Принципы забора биологического материала на паразитические инфекции

Составитель:

Рецензенты:

главный специалист по клинической лабораторной диагностике УЗ Гомельского областного исполнительного комитета А.А. Кудря

Характеристика вируса типа А (H1,N1)

Высокопатогенный вирус гриппа А (H1,N1) (ВПВГА) относится к семейству Orthomyxoviridae. Геном вируса представлен восемью фрагментами РНК. По данным генетического анализа, вирус гриппа, вызвавший вспышку заболевания среди людей в Мексике и США весной 2009 года, является реассортантом вирусов гриппа свиней.

Вирус передаётся от человека к человеку воздушно-капельным путём. Не исключён также и контактно-бытовой путь передачи. Инкубационный период при гриппе ВПВГА составляет обычно 2-3 дня, и вирус может выделяться в окружающую среду заболевшим 7 дней и более. Клиническая картина заболевания разнообразна – от бессимптомных форм до тяжелых пневмоний. Вирус чувствителен к озелтамивиру и занамивиру.

Вирус чувствителен к повышенным температурам и погибает при нагревании до 70 0 С в течении 30 минут. Вирус также чувствителен к различным дезинфектантам, обладающим вирулицидным действием.

ВПВГА характеризуется высокой антигенной изменчивостью. Опасения Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) связаны с генетической новизной вируса и его потенциальной способностью к дальнейшей реассортации, вследствие чего возможно возникновение более агрессивных вариантов инфекции.

ВОЗ присвоила вирусу гриппа А (H1,N1) шестую степень угрозы (из шести). Степень угрозы по ВОЗ не характеризует патогенность вируса (то есть опасность заболевания для жизни людей), а указывает на его способность к распространению.

Определение случаев заболевания

Подтверждённый случай – заболевание, при котором имеются симптомы острого респираторного заболевания (ОРЗ) с лабораторно подтверждённой инфекцией, вызванной ВПВГА одним из следующих методов:

l полимеразная цепная реакция (ПЦР) в режиме реального времени

l выделение вируса в культуре клеток.

Вероятный случай – у человека имеет место ОРЗ, при этом результат ПЦР положительный на грипп типа А, но отрицательный на подтип Н1 или Н3.

Подозрительный случай – случай, при котором:

l У человека имеется ОРЗ, и этот человек тесно контактировал с лицом с подтверждённой инфекцией, вызванной ВПВГА, в то время, когда это лицо находилось в состоянии болезни, или

l У человека имеет место ОРЗ, и известно, что этот человек недавно контактировал с животным с подтверждённой или подозреваемой инфекцией, вызванной ВПВГА, или

l У человека имеет место ОРЗ, и этот человек совершил поездку в район, где имеют место подтверждённые случаи ВПГА.

При поступлении из организации здравоохранения информации о подтверждённом, вероятном или подозрительном случае заболевания людей ВПГА, специалистами регионального центра гигиены и эпидемиологии проводится эпидемиологическое расследование.

Организация лабораторной диагностики

Сбор, хранение и транспортировка образцов для лабораторной диагностики

Сбор клинического материала осуществляет обученный медицинский работник лечебно-профилактического учреждения в средствах индивидуальной защиты органов дыхания (респиратор), защитных очках или щитках для защиты лица, бахилах, двойных резиновых перчатках в стерильные флаконы, пробирки, контейнеры, стерильными инструментами.

Для диагностики заболевания могут быть использованы следующие образцы:

l мазок из носа

l мазок из носоглотки

l аспират из носоглотки

l смыв из носовой полости

l содержимое эндотрахеальных трубок

По клиническим показаниям к ним могут быть добавлены:

l трахеальный аспират

l бронхоальвеолярный лаваж

l биоптат легочной ткани

l ткань легкого или трахеи, взятая post mortem.

