Лечение инфицированных ран у собак диссертация

Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Шоркина О. И., Валеева А. Н.

Похожие темы научных работ по ветеринарным наукам , автор научной работы — Шоркина О. И., Валеева А. Н.

INFECTED INJURIES TREATMENT IN DOGS

Therapeutic effectiveness of “ Ankilam” ointment at infected injuries in dogs was proved. It was established that tested preparation possesses poly-factor effect on injury process: anesthetic, anti-inflammatory, antimicrobial. It also has osmotic active properties and contributes to earlier forming of mature granulation and to the healing of injury. There were no side effects in the ointment usage.

RENAL AND BLADDER IN TOM-CATS AT UROLITHIASIS

Cats suffering from urolithiasis show sever micro-structure changes in kidneys and urinary bladder.

УДК 619:616-085+616-001.4:636.7 ЛЕЧЕНИЕ ИНФИЦИРОВАННЫХ РАН У СОБАК

Шоркина О.И., Валеева А.Н.

Казанскакя государственная академия ветеринарной медицины

Key words: wounds process, ointment "Anilkam", dogs.

В последние годы в клиническую практику для лечения гнойных ран внедрены новые мази на полиэтиленоксидной основе. Полиэтиленоксиды являются производными окиси этилена и обладают низкой токсичностью и выраженными осмотическими свойствами. В гнойной ране они активно связывают воспалительный экссудат, отдавая его в повязку, с которой жидкость испаряется, а освободившиеся их молекулы вновь присоединяют к себе экссудат, накапливающийся на дне раны. Таким образом, молекулы полиэтиленоксидов образуют с антимикробными компонентами комплекс, способный проникать в глубь тканей, что является принципиальным отличием от действия мазей на ланолин-вазелиновой основе, которые способны оказывать антимикробное действие только кратковременно и только на поверхности раны.

хирургии Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана и в лечебно-консультативном центре КГАВМ.

Объектом наших исследований служили 10 клинически больных собак крупных пород в возрасте от 3 до 5 лет, принадлежащих частным владельцам. Для исследований были подобраны животные с несвежими инфицированными кожно-мышечными ранами конечностей в области плечевого и тазового пояса, полученными спонтанно.

Больные собаки были разделены по принципу приближенных аналогов на 2 группы по 5 голов в каждой. Стремились подобрать животных с ранами, одинаковыми по площади: длиной 5-6 см, глубиной 11,5 см. Перед началом лечения проводилась хирургическая обработка ран, которая заключалась в проведении туалета раны, иссечении мертвых тканей. Далее приступали к лечению.

За животными вели ежедневное клиническое наблюдение в течение всего срока исследований в каждой группе. При этом обращали внимание на общее состояние, пищевую возбудимость, температуру тела, характер и частоту пульса и дыхания. Особое внимание обращали на степень хромоты больной конечности, пальпацией определяли её болезненность.

О ходе раневого процесса судили по следующим показателям:

1. Визуальные наблюдения: время очищения ран, появления грануляций, закрытие дна раны грануляциями, качество грануляций, ход эпителизации, состояние тканей вокруг раны.

2. Регистрация изменений площади раны (планометрические исследования). Для этого использовали метод Л.Н. Поповой: на рану накладывали кусок стерильного целлофана и маркером выводили контуры раны. Рисунок переносили на миллиметровую бумагу и подсчитывали площадь раны.

3. Определение рН с помощью эл. рН-метра рН-150МА ЭСК 10603 путем наложения электрода непосредственно на стенки и дно раневой полости.

4. Сроком окончательного заживления раны принимали полное покрытие раневого дефекта слоем эпителия.

Результаты исследований. У всех животных отмечалось беспокойство, переходящее в угнетение, повышалась температура тела до 40,5С, пульс учащался, дыхание становилось поверхностным и частым. Отмечалась хромота, сильная жажда, снижение аппетита. Ткани в этот период были отечными, болезненными, из раневой полости наблюдалось обильное выделение гнойно-гнилостного экссудата. После начала лечения изменения клинической картины происходило в зависимости от терапии.

Так, в контрольной группе у животных в течение первых дней отмечалась хромота и до 8 суток после начала лечения сохранялись выраженный отек и болезненность. Выделение гнойно-гнилостного экссудата продолжалось так же в течение 7-8суток. При пальпации в области дефекта у собак полное исчезновение болевой реакции отмечалось на 8,7±0,58 сутки. В раневой среде был явно выражен ацидоз, рН составляла 5,3-5,6.

Гиперемия вокруг раны исчезала на 7,2±0,71 сутки после начала лечения. Дно дефекта было представлено широкой зоной некротизированных тканей. Признаки гранулирования в этот период были слабыми. На 7-8-е сутки в полости дефекта отмечалось начало роста грануляции. рН раневой среды находилась в пределах 6,8- 7,3. Процессы регенерации тканей у животных данной группы полностью завершались к 23,6±1,6 суткам.

