия связана с замедлением формирования красных кровяных телец клетками ствола костного мозга. Тромбоцитопения является следствием недостаточного формирования или массового использования тромбоцитов при обширных поражениях эндотелия. Тромбоцитопения играет основную роль при возникновении вторичных инфекций, так как при нарушении целостности сосудов повышается вероятность проникновения в организм условно-патогенной микрофлоры. Панлейкопения характеризуется истощением популяций Т-фагов-помощников и цитотоксических Т-клеток в тимусе, макрофагов в селезенке, моноцитов в периферической кровеносной системе.

В ряде птицеводческих хозяйств РФ и ближнего зарубежья отмечается ассоциированное течение инфекционной анемии цыплят с реовирусной инфекцией. Поражения, выявляемые при послеубойном осмотре, снижают качество выпускаемой мясной продукции, что негативно сказывается на экономических показателях.

Для профилактики ИАЦ в настоящее время разработаны и используются живые вакцины. Вакцины применяют на родительских стадах и в стадах промышленных кур-несушек. Принципиальной позицией ГНУ ВНИВИП Россельхозакадемии является использование для профилактики ИАЦ исключительно инактивированных вакцин. Такая вакцина в настоящее время разработана в институте и проходит лабораторные испытания.

Примечание: Все фотографии являются авторскими. Копирование и тиражирование запрещено.

При характерном течении болезни постановка диагноза не представляет сложности. При вспышке болезни на фоне пассивного или поствакцинального иммунитета, а тем более в стационарно неблагополучном хозяйстве поставить диагноз бывает чрезвычайно трудно. В этих случаях тщательно изучают эпизоотическую ситуацию, клиническую и патологоанатомическую картину. Решающее значение имеют лабораторные исследования - выделение ви­руса на КЭ, его индикация и идентификация в РГА - РТГА, определение вирулентности ви­руса на КЭ и цыплятах, а также выявление АТ в сыворотке переболевших или вакциниро­ванных птиц в РТГА.

Выделение вируса. Вирус, в зависимости от его тропизма можно выделить из головного и костного мозга, трахеи, кишечника, селезенки, легких, печени. Для исследования рекомендуется брать голо­ву, легкие, трахею и селезенку от только что павших или вынужденно убитых птиц. Вирус удается выделить только в период вспышки болезни. Через 15 дн выделить его обычными методами, как правило, не удается. Поэтому патологический материал необходимо брать в начале вспышки (в первые 3-5 дн) и направлять в лабораторию в термосе со льдом. Внут­ренние органы можно помещать в стерильный 50%-ный р-р глицерина на дистиллирован­ной воде. Смывы из трахеи и клоаки лучше консервировать на холоде или при температуре не выше 4°С. Мазки-отпечатки исследуют методом ФА, срезы - с помощью ЭМ или ИЭМ, а суспензию -вРГА. Это позволит выявить специфический АГ (вирус) и ГА-агент в течение 3-5 ч, определить направленность дальнейших исследований.

Заражение КЭ.Эмбрионы 9-11-дн возраста заражают по 0,2 мл, не менее 10 КЭ на ка­ждый материал, в аллантоисную полость общепринятым методом и инкубируют 72 ч при 37,5°С (погибших в первые 24 ч эмбрионов не учитывают). Если через 72 ч нет погибших КЭ, то 5 из партии зараженных убивают, оставляя их при 4°С на ночь. Остальные 5 КЭ ин­кубируют до 120 ч и затем убивают. Аллантоисную жидкость от погибших и живых КЭ проверяют на ГА в РГА с куриными эритроцитами (1-5%-ная взвесь). Обычно велогенные штаммы вируса вызывают гибель КЭ уже через 32-60 ч после заражения, мезогенные - че­рез 60-90, а лентогенные - через 100 ч и более. Иногда при первом пассаже не удается выде­лить вирус, поэтому необходимо провести не менее
3-х "слепых" пассажей. Учитывая, что в вакцинируемых стадах можно выделить и вакцинный вирус (шт. Н, Lа Sоtа,
Бор 74/ВГНКИ и др.), вторым этапом исследования должно быть определение патогенности выделенного изолята. Первым ориентиром могут служить данные РГА. Обычно полевые изоляты обла­дают низкой ГА-активностью, проявляя ее в разведениях 1:16 -1:128, тогда как вакцинные штаммы, наоборот, проявляют высокий ГА-титр - 1:256 - 1:2048.