Курьер получает в лаборатории диагностики вирусных и особо опасных инфекций ОблЦГЭ и ОЗ стерильные пробирки с физраствором и стерильные тампоны, упакованные по 10 штук. Пробирки и тампоны хранятся в приемном покое УГОТКБ, годны для использования 7 дней. В приёмном покое хранятся также одноразовые стерильные пластиковые сухие пробирки объёмом 50 мл для сбора биологического материала (мокрота, содержимое эндотрахеальных трубок, ткань лёгкого и др.).

Оптимальные сроки забора

l до начала этиотропной терапии

l мазок из носовой полости, зева - не позднее 5 дня от начала заболевания (лучше первые 3 дня)

l парные сыворотки крови 1-я сыворотка не позднее 3-5 дня заболевания.
2-я сыворотка через 14 дней

l секционный материал - в день смерти больного

Техника забора клинического материала

Венозная кровь

Для серологического исследования забираются парные сыворотки крови. Первую пробу крови берут в первые 3-4 дня заболевания (или в первый день обращения за медицинской помощью). Кровь забирается в чистую сухую пробирку шприцем из вены в количестве 3-5 мл у взрослых.

Первичная обработка крови проводится в клинико-диагностической лаборатории УГОТКБ. Венозная кровь, отстаивается 30 минут при комнатной температуре. При помощи стеклянной палочки отделяют столбик сгустка от стенок пробирки. Пробирку центрифугируют при 1500 об/мин 10 минут. Полученную сыворотку отсасывают автоматическим дозатором с одноразовым наконечником. На каждую сыворотку используется отдельный наконечник. Сыворотка не должна быть гемолизированная, хилезная, с признаками бактериального пророста.

Первую пробу сыворотки хранят при температуре минус 20 0 С до получения второй сыворотки крови. Повторное оттаивание – замораживание не допускается.

Вторую пробу берут через 14 дней после начала заболевания. Обе пробы одновременно отправляют для исследования в лабораторию диагностики вирусных и особо опасных инфекций в течение 24 часов после забора второй сыворотки.

Одиночные сыворотки лаборатория диагностики вирусных и особо опасных инфекций не принимает, т.к. диагностика осуществляется на основании 4-х кратного увеличения титра антител во второй сыворотке по сравнению с первой.

Мазок из полости носа

Мазок из полости носа забирают сухими стерильными ватными тампонами. Перед взятием материала полость носа необходимо очистить от слизи, лейкоцитов, слущенных клеток эпителия.

Тампон ввести легким движением по наружной стенке носа на глубину 2-3 см до нижней раковины. Затем тампон слегка опустить книзу, ввести в нижний носовой ход под нижнюю носовую раковину, сделать вращательное движение и удалить вдоль наружной стенки носа. Мазок берётся из обеих полостей носа. Тампоны погрузить в стерильную пробирку с 3 мл транспортной среды (фосфатно-солевой буфер или физраствор), отломать концы палочек и плотно закрыть пробкой.

Материал в течение 1 - 4 часов доставляется в лабораторию.

Мазки должны быть забраны таким образом, чтобы в них содержались клетки, имеющие диагностическое значение - цилиндрический эпителий из глубоких отделов носа, в котором размножаются вирусы. Мазки, содержащие клетки плоского и переходного эпителия из наружных отделов носа не информативны и исследованию не подлежат.

Мазок из ротоглотки

Мазки берут сухими стерильными ватными тампонами вращательными движениями с поверхности миндалин, нёбных дужек и задней стенки ротоглотки. Тампоны погрузить в стерильную пробирку с 3 мл транспортной среды (фосфатно-солевой буфер или физраствор), отломать концы палочек и закрыть пробкой.

Секционный материал

Кусочки ткани легких берут асептически. Объем проб – около 1-2 см?. Секционный материал помещают в стерильную посуду и транспортируют в термоконтейнере в течение 24 часов.

l Все виды собранного биологического материала должны храниться в больнице не более суток при температуре 2-8°С

l Сыворотка хранится в замороженном состоянии

Каждая проба представляется с сопроводительным документом. Направление на исследование материала на ВПГВА методом ПЦР представлено в Приложении 1. Материал взятый post mortem представляется с направлением по форме Приложения 2. Для исследования на грипп и другие ОРВИ (парагрипп, аденовирусная инфекция, РС-инфекция) методом РИФ с направлением на обычном бланке для исследования биологического материала.