Лучшие результаты были получены в опытной группе. Уменьшение боли отмечалось на 5 сутки. Изменения цитологической картины гнойных ран происходило также на фоне снижения кислотности раневого экссудата, рН раневой среды находилась в пределах 6,3-6,8. Полное исчезновение болей в области дефекта отмечалось на 7-8 сутки от начала лечения, что коррелирует с исчезновением отека вокруг раны. Гиперемия и гнойное отделяемое прекращались на 6-8 сутки.

На пятые сутки в опытной группе поверхность дефекта полностью очищалась от некротических масс, края дефекта выравнивались, дно покрывалось грануляциями. В дальнейшем с развитием грануляционной ткани и заживления раны воспалительные процессы стихали, а интенсивность регенеративных процессов возрастала. Это происходило на фоне снижения кислотности раневого экссудата, рН раневой среды находилась в пределах 6,3-6,8.

На 5-6 сутки отмечалось начало роста грануляций. Выполнение грануляциями раны у животных этой группы происходило к 9-10 дню, при этом рН раневой среды составляла 7,3-7,8. В краях дефекта эпидермис постепенно истончался и узкой полоской наползал на созревающую грануляционную ткань, когда рН раневой среды составляла 7,8-8,2. Дефект оказывался полностью эпителизированным на 16-17 сутки, в подлежащих тканях формировался рубец. Полностью процессы заживления завершались на 17,8±0,8 сутки.

Планометрические исследования раневой поверхности показали, что в первые 3-4 суток после начала лечения площадь ран у животных обеих групп была приблизительно одинаковой (715+ 2,3 мм2 в контрольной группе и 758 + 1,5мм в опытной группе) за счет развившегося в ране гнойного воспаления. На седьмые сутки площадь ран у животных контрольной группы составила 633 мм2, а у животных опытной группы - 557 мм2. На десятые сутки площадь раны у животных контрольной группы составила 582 мм , а у животных опытной группы она составила 475 мм2 . На пятнадцатые сутки площадь раны у животных контрольной группы составила 430 мм , а у животных опытной группы она составила 282 мм2 . На двадцатые сутки площадь раны у животных контрольной группы составила 234 мм , у животных опытной группы в эти сроки уже происходило заживление ран. У животных контрольной группы заживление ран происходило в более поздние сроки - к 22-24суткам.

2008.- № 9 (76). - С. 21-23. 5. Панцуркин, В.И. Опыт применения лекарственных форм анилокаина в медицинской практике / В.И. Панцуркин, И.В. Алексеева // Фармация и общественное здоровье: материалы конф. - Екатеринбург, 2008. - С. 251-253.

ЛЕЧЕНИЕ ИНФИЦИРОВАННЫХ РАН У СОБАК

Шоркина О.И., Валеева А.Н.

INFECTED INJURIES TREATMENT IN DOGS

Shorkina O.I., Valeyeva A.N.

Therapeutic effectiveness of " Ankilam" ointment at infected injuries in dogs was proved. It was established that tested preparation possesses poly-factor effect on injury process: anesthetic, anti-inflammatory, antimicrobial. It also has osmotic active properties and contributes to earlier forming of mature granulation and to the healing of injury. There were no side effects in the ointment usage.

ОСТРАЯ ТОКСИЧНОСТЬ И КУМУЛЯТИВНЫЕ СВОЙСТВА МЕСТНОГО АНЕСТЕТИКА РОПИВАКАИНА ГИДРОХЛОРИДА

Эль-Окал О.С., Гарипов Т.В.

Казанская государственная академия ветеринарной медицины

Ключевые слова: ропивакаин, острая токсичность, кумулятивные свойства, крыс.

Key words: ropivacaine, acute toxicity, cumulative properties, rat.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ .
1.1. Этиология, патогенез, клиникоморфологические признаки
ран и раневого процесса.
1.2. Иммунология раневого процесса
1.3. Система гемостаза при раневой инфекции
1.4. Лечение инфицированных ран у животных.
2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Материал и методы исследований .
2.2. Результаты собственных исследований и их обсуждение.
2.2.1. Изучение распространенности заразных и незаразных болезней у собак за три года гг.
2.2.2. Изучение антимикробного действия чистотелового настоя
на некоторые штаммы патогенных микробов i vi.
2.2.3. Изучение действия ной чистогеловой мази на заживление экспериментальных кожномышечных ран у белых
крыс
2.2.4. Разработка различных способов лечения инфицированных
ран у собак
2.2.5. Изучение влияния чистотела на клиникогематологический статус и процесс заживления ран у собак
2.2.6. Изучение биохимических и иммунологических показателей при инфицированных ранах у подопытных собак
2.2.7. Цитологические и бактериологические исследования мазковотпечатков и пюйного экссудата при инфицированных ранах у собак .
2.2.8. Применение чистотела на фоне физиотерапии при лечении инфицированных ранах у крупного рогатого скота
2.2.9. Экономическая эффективность лечения инфицированных
ран у животных .
2.2.9.1. Экономическая эффективность лечения инфицированных ран у собак.
2.2.9.2. Экономическая эффективность лечения инфицированных ран у крупного рогатого скота.
3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ .
ВЫВОДЫ .
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