Ненадежным оказался метод выделения вируса от зараженных иммунных кур: чем вы­ше иммунитет у несушек, тем меньше вероятности выделения вируса из их эмбрионов. При исследовании большого количества полевых образцов на выделение вируса НБ можно ис­пользовать фрагменты ХАО, связанные с яичной скорлупой. Для этого фрагменты ХАО размером 0,6-1,0 см 2 культивируют в среде Игла. Эффективность выделения вируса 97%. При внесении вируса в среду культивирования или непосредственно на ХАО КЭ получены совпадающие результаты.

Заражение культуры клеток.Выделение вируса в культуре клеток осуществляется редко, так как культуральный вирус по ГА-активности значительно уступает эмбрионально­му. Однако в тех случаях, когда в лаборатории можно получить культуру фибробластов КЭ и специалисты владеют этим методом, его можно применять для выделения и идентифика­ции вируса. Приготовление вирусной суспензии, выращивание и заражение культуры клеток куриных фибробластов производят общепринятым методом. Можно использовать переви­ваемые линии ВНК-21 и Нер-2.

В зараженной культуре фибробластов КЭ вирус НБ через 48-60 ч вызывает ЦПИ, спе­цифичность которых подтверждается реакцией гемадсорбции с эритроцитами кур. С вируссодержащей культуральной жидкостью может быть поставлена РГА в отношении эритроци­тов крови кур. Обычно при первичном выделении ГА-титр культурального вируса не пре­вышает 1:32 - 1:128. Отсутствие или низкие титры ГА вируса в первом пассаже на культуре ткани не дают основания исключить НБ.

Заражение птиц.Если КЭ под руками нет, вирус можно выделить на неиммунной к НБ птице. Для этого испытуемый материал 1:10 (0,5 мл) внутримышечно инокулируют цыпля­там в возрасте 2-4 мес. За инфицированной птицей наблюдают 10-12 дн. При появлении ха­рактерных для болезни симптомов птиц в атональном состоянии убивают и берут пробы го­ловного мозга и селезенки, которые можно использовать для заражения КЭ и иммунологи­ческой пробы (для одновременного заражения птиц иммунной и неиммунной групп).

Титрование вируса.Обычно проводят на КЭ, культурах клеток по общепринятой ме­тодике и на 6-10 нед цыплятах. Доза инокуляции вируса для цыплят 0,5 мл (внутримышечно или внутривенно). Срок наблюдения 15 дн.

Не нашли то, что искали? Воспользуйтесь поиском:

Для диагностики бактериальных инфекций птиц применяют бактериологическое исследование, а также – экспресс-методы и серологические исследования, реже - аллергические исследования (чаще при туберкулезе, орнитозе).

Экспресс-методы и серологические методы диагностики в основе своей аналогичны таковым при диагностике вирусных инфекций. Из экспресс-диагностики чаще применяются различные методы МФА, генетические методы – ПЦР. Из серологических методов – РА, РСК, РИД (РДП), РН.

При этом способы окраски подразделяют на ориентировочные и дифференциальные, а в некоторых случаях и диагностические.

Для изоляции чистой культуры и идентификации бактерий используются питательные среды, которые различают общеупотребительные и специальные, т.е. созданные либо для определенных видов микробов (микобактерий, микоплазм, микроскопических грибов, дрожжей и т.д.), либо для изучения различных биохимических свойств, либо для дифференциации одних видов бактерий от других.