Материал доставляется в лабораторию в специальном термоконтейнере с охлаждающими элементами. При необходимости используются специальные среды для транспортировки вирусосодержащего материала (выдает лаборатория диагностики вирусных и особо опасных инфекций ОблЦГЭ и ОЗ).

Все транспортируемые образцы должны быть упакованы в тройную упаковку, содержащую три упаковочных слоя. Упаковка должна быть выполнена с учётом предотвращения любой утечки содержимого, выдерживать удары и нагрузки, имеющие место при транспортировке. Между первичной ёмкостью и вторичной упаковкой должен находиться мягкий абсорбирующий материал, в количестве достаточном для впитывания всего содержимого первичных ёмкостей. При транспортировке нескольких клинических образцов – каждый упаковывается в первичную упаковку, исключается любой контакт между ними.

Методы лабораторной диагностики

Позволяет обнаружить антиген вируса гриппа в клетках цилиндрического эпителия дыхательного тракта больного за счёт взаимодействия антигенов со специфическими противовирусными антителами. Вирус и инфицированная клетка очень неустойчивы, забор материала нужно проводить как можно быстрее после появления клинических симптомов, т.к. число инфицированных клеток уменьшается по ходу болезни. Вследствие мутаций вновь появившиеся высокопатогенные штаммы вируса гриппа свиней изменили свои антигенные свойства, вследствие чего иммунофлюоресценция может быть ложноотрицательна. Поэтому метод не применяется для диагностики ВПВГА, а используется для диагностики гриппа А (кроме свиного), гриппа В, парагриппа, аденовирусной и респираторно-синтициальной инфекции.

Это методы определения специфических антител в парных сыворотках крови с целью ретроспективного подтверждения диагноза. Серологический анализ позволяет определить заболевание, вызванное одним из 6 подтипов гриппа А, включая свиной и птичий, гриппом В.

Полимеразная цепная реакция

Определяют РНК вируса в диагностическом материале. Результаты получают через 24 часа. При исследовании методом ПЦР анализ проводится в два этапа: I этап – обнаружение вирусов гриппа А, II этап – идентификация субтипов H1N1 и H3N2.

Выделение вируса в культуре клеток или куриных эмбрионах

Метод позволяет не только идентифицировать возбудителя, но и изучить его антигенные, фенотипические, генетические свойства, определить чувствительность к лекарственным препаратам. Это самый длительный метод - результаты через 2-10 дней. Материал для исследования является отделяемое из глубоких отделов носовой полости, зева, секционные ткани. Для транспортировки используют специальные среды. Исследование проводится в г. Минске в лабораториях Национального Центра Гриппа.

Приложение 1

для лабораторного исследования биологического образца от больного ОРИ.

[youtube.player]

Правила забора, хранения и транспортировки биологического материала для микробиологического исследования.

Биологический материал целесообразно получать до начала антимикробной терапии.
• Материал для бактериологического исследования берут непосредственно из очага инфекции или исследуют клинически значимый биологический материал.
• Необходимо соблюдать асептику, избегая контаминации биологического материала посторонней микрофлорой.
• Количество материала должно быть достаточным для проведения исследования.
• Собирают материал в стерильную посуду с пробками, полученную в микробиологической лаборатории: для взятия отделяемого из раны, мазков со слизистых оболочек, из глаза, уха, носа, зева, цервикального канала, влагалища, анального отверстия следует использовать стерильные ватные тампоны, для крови, гноя, спинномозговой жидкости и экссудатов используют стерильные шприцы и специализированные транспортные среды, для мокроты, мочи и кала - стерильные плотно закрывающиеся небьющиеся контейнеры.

Внимание: необходимо следить за сроками годности посуды, полученной в лаборатории. Если посуда, стерилизуемая в лаборатории, не использована в срок, указанный на этикетках её необходимо вернуть в лабораторию для повторной стерилизации.