Г. Руфанов разделил раневой процесс па две фазы фазу гидратации и фазу дегидратации, т. Первая фаза заключается в расплавлении некротизированных тканей, очищении от них раневого дефекта. Продолжительность се определяется объектом повреждения, степенью инфицированиости раны, особенностями иммунной защиты организма и др. А.Д. Асратян, М. И.Кузин, Б. М. Костюченок, . Начальной реакцией организма на травму явился спазм сосудов в области раны, сменяемый их паралитическим расширением, повышением проницаемости сосудистой стенки и быстро нарастающим отеком, который получил название травматического И. Г. Руфанов, . Развивающиеся под влиянием распада погибших тканей местные нарушения обмена веществ
ацидоз, изменение состояния коллоидов и др. Гистамин расширяет просвет артериол, капилляров, венул, ускоряет капиллярный кровоток и повышает проницаемость капилляров. Повышенная проницаемость стенки сосудов поддерживается также медиаторами, образующимися из плазмы крови Е. Основную роль в этом отношении придают кининам, которые вырабатывают кининообразующий энзим. Этот энзим действует на субстрат киноген Аничков, К. Г.Волкова, В. Т.Гаршина, В. Н.Галанкин с соавт. В увеличении сосудистой проницаемости также играют роль и другие полипептиды плазмы крови лейкотоксип, а также родственные ему основные и кислые пептиды. Определенное значение в развитии сосудистых нарушений имеют простогландины, нуклеиновые РНК и жирорастворимые кислоты. Под их действием отмечена активация клеток эндотелия капилляров, а в цитоплазме появление скопления цитогранулы, образование полирибосомы, набухание митохондрии, расширение полости эидоплазматического ретикулума, выделение лейкоцитов, которые фагоцитировали микроорганизмы И. В. Давидовский, Д. С.Саркисов с соавг. Д.С. Гафуров,. Большую роль в очищении раны от некротизированных масс играет и внеклеточный протеолиз, осуществляемый лейкоцитами. Максимум тканевого протеолиза осуществляется лишь при 5,6. Очевидно, с тканевым протеолизом связано снижение ферментативной активности в зоне некроза, которое проявлялось через часа после повреждения В. Н.Галанкин с соавт. В зоне некроза значительно снижалось содержание нуклеиновых кислот. Позже наступали деструктивные изменения коллагеновых волокон некоторые коллагеновые волокна подвергались набуханию и часто визировались, также наблюдался распад их на отдельные фрагменты Аничков и др. И.В. Давыдовский, . Из протеолитической системы ферментов нейтрофилов большую роль играют катепсины, особенно катепсин С, а также щелочная и кислая фосфатаза и лактодегидрогеназа. Важную роль на протяжении всего раневого процесса, в том числе в период воспаления и очищения раны играют макрофаги, моноциты И. Г. Чертков, А. Я.Фридштейн, . Помимо упомянутых клеток в очаге воспаления присутствуют лимфоциты, Максимов считал, что они способны развиваться во всех элементах крови, соединительной ткани и являются источником плазматических клеток. Они переносят генетическую иммунную информацию, которая поддерживает или усиливает рост ряда других клеток, в том числе печени фибробластов . Касаясь механизмов лизиса нежизнеспособных тканей и очищения раны, нельзя не упомянуть об участии микробного фактора, который является обязательным участником процесса заживления раны, особенно в тех случаях, когда он протекает по типу вторичного натяжения И. В Давыдовский, . Однако, загрязнение раны микроорганизмами может сказываться отрицательно и на течение раневого процесса, что зависит от объема и характера повреждений, вирулентности и количества микробов, заселивших рану и особенностей иммунной системы микроорганизма. В принципе, возникновение и прогрессирование раневой инфекции обуславливается взаимоотношением между системой гемостаза, в первую очередь иммунной системой организма и микрофлорой ран В. Н. Веденин, ЕЛО. Антонен, А. И. Карамалак с соавг. А.М. Наметов, , В. А. Ермолаев, Юсупов, . К , . На е сутки после ранения начинается вторая фаза раневого процесса, характеризующаяся развитием грануляционной ткани, постепенно выполняющей раневой дефект.