При бактериологическом методе применяют биопробу - чаще на цыплятах, КЭ, с целью обнаружения возбудителя в патологическом материале, выделения его в чистой культуре и определения патогенных свойств чистой культуры микроорганизма.

Некоторые особенности имеет микоплазмотическое исследование (респираторный микоплазмоз) и микологическое (микотоксикологическое) исследование заболеваний, вызываемых микроскопическими грибами или их токсином (микозы, микотоксикозы).

Правила отбора патологического материала от птиц

Отбор материала для различных методов исследования – один из важных этапов диагностической работы. Материал берут для лабораторного исследования с учетом предварительного диагноза. Необходимо взять его как можно раньше, после гибели птицы (не более 1-2 часов) и быстро транспортировать в лабораторию. От этого зависит достоверность результатов исследования. Труп в состоянии разложения не пригоден для лабораторного исследования. Материал берется с учетом характерных изменений у птиц 3-х групп:

- птиц, погибших в результате болезни;

- птиц, находящихся в разгаре болезни;

- внешне нормальных особей.

Отбирают органы в достаточном количестве, наиболее пораженные возбудителем болезни, с учётом клинической картины болезни и соблюдением требований целевых исследований: патологоанатомического, гистологического, гематологического, вирусологического, бактериологического, серологического, токсикологического.

Материал можно консервировать, учитывая свойства возбудителя и методы исследования. Для бактериологического, вирусологического исследования можно консервировать в смеси 100 весовых частей льда и 33 части поваренной соли или заморозкой. Из химических консервантов используют смесь равных объемов стерильного глицерина и 0,85% NaCl.

Для исследования в МФА – консервация материала глицерином не допускается.

Для гематологии кровь берут в пробирку с антикоагулянтом – 10% раствором трилона Б, гепарина.

При несоответствии качества отобранного материала утвержденным требованиям лаборатория может потребовать его повторную доставку. Нужно помнить, что некоторые вирусы быстро разрушаются в крови, моче, смывах с носоглотки, а некоторые – и в замороженном состоянии.

В лаборатории исследования присланного материала должно быть начато как можно скорее. Патматериал освобождают от консервантов, делят на 2-3 порции, при необходимости - часть отдают для других видов исследований.

Приняв во внимание содержание сопроводительного письма, качество материала, составляют план исследований. Предусматривают изучение материала не менее, чем двумя методами, с расчетом, чтобы получить по возможности быстрый ответ.

Готовят из патматериала срезы, отпечатки, мазки, суспензию, в зависимости от предполагаемых методов исследования.

О нахождении инфекционного очага в организме птицы могут свидетельствовать как бактерии и вирусы или вирусные тельца включения, так и специфические антитела.