• Нативный материал доставляют в лабораторию в максимально короткие сроки (для большинства образцов не позднее 1,5-2 ч после их получения). Допускается хранение материала в холодильнике при 4° С (это не относится к биологическому материалу, полученному из стерильных в норме локусов: ликвору, крови, внутрисуставной и плевральной жидкости!).
• При использовании транспортных сред биологический материал можно хранить в течение 24 ч.
• Жидкий биологический материал можно транспортировать непосредственно в шприце, на кончик которого надет стерильный колпачок или загнутая под углом игла.
• Для исследования на анаэробы биологический материал необходимо помещать в анаэробные условия. Для жидких образцов (кровь, гной, экссудат, жидкости из стерильных полостей) используют специальные флаконы с жидкой питательной средой, заполненные газовой смесью определенного состава, куда из шприца уколом иглы через резиновую плотно завальцованную крышку вносят материал. Можно использовать анаэробные коммерческие тампоны с транспортной средой.
• Транспортировка осуществляется в металлических биксах (пеналах), термоконтейнерах, которые должны легко подвергаться обработке.
• К материалу прилагают сопроводительный до­кумент, где указывают наименование, источник и метод получения биологического материала, дату и время его взятия; ФИО, пол и возраст больного; название учреждения, отделения, № палаты; пред­полагаемый диагноз инфекционной патологии и предшествующую антибактериальную терапию; фамилию и подпись врача, направившего материал для проведения бактериологического исследова­ния.

Внимание: погрешности в правилах сбора материала для микробиологического исследования приводят к ошибкам в диагностике возбудителя и определении его антибиотикочувствительности.

• Для взятия крови используют стерильные шприцы или специальные системы для забора крови одноразового пользования.
• Кровь берут во время подъёма температуры из периферической вены с соблюдением правил асептики и мер индивидуальной защиты, предусмотренных при работе с кровью (использовать перчатки).
• Кровь засевают в питательные среды сразу после взятия у постели больного или процедурной.
• Перед использованием флаконов визуально определяют прозрачность среды, любое помутнение свидетельствует об их непригодности.
• При подозрении на анаэробную инфекцию необходимо одновременно собирать кровь в два флакона – с питательными средами для аэробного и анаэробного культивирования.
• Не следует брать кровь из сосудистых катетеров, кроме случаев, когда предполагается инфекция катетерного происхождения.

• Спинномозговую жидкость получают при люмбальной пункции или пунции боковых желудочков мозга в объеме 3-5 мл, помещают в стерильную, желательно центрифужную пробирку и немедленно доставляют в лабораторию.
• Полученную пробу доставить в лабораторию, избегая чрезмерного перегрева и особенно охлаждения (может быть использован термос). Охлаждение ликвора ниже 300 ведёт к гибели менингококков.
• При невозможности немедленно доставить в лабораторию ликвор сохраняют при 370 в термостате.
• При использовании коммерческих сред (BacT/ALERTFA и др.) свежевзятый ликвор в количестве 5-10 мл из шприца, проколов резиновую пробку, вносится во флакон со средой (см. исследование крови).

• Исследуют перитонеальную, синовиальную, плевральную, суставную, перикардиальную жидкости.
• Для бактериологического исследования используют жидкости, взятые при пункции и аспирации.
• Попавшие в шприц пузырьки воздуха удаляют и помещают жидкость в анаэробную транспортную систему или отправляют её в шприце, предварительно сняв (или загнув) иглу или надевают на канюлю защитный стерильный колпачок.
• Минимальный объём жидкости для выделения бактерий 1-5 мл, для выделения грибов или микобактерий не менее 10 мл.
• Избыток жидкости или гной транспортировать в стерильных контейнерах с завинчивающейся крышкой.
• Взятие материала тампоном не предохраняет анаэробы от воздействия кислорода воздуха, не позволяет приготовить качественный препарат для микроскопии, не гарантирует выделение культуры при незначительном количестве микробов в образце.
• Не рекомендуется использовать антикоагулянты (цитрат, этилендиаминтетрауксусную кислоту), подавляющие рост некоторых видов бактерий.
• При необходимости лучше использовать гепарин.
• При достаточном количестве жидкости можно производить посев из шприца во флаконы со средой для гемокультур в соотношении 1:5 - 1:10 (5-10 мл). Однако при этом становится невозможной прямая бактериоскопия материала, а сроки идентификации удлиняются на сутки в сравнении с изолятами, выделенными при первичном посеве на плотные среды.