На правах рукописи

САПОЖНИКОВ

Алексей Викторович

ЛЕЧЕНИЕ ИНФИЦИРОВАННЫХ

КОЖНО–МЫШЕЧНЫХ РАН У СОБАК

СВЕТОДИОДНЫМ ИЗЛУЧЕНИЕМ

КРАСНОГО ДИАПАЗОНА

(экспериментально-клинические исследования)

16.00.05 – Ветеринарная хирургия

А В Т О Р Е Ф Е Р А Т

диссертации на соискание ученой степени

кандидата ветеринарных наук

Научный руководитель: доктор ветеринарных наук,

профессор Ермолаев

Валерий Аркадьевич

Официальные оппоненты: доктор ветеринарных наук,

профессор Дмитриева

Таисия Александровна

наук, доцент Ненашев

Игорь Владимирович

Диссертационного совета, профессор Р.Ш. Тайгузин

I. ВВЕДЕНИЕ

1.1. Актуальность темы. Важной проблемой собаководов является травматизм животных, к которому относятся открытые механические повреждения тканей, склонных к тяжёлому течению. По данным М.Ф. Шакурова (1981), Б.С. Семёнова (1982), Э. И. Веремея, В.М. Лакисова (1992), С.В. Тимофеева (1995) и многих других, у собак он составляет 52,1% всех хирургических болезней.

В настоящее время все большее внимание медицинских и ветеринарных врачей привлекают физические методы воздействия. Наиболее популярной является лазерная терапия. Однако, несмотря на все достоинства лазерного излучения, из-за наличия некоторых побочных эффектов на клеточном уровне, противопоказаний и своей ещё достаточно высокой стоимости, невсегда является доступным (Ахметвалеева Л.В., Павлов А.В., 1997; Кусельман А.И., 1998; Дурнов Л.А. и др., 2002).

Альтернативным лазерному является светодиодное излучение красного диапазона (СДИКД), оно более щадящее для организма и оказывает противовоспалительное, противоотёчное, обезболивающее действие, повышает иммунный статус организма, не вызывая структурно-функциональных нарушений в микроциркуляторном русле тканей (Янтарёва Л.И., 1996). Красный свет стимулирует образование гемоглобина, симпатическую нервную систему, регенеративные процессы и репродуктивную функцию (Булярский С.В., с соавторами, 1998).

В последние годы были разработаны генераторы некогерентного красного света, с помощью которых осуществляется фотофорез лекарственных препаратов в медицинской практике (Миронова В.В., Булярский С.В. с соавт., 2001; Миронова В.В., Соколова Т.В., Булярский С.В., 2001; Миронова В.В. с соавт., 2002). Световая энергия, образующаяся в результате этого процесса, способствует более глубокому проникновению активных компонентов лекарственных препаратов и более продолжительному их воздействию (Жаров В.П., 1999).

Это указывает о широком применении СДИКД в медицине. В литературных источниках отсутствуют данные о применении этого метода для лечения ран у собак. Поэтому актуальность темы не вызывает сомнения.

1.2. Цель исследования. Изучить структурные изменения поврежденных тканей в процессе заживления кожно-мышечных ран при воздействии светодиодного излучения красного диапазона.

Достижение указанной цели основывалось на постановке и решении следующих задач:

1. Установить распространённость и сезонность кожно-мышечных повреждений у собак в г. Ульяновске.

2. Разработать и изготовить устройство красного диапазона с пятью диодами для лечения кожно-мышечных ран и поверхностных повреждений кожи собак.

3. Исследовать динамику гематологических, клинико-физиологических показателей процесса заживления кожно-мышечных тканей в области массетера при воздействии 10% метилурациловой мази, светодиодного излучения красного диапазона, 10% метилурациловой мази в сочетании со СДИКД.

4. Изучить морфологические изменения кожно-мышечных тканей при лечении вышеизложенными способами в сравнительной характеристике.

5. Выяснить динамику и интенсивность нарушений показателей электрокардиограммы и электрокоагулограммы при разных способах лечения кожно-мышечных ран.

6. Выявить наиболее эффективный метод лечения кожно-мышечных ран у собак, и рассчитать экономическую эффективность предложенной схемы лечения.

1.3. Научная новизна. Разработано и сконструировано светодиодное устройство красного диапазона для лечения кожно-мышечных ран.

Впервые проведена сравнительная оценка результатов воздействия светодиодного излучения красного диапазона, 10% метилурациловой мази, 10% метилурациловой мази в сочетании с действием светодиодного излучения красного диапазона на морфо-функциональное состояние кожно-мышечных ран массетеров у собак.