Название болезни	Возбудитель	Источник возбудителя инфекции	Пути передачи возбудителя инфекции	Основные поражаемые группы животных	Длительность инкубационного периода	Носительство возбудителя	Важнейшие клинических признаки	Патологоанатомические изменения	Лабораторные и другие исследования	Заболевания, от которых следует дифференцировать
Вирусный гепатит уток	Вирус семейства Picornaviridae, род Enterovirus	Больные и переболевшие птицы	Алиментарный через корма, воду, подстилку, предметы ухода, трансовариально	Утята до 4-неделього возраста	2—5 суток	Переболевшие утки в течение 1—2 лет	Отказ от корма, неподвижность, судорожные и плавательные движения конечностями. У взрослых птиц — характерная поза пингвина	Печень увеличена, её цвет от рыжевато-красного до коричневого, жёлчный пузырь переполнен жёлчью; по всей печени точечные и очаговые кровоизлияния. Геморрагический асцит и отёк лёгких, перикардит, фибринозно-дифтеритические наложения на воздухоносном мешке	Реакция преципитации в агаровом геле, люминесцентная микроскопия с использованием флюоресцирующих гамма-глобулинов специфические сыворотки крови	Сальмонеллёз, ботулизм, чума уток
Грипп (классическая чума)	Вирус семейства Orthomyxoviridae, род Influenza A	Больные птицы	Аэрогенный. Факторы передачи — инвентарь, тара, корма, вода, товарная продукция, дикие птицы	Все виды домашних птиц	От 20—30 ч до 2 суток	—	При сверхостром течении — гибель без выраженных клинических признаков. При остром течении — потеря аппетита, яйценоскости, истечения из ротовой и носовой полостей, угнетение, расстройство функции кишечника (помёт грязно-серо-зелёного, иногда красного цвета), t до 44°C. При затянувшемся процессе — атаксия, парезы, манежные движения	Кровоизлияния повсеместно, отёк подкожной клетчатки, утолщение слизистой оболочки двенадцатиперстной кишки, в просвете кишечника слизистое содержимое, многочисленные кровоизлияния	Выделение и идентификация вируса, реакция прямой гемагглютинации и задержки гемагглютинации, РН, биопроба	Ньюкаслская болезнь, инфекционный ларинготрахеит, пастереллез, инфекционный бронхит, оспа
Инфекционный бронхит	Вирус сем Corona viridae, род Coronavirus	Больные и переболевшие птицы	Чаще аэрогенный, с инкубационными яйцами	Цыплята 30-суточного возраста	2—6 суток	Вирусоносительство до 12 месяцев вирус в яйце до 40—43 суток	Одышка, опухание подглазничных синусов, конъюнктивит, потеря аппетита, хриплое дыхание с открытым клювом, лейкопения. Яйца вытянутой формы, скорлупа имеет измятый вид	В трахее и крупных бронхах — кровоизлияния, которые у молодняка создают своеобразную исчерченность; у взрослой птицы — недоразвитость яичника и яйцевода	Биопроба, РН, реакция преципитации в агаровом геле, РНГА	Инфекционный ларинготрахеит, оспа, ньюкаслская болезнь, респираторный микоплазмоз
Инфекционный ларинготрахеит	Вирус семейства Herpesvidae, род Herpesvirus	Больные и переболевшие птицы	Аэрогенный, через загрязненные окружающие предметы	Куры 5 месяцев — 1 года, фазаны	6—15 суток	18—24 месяцев	Угнетение, вялость, потеря аппетита. Закупорка гортани и трахеи экссудатом. Прекращение яйцекладки. Летальность при остром течении до 60%	В просвете гортани — плотные казеозные заложения, на всём её протяжении слизисто-геморрагический сгусток. В мазках, соскобах эпителиальной ткани трахеи интрануклеарные тельца-включения. При конъюнктивальной форме — серозный кератоконъюнктивит, ринит, синусит	РН, РДП, микроскопия внутриядерных включений, биопроба	Инфекционный бронхит, авитаминоз А, респираторный микоплазмоз, оспа, инфекционный насморк
Инфекционный синусит утят	Вирус семейства Orthomyxoviridae	Больные и переболевшие птицы	Аэрогенный	Утята до 45-суточного возраста	2—27 суток	Не установлено	Частое дыхание, синусит; больные утята дышат через открытый клюв; кератит, конъюнктивит; серозно-слизистый экссудат, склеивающий веки; при остром течении — гибель на фоне судорожных приступов	Труп истощён, перепачкан экссудатом, конъюнктива гиперемирована. В придаточных и носовых полостях жидкий клейкий экссудат. При хроническом течении — фибринозные пленки на стенках воздухоносных мешков; печень увеличена, покрыта фибринозной плёнкой, её паренхима перерождена	Выделение вируса и его идентификация, РТГА, биопроба	Сальмонеллёз, пастереллёз, вирусный гепатит, аэроцистит неинфекционного происхождения
Лейкоз	Вирус семейства Retraviridae, под семейства Oncornavirinae	Больные птицы и вирусоносители	Через инкубационные яйца, аэрогенный, алиментарный	Куры, индейки, цесарки, гуси, утки	—	—	Уменьшение аппетита, исхудание, побледнение и сморщивание гребешка, расстройство функции кишечника, водянка изменение картины крови	Печень, селезёнка, почки и яичники увеличены, на внутренних органах саловидные узелки, бледность кожи и мышц (при эритробластозе)	Кофал-тест, РИГА, РИФ-тест, РН, гистологические исследования	Марека болезнь, туберкулёз, пуллороз-тиф, опухоли