• Взятие материала производит лечащий врач во время операции или перевязки.
• В большинстве случаев исследуют поражённые ткани и аспираты.
• Наиболее правильный способ взятия жидких материалов – объёмно с помощью стерильного шприца. Отбор материала тампоном производят только при невозможности осуществления объёмного метода.
• Промыванием раневой поверхности физ. раствором удаляют местно применяемые антисептические и антибактериальные препараты.
• Кожу вокруг раны обрабатывают спиртом или другим антисептиком, некротические массы, детрит, гной удаляют стерильной сухой салфеткой.
• Все ёмкости с отобранным материалом плотно закрывают стерильными пробками.
• Доставляют в лабораторию в течение 1 часа. При невозможности доставить материал в течение этого времени, он должен храниться в холодильнике, но не более 2 часов.

Отделяемое открытых инфицированных ран
Материал берут двумя стерильными тампонами (один для посева, второй - для бактериоскопии) круговыми вращательными движениями от центра к периферии поражённого участка помещают в стерильную пробирку.

Кусочки тканей
Помещают в другую плотно закрывающуюся стерильную ёмкость (пробирку), содержащую небольшое количество стерильного физ. раствора.

Материал при инфекциях нижних дыхательных путей

• Накануне, за 6-8 часов (на протяжении ночи, предшествующей забору материала) отменяют все медикаменты и процедуры.
• Материал забирают с пораженных мест в разгар воспалительного процесса с соблюдением правил асептики.

Край век.
Корочки гноя удаляют пинцетом. Берут материал из язвочки у основания ресниц.

Материал при инфекциях урогенитального тракта
Внимание: взятие материала для микробиологического исследования проводит акушер-гинеколог до проведения мануального исследования
Амниотическаю жидкость
Собирают через катетер, либо аспирируют при кесаревом сечении, либо пунктируют плодный пузырь.

Придатки матки.
Материал из очага инфекции (гной, экссудат, кусочки ткани) получают при оперативном вмеша­тельстве или при диагностической пункции опухо­левидных образований, проводимой через влага­лищные своды.

Общие показания к обследованию: сепсис неясной этиологии, гангрена, абсцессы, флегмона, перитонит, экссудативный плеврит, нагноения ран с подозрением на анаэробную инфекцию, гнойный артрит.
Образцы клинического материала для исследования на анаэробы во избежания контакта с атмосферным воздухом получают при использовании инвазивных методов забора.

Исследуемые материалы: кровь, плевральная, перитонеальная и сино­виальная жидкости, гной из абсцессов и других закрытых полостей (если объем гноя превышает 2 мл, то в пробирке под резиновой пробкой сохраняются относительно ана­эробные условия в течение нескольких часов), материалы из глубоких отделов свища (после очистки и асептической обработки наружного от­верстия) и ран.

Если нет возможности использо­вать метод аспирации шприцем, материал берут стерильным ватным тампоном, который помещают в анаэробную транспортную среду сохранения и до транспортировки в лабораторию содержат при ком­натной температуре;
Фрагменты костной и мышечной тканей размером 1x1 см, взятые из глубокого очага воспаления во время операции (если сроки доставки мате­риалов в лабораторию превышают 15-20 мин, фрагменты тканей погружают в небольшой объем стерильного физраствора).

Не подлежат исследованию на анаэробы: отделяемое поверхностных ран и язв, мазки из зева, носа и ротовой полости,мазки из влагалища и цервикального канала, мокрота и бронхиальные смывы, моча (кроме мочи, полученной надлобковой пункцией мочевого пузыря), содержимое желудка, тонкого и толстого ки­шечника, фекалии (за исключением предполагаемой Clostridium difficile-ассоциированной диареи).