1.4. Практическая значимость. Установлено стимулирующее и ранозаживляющее действие светодиодного излучения красного диапазона в сочетании с 10% метилурациловой мазью на эпителиальную и соединительную ткани кожно-мышечных ран.

Высокая эффективность светодиодного источника красного диапазона позволяет рекомендовать его для проведения соответствующих испытаний в ветеринарных клиниках.

1.5. Внедрение результатов исследования. Основной материал диссертационной работы используется в учебном процессе по дисциплине ветеринарная хирургия в Санкт-Петербургской государственной академии ветеринарной медицины, Оренбургском государственном аграрном университете, Казанской ветеринарной академии имени Н.Э. Баумана, Самарской государственной сельскохозяйственной академии, Башкирском государственном аграрном университете, Воронежском государственном аграрном университете имени К.Д. Глинки, Уральской государственной академии ветеринарной медицины, Уральской государственной сельскохозяйственной академии, Курской государственной сельскохозяйственной академии им. И.И. Иванова, Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии.

1.7. Публикации. По теме диссертации опубликовано девять работ, в том числе одна в издании, регламентированном ВАК РФ.

1.8. Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 237 страницах компьютерного набора и состоит из: введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, практических предложений, списка литературы и приложения. Список литературы включает 239 источников, в том числе 197 отечественных и 42 зарубежных авторов. Работа иллюстрирована 9 таблицами и 85 рисунками.

1.9. Положения, выносимые на защиту:

1. Использование светодиодного излучения красного диапазона сопровождалось изменениями клинических, гематологических и гемастазиологических показателей.

2. Воздействие некогерентного светодиодного излучения красного спектра на репаративный процесс ускоряет очищение ран от некротических масс в зоне травматического дефекта, стимулирует образование и рост грануляционной ткани.

3. Светодиодное излучение красного диапазона повышает пролиферативную активность эпителиальных клеток и обуславливает сокращение эпителизации раневого дефекта в среднем на 5 суток.

II. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материалы и методы исследований

2.1.1. Схема исследования

Было проведено три серии опытов. Общая характеристика серий исследования представлена в таблице 1.

1. Общая характеристика серий исследования

Количество животных (голов)

Городская ветеринарная клиника

Изготовление светодиодного излучателя красного диапазона с пятью светодиодами.

Производственное испытание аппарата:

лечение собак с инфицированными кожно-мышечными ранами в области массетера, включающее бактериологическое исследование смывов с кожно-мышечных ран в области массетра.

В первой серии опытов в период с апреля 2003 года по февраль 2004 года изучали частоту, распространенность и сезонность хирургических патологий среди мелких домашних животных в ветеринарных клиниках г. Ульяновска.

В третьей серии опытов было проведено изучение влияния СДИКД на заживление кожно-мышечных ран и морфологические показатели крови у беспородных собак (n=33) возрастом от 6 до 12 мес., живой массой 5-15 кг.

Для изучения биостимулирующего действия светодиодного излучения красного диапазона была использована резаная рана. Кожно-мышечную рану

наносили в области массетера в вертикальном направлении длиной 4 см - кожная рана, 3 см - мышечная, общей глубиной – 1,5 см. Операционное поле подготавливали по методу Пирогова – Филончикова. Перед рассечением тканей проводили послойную инфильтрационную анестезию 0,5% раствором новокаина объёмом 10 мл. Кровотечение останавливали тугой тампонадой. Повязку на рану не накладывали.

Воздействие СДИКД на регенеративные процессы в организме изучалось в сравнении с воздействиями 10% метилурациловой мази и фотофореза 10% метилурациловой мази светодиодным излучением красного диапазона.

Для клинико-лабораторных исследований животные были разбиты на три группы по 11 собак в каждой.

Фоновыми считались показатели, снятые за 2-3 дня до нанесения ран. Дальнейшее снятие результатов проводили: через час, на первые, третьи, пятые, седьмые, одиннадцатые, 19-е сутки и после выздоровления – заживления ран. Все клинические и лабораторные исследования проводились по единым методикам во всех сериях опытов.

Клиническое обследование животных и морфологических показателей крови выполняли по общепринятым в практике ветеринарной медицине схемам (Кудрявцев А.А., Кудрявцева Л.А., Привольнев Т.И., 1969; Кулаченко С.П., Коган Э.С., 1979; Панасенков П.И., 1981; Абрамов М.Г., 1985; Кондрахин И.П. с соавт.,1985). Измерение температуры раны и кожи в области противоположного массетера проводили с помощью электротермометра ТПЭМ1.

При наружном исследовании раны оценивали характер тканей, отёка, экссудата (Кузин М.И., Костюченок Б.М., 1990; Плахотин, М.В. с соавт., 1990).