Марека болезнь	Вирус семейства Herpesviridae, род Herpesvirus	Больные птицы и вирусоносители	Аэрогенный. Факторы передачи — продукты убоя, предметы ухода	Куры 1—5-месячного возраста	От нескольких суток до 7 месяцев	—	Парезы и параличи конечностей; птица лежит с выставленной вперёд ногой; в дальнейшем теряет способность двигаться, атрофия мускулатуры, воспаление грудного нерва с параличом крыльев, часто параличи шейных мускулов. При глаз ной форме — глазной лимфоматоз, при висцеральной — расстройство функции кишечника	Очаговые и диффузные опухоли в различных органах, опухоли железистого желудка. Нервы утолщены, сероватого цвета	Реакция преципитации в агаровом геле реакция иммунофлюоресценции, биопроба, гистологические исследования	Лейкоз, авитаминозы B и E, вирусный энцефаломиелит, листериоз
Ньюкаслская болезнь	Вирус сем Paramyxoviridae, род Paramyxovirus	Больные птицы	Аэрогенный, алиментарный. Факторы передачи — предметы ухода, корма, тара, подстилка, одежда обслуживающего персонала. Вирус содержится и в яйце. Переносится потоком воздуха на несколько километров	Куры (особенно 20—10-суточные), реже индейки, куропатки, фазаны, цесарки	2—7 суток, реже 9—12 суток	2—4 месяца	Повышение температуры тела на 1—2°C, уменьшение аппетита, вялость, сонливость. Поражение органов дыхания (удушье), расстройство функции кишечника (жидкий кал зелёного цвета); выделение из ротовой полости тягучей слизи; птица чихает, делает глотательные движения; конъюнктивиты, скручивание шеи, паралич ног и крыльев, судороги. Летальность у молодняка до 100%	В острых случаях — геморрагическая септицемия; кровоизлияния в слизистые оболочки желудочно-кишечного тракта	Выделение вируса и его идентификация, РТГА, РН, биопроба	Грипп, инфекционный ларинготрахеит, спирохетоз, пастерелёз, оспа, микоплазмоз, острые отравления
Орнитоз	Микроорганизм семейства Chlamydoceae, род Bedsonia	Больные птицы и вирусоносители	Аэрогенный, алиментарный	Более 130 видов птиц, преимущественно молодняк	7—14 суток	Не менее 4 месяцев	У попугаев — сонливость, слабость, потеря аппетита, мышечная дрожь, расстройство функции кишечника, иногда истечения из носовых полостей, параличи. У голубей — то же, профузный понос, истощение, гибель. У куриных — чаще субклинически	Иногда увеличение селезёнки, в других случаях некротические очаги в печени и поджелудочной железе, серозно-фибринозный перикардит, пневмония, изредка отложение фибрина в воздухоносных мешках	Выделение вируса, РСК, РА, реакция иммунофлюоресценции, микроскопия элементарных телец, внутрикожная проба	Микоплазмоз, сальмонеллёз, грипп
Пуллороз—тиф	Salmonella pullorum-gallinarum	Больные и переболевшие птицы	С инкубационными яйцами, алиментарный, с кормом, подстилкой, водой предметами ухода	Куры, индейки (менее — цесарки), дикие птицы	1—20 суток	—	При остром течении — дыхание с открытым клювом, слабость, некоординированные движения, расстройство функции кишечника — выделение беловатого слизистого кала. При подостром и хроническом течениях (15—20-суточные цыплята) — задержка в развитии, плохая оперяемость, периодическое расстройство функции кишечника. У взрослых несушек протекает хронически — снижение продуктивности, расстройство функции кишечника, оварит, сальпингит, перитонит	У погибших эмбрионов — зелёного цвета плотный желток. Печень увеличена, жёлчный пузырь увеличен в несколько раз, заполнен тягучей слизью. У цыплят 20—30-суточного возраста слизистая кишечника воспалена, дистрофия печени, жёлчный пузырь увеличен	Кровекапельная реакция агглютинации с цветным пуллорным антигеном, бактериологическое исследование	Аспергиллёз, кокцидиоз, колибактериоз, респираторный микоплазмоз, пастереллёз, отравления
Респираторный микоплазмоз	Mycoplasma gallisepticum	Больные птицы и микоплазмоносители	Аэрогенный, трансовариально. Факторы передачи — корма, подстилка, воздух	Куры, индейки, цесарки, наиболее восприимчивы в возрасте 2—4 месяцев	4—25 суток	—	Снижение аппетита, угнетение, трахеальные хрипы, выделение экссудата из носовых отверстий, опухание гортани и инфраорбитального синуса. Отход цыплят 10—25%. У кур — конъюнктивит, артриты, сморщивание гребня. У индеек — конъюнктивит, синусит, ринит	Катаральное воспаление слизистых оболочек дыхательных путей, фибринозные отложения и казеозные сгустки в гортани и трахее. В лёгких — некротические очаги	Бактериологическое исследование, иммунофлюоресценция, биопроба	Инфекционный ларинготрахеит, инфекционный бронхит, аспергиллёз, колибактериоз