Исследование фекалий на патогенные и условно-патогенные энтеробактерии и дисбактериоз.

• При исследовании на дисбактериоз пациент за 1-3 дня до взятия пробы должен находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике, а также алкоголь, антимикробные лекарственные препараты и т. п.
• Фекалии собирают сразу после дефекации из предварительно обработанного дез. раствором и тщательно промытого водой судна, горшка, специального лотка или с пеленки с помощью стерильной стеклянной палочки, проволочной петли или деревянного шпателя.
• Порцию фекалий помещают в стерильный флакон.
• Объём испражнений для исследования на патогенные энтеробактерии, флору и на дисбактериоз должен составлять 1/3 флакона, объёмом 20 мл.
• При наличии в испражнениях патологических примесей (слизь, хлопья, гной) их следует включать в исследуемую пробу.
• Материал доставляется в лабораторию в кратчайшие сроки
• Испражнения для исследования на патогенные энтеробактерии можно получить непосредственно из прямой кишки с помощью ректальных, ватных или ватно - марлевых тампонов, укрепленных на металлической или деревянной палочке, вводя их круговыми движениями в прямую кишку на 6-8 см.

• Желчь собирают при зондировании в проце­дурном кабинете отдельно по порциям: А, В и С (соответственно дуоденальное содержимое, пузырную желчь и желчь из желчных протоков) в три стерильные пробирки , либо во время оператив­ного вмешательства с помощью шприца в одну про­бирку.
• Дуоденальное содержимое и желчь имеют зеленовато - желтый цвет и щелочную реакцию. Кислая реакция, белесоватый оттенок жидкости, наличие хлопьев, свидетельствует о примеси желудочного сока, такой материал не пригоден для исследования.
• Полученные порции желчи доставляют в ла­бораторию не позднее 1-2 часа от момента получения, следя за тем, чтобы пробирки находились в строго вертикальном положении

• Отбор проб грудного молока производится в поликлинике или стационаре в специально выделенном помещении.
• Перед сцеживанием молока женщина должна вымыть руки с мылом, тщательно обрабатывает соски и околососковую область молочных желез отдельными ватными тампонами, смоченными 700 спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном).
• Молоко из правой и левой молочных желез собирается в отдельную посуду.
• Первые 5-10 мл сцеженного молока исследованию не подлежат.
• Последующие 3-5 мл сцеживаются в стерильные флаконы, которые закрываются стерильными пробками и доставляются в лабораторию не позднее 2-х часов в вертикальном положении во избежании опрокидывания и замачивания пробок.
• До момента исследования молоко должно храниться в холодильнике.
• Сцеженное накануне молоко исследованию не подлежит.

Соскоб из носа.
Необходимо предварительно очистить полость носа от слизи ( взрослым – высморкаться, детям – очистить с помощью ватных турунд). Тампон вводят на глубину 2-3- см до нижней раковины, затем слегка опускают книзу , вводят в нижний носовой ход под нижнюю раковину, делают вращательное движение на пол оборота, таким образом, чтобы в мазке было как можно больше эпителиальных клеток. Удаляют тампон вдоль наружной стенки носовой полости, опускают в пробирку с физиологическим раствором. Палочку обломать, флакон закрыть резиновой пробкой.

Для ранней диагностики краснухи выявляют антиген в клетках цилиндрического эпителия носа от больных или контактных. В качестве материала для исследования служит соскоб из нижнего носового хода (см.п.1- соскоб из носа).

Мазки из зева
Рекомендуется мазки делать до еды. Мазки отобрать при помощи сухого стерильного ватного тампона на палочке, которым протереть поверхность миндалин, задней стенки глотки и небных дужек. Тампон не должен касаться языка и слизистой полости рта. После взятия мазка тампон поместить в среду (розового цвета) во флакон, закрыть его пробкой.