Электрокоагулографию проводили коагулографом Н334 в основные сроки исследования (Ватмахер У.А., Толстопятова И.А., 1969, 1970; Коблов Л.Ф., 1975, 1979).

Планометрические исследования раневой поверхности (морфометрию) проводили по методу Л.Н. Поповой (1942).

Бактериологическое исследование ран на чувствительность к антибиотикам изучали через сутки после нанесения ран, непосредственно перед их лечением по методикам, предложенным П.А Емельяненко (1982), Е.В. Козловским и П.А. Емельяненко (1982), Д.А. Васильевым с соавт (1999).

Рана это механическое повреждение покровов или органов с нарушением их анатомической целостности. В ране принято различать края, стенки, дно и полость. Промежуток между краями раны называется раневым отверстием, а пространство между стенками раны – раневым каналом. Колотые и раневые раны обычно имеют глубокий и извилистый канал, поверхностные повреждения канала не имеют. В том случае если в результате ранения какая – то часть тела собаки окажется полностью перфорированной, то такую рану ветеринарные специалисты называют сквозной. В этом случае различают входное и выходное отверстие. Когда имеет место прободение ранящим предметом стенки анатомической полости (капсула сустава, плевры, брюшины) то такая рана называется проникающей. У проникающей раны имеется только одно входное отверстие .

Классификация ран у собак.

В зависимости от характера ранящего предмета и механизма действия ветеринарные специалисты различают несколько видов ран.

Колотая рана возникает у собаки при внедрении в ткани заостренных длинных предметов. При этом характер повреждения тканей зависит от формы ранящего предмета. Колющие предметы с острым концом легко раздвигают ткани; тупые с шероховатыми поверхностями надрывают ткани, раздавливая и размозжая их по ходу раневого канала.

Резаная рана у собаки образуется у собаки при рассечении тканей острыми предметами. Резаная рана имеет ровные края и стенки и проявляется значительным зиянием, особенно в средней части раны, и кровотечением. При этом, чем острее предмет, тем меньше некротизированных тканей видно по ходу раневого канала.

Рубленая рана. По характеру повреждения рубленая рана похожа на резаную, но в ней происходит разрушение не только поверхностных, но и глубоко расположенных тканей, крупных сосудов, нервных стволов, костей, суставов и других частей тела. При рубленой ране зияние и боль выражены сильно; кровотечение слабее, чем в резаной ране.

Ушибленная рана у собаки возникает в результате воздействия тупого предмета. На участке воздействия предмета у собаки происходит разрыв кожи, сильный ушиб мускулов, сухожилий, нервов и других тканей или раздавливание и размозжение их, иногда наступает перелом костей, появляются небольшие кровоизлияния. Кровотечение при ушибленной ране отсутствует или незначительное. Сильная болевая реакция у собаки быстро ослабевает, так как нервные окончания временно теряют способность проводить импульсы (раневой ступор). Лишенные кровоснабжения и иннервации мышцы представляют из себя хорошую питательную среду для развития раневой инфекции и гнойно-гнилостного воспаления в прилежащих к раневому каналу тканях.

Рваная рана у собаки бывает при разрыве тканей остроконечными предметами, которые воздействуют в косом направлении(когти различных животных, колючая проволока и т.п.). При осмотре рваной раны ветеринарный специалист видит большое количество разорванных мышц, фасций, сосудов и других тканей, которые создают благоприятную среду для развития раневой инфекции.

Размозженная рана возникает у собаки под действием значительной силы и давления тупого ранящего предмета. В такой ране ткани и органы размозжены и пропитаны кровью; из раны свисают обрывки фасций и сухожилия.

Укушенная рана наносится зубами животных, особенно опасна подобная рана при укусе дикими животными (лисами, енотами), так возможно заражение собаки таким особо опасным для собаки и человека заболеванием как бешенство (бешенство у собак). Данная рана проявляется симптомами размозжения, ушиба и разрывом тканей.

Огнестрельная яма. Наиболее часто встречается у охотничьих служебных собак. Огнестрельная рана сопровождается повреждением тканей не только в зоне непосредственного соприкосновения с ранящим предметом (пуля и др.), но и за ее пределами. Разрушение тканей при огнестрельном ранении зависит от массы ранящего предмета, скорости его полета при ударе и быстроты амортизации силы этого предмета в тканях. В полученной огнестрельной ране различают 3 зоны (с поверхности в глубину) 1-я зона (зона раневого канала) представляет из себя раневой канал с размозженными тканями, инородными телами, микробами и сгустками крови; 2-я зона (зона травматического некроза) непосредственно окружает раневой канал и примыкает к нему; 3-я зона (зона молекулярного сотрясения, или резерва некроза) является продолжением 2-й зоны. Для 3-й зоны характерно отсутствие некроза тканей, но жизнеспособность тканей может быть сильно нарушена. Края у огнестрельной раны неровные, припухшие, с кровоподтеками и краевым некрозом. Огнестрельные раны у собак иногда бывают сквозными и имеют два отверстия. Входное отверстие у раны округлой, треугольной или звездчатой формы. Выходное отверстие обычно больше входного, часто с разорванными, вывороченными, фестончатыми краями.