Ветеринарный энциклопедический словарь. — М.: "Советская Энциклопедия" . Главный редактор В.П. Шишков . 1981 .

Диагностика важнейших инфекционных болезней, общих нескольким видам животных — Название болезни Возбудитель Источник возбудителя инфекции Пути передачи возбудителя инфекции Основные поражаемые группы животных Длительность инкубационного периода Носительство возбудителя Важнейшие клинические признаки Патологоанатомические… … Ветеринарный энциклопедический словарь

Медицина — I Медицина Медицина система научных знаний и практической деятельности, целями которой являются укрепление и сохранение здоровья, продление жизни людей, предупреждение и лечение болезней человека. Для выполнения этих задач М. изучает строение и… … Медицинская энциклопедия

СССР. Естественные науки — Математика Научные исследования в области математики начали проводиться в России с 18 в., когда членами Петербургской АН стали Л. Эйлер, Д. Бернулли и другие западноевропейские учёные. По замыслу Петра I академики иностранцы… … Большая советская энциклопедия

Турция — (Türkiye) Турецкая Республика (Türkiye Cumhuriyeti). I. Общие сведения Т. государство, расположенное на З. Азии и крайнем Ю. В. Европы. Около 97% её территории находится на полуострове Малая Азия (Анатолия), около 3% в… … Большая советская энциклопедия

Терапия — (от греч. therapéia забота, уход, лечение) 1) лечение так называемыми консервативными методами: лекарствами (фармакотерапия), в том числе антибактериальными (химиотерапия, антибиотикотерапия) и гормональными (гормонотерапия) средствами;… … Большая советская энциклопедия

ПЕЧЕНЬ — ПЕЧЕНЬ. Содержание: I. Аштомия печени. 526 II. Гистология печени. 542 III. Нормальная физиология печени. 548 IV. Патологическая физиология печени. 554 V. Патологическая анатомия печени. 565 VІ.… … Большая медицинская энциклопедия

КРОВЬ — жидкость, циркулирующая в кровеносной системе и переносящая газы и другие растворенные вещества, необходимые для метаболизма либо образующиеся в результате обменных процессов. Кровь состоит из плазмы (прозрачной жидкости бледно желтого цвета) и… … Энциклопедия Кольера