Пробы фекалий
Для обследования контактных с рота -, энтеро-, полиовирусной инфекцииями забирают пробы фекалий массой 1-2 г. в чистый флакон.

[youtube.player]

Материал на бактериологическое исследование забирается в стерильную посуду до

начала антибактериальной терапии.

Доставлять с соблюдением сроков в биксе без переохлаждения.

КРОВЬ

МОЧА

На микрофлору забирается утренняя (накопительная) средняя порция мочи после туалета наружных половых органов в количестве 3-5 мл. Доставлять не позднее 2 часов при условии хранения в холодильнике. При уретрите, цистите - забор первой порции мочи.

МОКРОТА

Перед забором почистить зубы, прополоскать рот свежей кипяченой водой или раствором антисептика, без усилий собрать утреннюю (накопительную) мокроту без слюны в количестве 1-5 мл. Доставлять не позднее 2 часов с момента забора.

НОС

1. При заболеваниях - стерильным ватным тампоном раздельно для каждого носового
хода из глубоких отделов, предварительно освободив нос от слизи. При сухой
слизистой — увлажненным 0.9% раствором NaCl ватным тампоном.

2. На носительство золотистого стафилококка - из передних отделов полости носа
одним тампоном из обеих носовых ходов, не касаясь кожи носа. Доставлять в
течение 2 часов без переохлаждения.

ЗЕВ

Натощак или через 2 часа после приема пищи, жидкости.

1. На дифтерию - с помощью шпателя тампоном на границе здоровой и пораженной

ткани. Одновременно мазок тампоном из обеих носовых ходов.

При подозрении на дифтерию - 2 или 3 тампона из зева для прямой бактериоскопии, постановки опыта на токсигенность, посева. По показаниям - мазок из мест редкой локализации, зева, носа. Доставлять в течение 2 часов без переохлаждения. В вечерние, ночные часы, воскресенье материал опускать в теплую среду обогащения и хранить в термостате +37 С.

2. На микрофлору - с помощью шпателя ватным тампоном обтереть правую
миндалину, дужки, язычок, левую миндалину, заднюю стенку глотки. Не касаться
слизистой рта, языка! Доставлять в течение 2 часов без переохлаждения.

3. На менингококк - забор и посев у постели больного или лаборатории производит
лаборант, врач-бактериолог с задней стенки носоглотки с помощью шпателя
тампоном, изогнутым под углом 45 в нижней % его длины о пробирку. Доставка и
посев немедленно!

4. На коклюш - у постели больного или в лаборатории производит лаборант с задней
стенки глотки (тампон вниз) изогнутым ватным тампоном под углом 45 . Доставка
и посев немедленно, без переохлаждения.

5. На микоз - ватным тампоном с пораженных участков слизистой. Доставлять в
течение 2 часов без переохлаждения.

ПРОМЫВНЫЕ ВОДЫ БРОНХОВ

В стерильную пробирку в количестве 5 мл. Доставлять в течение 2 часов без переохлаждения.

ЛИКВОР

Последние порции в количестве 1-3 мл в стерильную пробирку с соблюдением правил асептики над спиртовкой. Доставлять немедленно в теплом пенале или помещать на 37 в термостат.

ОТДЕЛЯЕМОЕ РАН

Кожу вокруг раны предварительно обработать раствором антисептика, некротические массы, детрит, гной удалить стерильной салфеткой. Забор материала производить ватным тампоном круговыми вращательными движениями от центра к периферии. По показаниям - 2 тампона, один для нативной бакткриоскопии.

По Cito! - 3 тампона для бактериоскопии, посева и постановки чувствительности к антибиотикам. При наличии в ране дренажа, катетера - внутренняя часть отрезается стерильными ножницами и помещается в флакон с питательной средой. Доставлять в течение 1-2 часов без переохлаждения. Вне часов работы лаборатории материал берется в среду обогащения и хранится в термостате при 37 С в клинической лаборатории.