Отравленная рана у собаки возникает в результате укусов ядовитыми змеями и насекомыми, при ужаливании осами, пчелами или при попадании в рану различных отравляющих веществ и ядохимикатов.

Комбинированные раны. В комбинированных ранах ветеринарные специалисты отмечают элементы рассечения тканей в сочетании с ушибом или размозжением, колотые повреждения – с ушибом тканей или их разрывом и т.д. Поэтому принято различать колото — ушибленную рану, колото-резаную рану, ушиблено-рваную рану.

Владельцы собак должны иметь в виду, что все случайные раны в момент получения собакой травмы или сразу после травмы загрязняются разнообразными микроорганизмами, которые попадают в рану с пылью, инородными телами, шерстью и т.д. В том случае, когда в ране развивается гнойное или гнилостное воспаление тканей говорят об инфицированной ране.

Клинические симптомы ран у собак.

Для раны у собак характерно наличие боли, зияние и кровотечение. Часто имеет место нарушение функции пораженного органа. Боль у собаки возникает в момент получения ей травмы и с течением времени постепенно начинает уменьшаться. Усиление местных воспалительных процессов в ране приводит к усилению болевых ощущений, а снижение — болевые ощущения. Болевая реакция у собаки особенно сильно проявляется при повреждении тканей которые богаты нервными окончаниями (надкостница, кожа в области половых органов, брюшина, роговица). Ранение паренхиматозных органов у собаки не вызывает сильной боли. Интенсивность и продолжительность болевой реакции у собаки зависит от места локализации раны, характера повреждения, индивидуальной реактивности собаки. Собаки, как и кошки, очень чувствительны к боли и могут погибнуть от болевого шока. Взрослые собаки, в отличие от молодых, сильнее реагируют на боль.

Боль у собаки можно определить при проведении клинического осмотра, когда болевая реакция сопровождается ускорением сердечных сокращений, ее сильным беспокойством и расширением зрачков.

Зияние раны сопровождается у собаки расхождением ее краев и стенок. Зияние выражено при получении собакой резаных, рубленых и рваных ран. При колотых ранах зияние отсутствует.

Кровотечение, которое возникает при ранениях, напрямую зависит от поврежденных кровеносных сосудов и вида самой раны. Кровотечение у собаки может быть наружным, внутренним, артериальным, венозным, капиллярным, паренхиматозным и смешанным (артерио-венозным). По времени происхождения кровотечение бывает первичным и вторичным, по частоте – однократным и повторным.

Нарушение функции у собаки определяется местом полученного ранения.

Какие исследования у собак проводят при получении раны.

При поступлении собаки с раной в ветеринарную клинику ветеринарные специалисты применяют общее, местное и специальное исследование.

При общем исследование ветеринарный специалист устанавливает давность ранения, вид ранящего предмета, как была оказана первая помощь и т.д. У собаки проводятся измерение температуры тела, пульса, дыхания; внимательно осматривают состояние видимых слизистых оболочек, проводится аускультация сердца.

В том случае если имеет место ранения в области брюшной стенки и таза проводят исследование мочи и кала на примесь крови, при ранениях в области грудной клетки проводят перкуссию и аускультацию легких. В том случае, когда на прием поступила собака с наложенной повязкой, ветеринарный специалист после ее снятия определяет запах и характер гнойного выделения, определяет наличие повреждений кожи, воспалительных явлений, тромбофлебитов, лимфангитов, воспаление регионарных лимфатических узлов.

Пальпацией ветеринарный специалист устанавливает изменения местной температуры, чувствительности самой кожи (анестезия, гиперстезия), наличие флюктуации (гематома, абсцесс), фибринозной (сгустки фибрина) или газовой (анаэробная инфекция). При осмотре раны определяют характер эпителизации и величину эпителиального ободка. После всего этого ветеринарный специалист приступает к внутреннему обследованию полученной собакой раны. При проведении внутреннего исследования ветеринарный специалист применяет резиновый или эбонитный катетер, металлический зонд. При необходимости проводят контрастную рентгенографию. После внутреннего осмотра раны проводят исследование раневого экссудата физико-химическими и микробиологическими методами. Для уточнения вида раневой инфекции проводят бактериологическое исследования экссудата.

Для исключения внутреннего кровотечения, а также переломов полученных в результате ранения в ветеринарной клинике Вашей собаке сделают рентген. Если имеется подозрение на получение повреждений внутренних органов собаке назначают УЗИ.

Заживление раны у собаки. Заживление ран у собак бывает первичным или вторичным натяжением.

Заживление раны первичным натяжением у собаки возможно только при анатомически правильном соединение краев и стенок ран, где не должно содержаться после остановки кровотечения мертвых тканей. Первичным натяжением у собаки заживают чистые операционные и свежие случайные раны, после их соответствующей с соблюдением правил асептики и антисептики обработки (хирургическое иссечение мертвых тканей, применение химических препаратов, антибиотиков, удаления инородных тел).

Заживление в ране начинается уже в первые часы после остановки кровотечения и сближения краев раны. В ране начинает развиваться гиперемия, происходит изменение реакции раневой среды в кислую сторону, из стенки раны выпадает тончайший слой фибрина, который склеивает края раны. В первые сутки раневая щель быстро наполняется мигрирующими лейкоцитами, лимфоцитами, фибробластами, макрофагами. Вышеуказанные клетки проявляют свои пластические и фагоцитарные функции и формируют синцитий. В дальнейшем в раневом канале прорастают капилляры и нервы. Врастанию сосудов и нервов способствует наличие в щелевидной полости вазогенных и соединительнотканных клеток, которые пронизывают фибринозную сетку. Через 6-8 дней в ране вокруг сосудов сформировывается соединительная ткань. Окончательное и прочно сращение краев и стенок у собак происходит в течение 6-8 дней. Установлено, что длительные болевые раздражения резко ухудшают регенеративный процесс в ране.

Заживление вторичным натяжением у собаки происходит при зияние раны, наличие в ране мертвых и инородных тел, развития гнойного воспаления, раневой инфекции, повторных кровотечениях и загрязнениях. Заживление при вторичном натяжении у собаки протекает от 1до 2 месяцев. Заживление вторичным натяжением заканчивается образованием рубца.

Лечение. При лечение раны у собаки должно быть комплексным и зависит от времени ранения, характера повреждения тканей, вида инфекции, характера раневых осложнений. В комплексное лечение входит – механическая, физическая, химическая и биологическая антисептика, патогенетическая терапия.

Механическая антисептика включает в себя удаление из раны размозженных и загрязненных тканей, инородных тел, различных микроорганизмов. Механическая антисептика включает в себя туалет раны. Туалет раны собаке делают при оказании первой помощи и в процессе лечения. Туалет начинается с обработки около раневой поверхности, при этом рану покрывают марлевой салфеткой. Вокруг раны выстригают или выбривают волосы, кожу обрабатывают дезинфицирующим раствором, спиртом, риванолом или йодом. С поверхности раны пинцетом удаляют грубое загрязнение, обрабатывают 3%-ным раствором перекиси водорода или слабым раствором марганцовки.

Хирургическая обработка раны заключается в устранение источника инфекции и интоксикации, способствует быстрой регенерации поврежденных тканей и заживлению образовавшегося дефекта, предупреждает раневые осложнения.

В основном различают следующие виды хирургической обработки: 1) Первичная ранняя, когда проводят в первые сутки после ранения; 2) первичная поздняя, проводится в ближайшие дни; 3) вторичная обработка, применяется ветеринарными специалистами в случаях, когда первичная обработка была недостаточной или не применялась.

По характеру хирургического вмешательства различают: полное иссечение раны (эксцизия раны), частичное иссечение, рассечение раны. Хирургическую обработку применяют при лечении свежих загрязненных и инфицированных ран как неотложную и необходимую меру.

Неотложная помощь при проникающем ранение грудной клетки.

При проникающем ранение грудной полости помощь собаке должна быть оказано в экстренном порядке, так как у собаки в результате развившегося пневмоторокса может наступить смерть.

Владелец собаки должен как можно быстрее прекратить доступ воздуха в грудную полость. Для этого кожу и шерсть на расстоянии 5см от раны обрабатываем настойкой йода, по кругу раны смазываем вазелином, прикладываем на рану полиэтиленовый пакет, пленку, сверху прикладываем вату и крепко бинтуем. В дальнейшем собаку как можно быстрее доставляем в ветеринарную клинику.

Неотложная помощь при ранах брюшной полости.

При больших ранах брюшной полости у собаки часто происходит выпадение кишечника. И если кишечник не поврежден, то собаку можно спасти.

Помощь заключается в промывание выпавших петлей кишечника 0,1% раствором риванола, фурацилина, когда их под руками нет можно воспользоваться прокипяченной водой. Затем чистой тканью (полотенце, марля, простынь) предварительно смоченные раствором фурацилина, риванола осторожно вправляем через раневое отверстие в полость живота. Накладываем на рану бинтовую повязку и как можно быстрее доставляем собаку в ветеринарную клинику.