ПУНКТАТЫ. МАТЕРИАЛ НА АНАЭРОБЫ. ОТДЕЛЯЕМОЕ ГЛУБОКИХ РАН. КУСОЧКИ ТКАНЕЙ

Нативные материалы в шприце в количестве 0.5-3 мл, на конец иглы -резиновую пробирку, завернув в стерильную салфетку, в течение 0.5-2 ч. Кусочки тканей, нативный материал в количестве 0.5-3 мл поместить в стерильные флаконы, пробирки. Доставка в течение 2 часов или с тиогликолевой средой - доставка в течение 12-24 часов.

ГЛАЗА

За 5-6 часов до забора отменить все процедуры и медикаменты. Конъюктива - ватным тампоном со слизистой от наружного к внутреннему краю, не касаясь кожи, раздельно с каждого глаза.

Секрет слезного мешка - после массажа отделяемое ватным тампоном.

Края век - удалить корочки, взять тампоном из язвочек у основания ресниц или выдернуть несколько ресниц и погрузить в питательную среду. Доставлять в течение 2 часов без переохлаждения.

ПОЛОВЫЕ ОРГАНЫ

Вульва - до мануального исследования, после введения зеркала и подъемника брать ватным тампоном с патологически измененных участков.

Матка, придатки матки - при оперативном вмешательстве брать экссудат, кусочки органов во флакон или пробирку с питательной средой.

Отделяемое уретры - после туалета наружных половых органов брать ватным тампоном, не касаясь кожи. Доставлять в чеченце 1-2 часов без переохлаждения.

По показания параллельно с взятием материала врач-гинеколог (врач-уролог) готовит мазки на предметном стекле, используя отдельные стерильные ватные тампоны или гинекологические инструменты, равномерно распределяя материал без грубого втирания и резких штриховых движений.

НА УРЕАПЛАЗМОЗ

Без антибиотиков в течение 2 недель, до провокации.

из уретры, не мочиться в течение 4-6 часов, головку полового члена обработать стерильным ватным тампоном, смоченным 0.8% раствором NuCl в области наружного отверстия. Первые капли выделений удалить, а последующие посеять. Если нет выделений, то соскоб ложкой Фолькмана на глубину 2-3 см.; 10 мл первой мочи, сеять осадок.

из уретры после массажа через влагалище ложкой Фолькмана соскоб в питательную среду.

Питательная среда после посева должна быть доставлена в лабораторию в течение 1 часа или поместить на 37 о С в термостат.

ЖЕЛЧЬ

При зондировании при заборе желчи в клиническую лабораторию отдельно порции А, В, С в три стерильные пробирки в количестве 2-5 мл, либо во время операции с помощью шприца в пробирку, соблюдая правила асептики. Доставлять в течение 2 часов.

ГРУДНОЕ МОЛОКО

С соблюдением правил асептики. После туалета молочных желез, предварительно сцедив первые капли в салфетку. Доставлять в количестве 1-3 мл в стерильных флаконах в течение 0.5-1 часа.

УШИ

При поражении наружного уха обработать кожу 70 спиртом с последующим промыванием физиологическим раствором. Затем отделяемое из очага собирают ватным тампоном. Доставлять в течение 2 часов без переохлаждения.

При поражении среднего, внутреннего уха исследуют пунктаты и материал, полученный во время оперативных вмешательств, собранный в стерильную посуду или с питательной средой (вне часов работы лаборатории).

КАЛ

1. На дизентерию - первые порции, на сальмонеллы - последние порции, или
из судна без следов дез. растворов в количестве 0.5-1 г в пробирку с
глицериновым консервантом (хранить в холодильнике с момента взятия до 12
часов), или нативный в стерильной посуде. Доставлять в течение 2 часов.

2. На холеру - 0.5-1.5 г нативный или холерный консервант.

3. На дисбактериоз, грибы, патогенный стафилококк. УПМ (условно-патогенную
микрофлору) 1-2 г нативного кала в стерильные флаконы с соблюдением
правил асептики. Доставлять в течение 2 часов без переохлаждения.

Последнее изменение этой страницы: 2016-09-05; Нарушение авторского права страницы

[youtube.player]