Профилактика воздушной капельной контактной имплантационной инфекции

Асептика – это комплекс мероприятий для предупреждения попадания микробов в рану.

Основные принципы асептики:

• Все, что соприкасается с раной, должно быть стерильно.
• Все хирургические больные должны быть разделены на 2 потока – “чистые” и “гнойные”.

Основными путями распространения экзогенной инфекции являются: воздушно-капельный, контактный и имплантационный. В соответствии с этим все методы асептики делятся на 3 группы: профилактика воздушно-капельной, контактной и имплантационной инфекции.

Асептика - Профилактика воздушно-капельной инфекции

заключается в особенностях устройства приемного отделения, хирургического отделения, операционной и в обязательном разделении чистых больных и больных с гнойными заболеваниями.

Все поступающие больные должны пройти через приемное отделение, состоящее из вестибюля, регистратуры, смотровых кабинетов, изолятора, санпропускника. В крупных больницах в приемном отделении имеются также перевязочная, реанимационный зал и даже операционная. В приемном покое оформляют историю болезни, измеряют температуру, проверяет больных на педикулез, при необходимости проводят санитарную обработку и переодевают больного.

Необходимо иметь минимум 2 перевязочные (“чистую” и “гнойную”) и 2 операционные.

В палатах должно быть не более 4-6 коек, а лучше 1-2.

На каждого больного должно приходиться не менее 7,5 м 3 .

Постель должна меняться минимум 1 раз в неделю.

Температура в палатах должна быть 18-20 о С, влажность – 50%.

Мебель и стены должны быть гладкими и приспособленными для частого мытья дезинфицирующими растворами.

Посетители должны приходить только в халатах и сменной обуви.

Регулярное проветривание (по графику) снижает обсемененность воздуха микробами на 30%.

Весь медперсонал обязан носить сменную одежду – костюмы или халаты, а в перевязочной, операционной, процедурной, реанимации и послеоперационных палатах – также шапочки и маски.

Оперблок должен быть максимально изолирован от отделения. При планировке выделяют 4 зоны:

Iзона (стерильная) – операционная и стерилизационная комнаты.

IIзона (строгого режима) – моечная комната и предоперационная, где хирурги подготавливают руки к операции.

III зона (ограниченного режима) – помещения для хранения крови и аппаратуры, комнаты хирурга и медсестер, лаборатория срочных анализом, санпропускник.

IV зона (общебольничного режима) – кабинеты заведующего оперблоком и старшей медсестры, помещения для грязного белья.

Стены операционной должны быть светлыми, гладкими и легко доступными для частой обработки дезрастворами.

В операционной следует поддерживать температуру 22-25 0 С при 50%-ной влажности и регулярно проветривать.

Порядок операций следует планировать так, чтобы наиболее “чистые” операции выполнялись в первую очередь, а “гнойные” – в последнюю.

Для дезинфекции, кроме дезрастворов, применяют ультрафиолетовые бактерицидные лампы: 1 лампа за 2 часа стерилирует 30 м 3 воздуха. В операционной находятся следующие аппараты и мебель (самый минимум): операционный стол, большой стол с инструментами (резервный), малый передвижной стол для операционной медсестры (с набором инструментов для конкретной операции), наркозный аппарат, тазик для отходов, иногда – электрокоагуляторы, электроотсосы. Лишних предметов в операционной не должно быть.

Виды уборки операционной:

1). Предварительная уборка (по утрам).

2). Текущая уборка (во время операции) – санитарка подбирает упавшие на пол отходы.

3). Заключительная (после каждой операции).

4). Ежедневная (в конце рабочего дня).

5). Генеральная (1 раз в неделю, в неоперационный день).

Разделение потоков больных

Необходимо выделить отдельные палаты для “чистых” больных, а отдельные – для “гнойных”. В больших больницах такие больные лежат в разных отделениях. Желательно выделить палату для послеоперационных больных.

[youtube.player]

АСЕПТИКА (греческий а- отрицательный +septikos гнойный, вызывающий нагноение) — система профилактических мероприятий, направленных против возможности попадания микроорганизмов в рану, ткани, органы, полости тела больного (раненого) при хирургических операциях, перевязках, эндоскопии и других лечебных и диагностических манипуляциях. Асептика включает:

а) стерилизацию инструментов, материалов, приборов и пр.,

б) специальную обработку рук хирурга,

в) соблюдение особых правил и приемов работы при производстве операций, исследований и т. п., г) осуществление специальных санитарно-гигиенических и организационных мероприятий в лечебном учреждении.

Метод асептики является дальнейшим развитием метода антисептики и тесно связан с ним (см. Антисептика).

Основоположники асептики — немецкие хирурги Бергманн (E. Bergmann) и Шиммельбуш (C. Schimmelbusch), а в России — М. С. Субботин, П. И. Дьяконов.

В 1890 году на X Международном конгрессе врачей в Берлине Бергманном был впервые провозглашен основной закон асептики: все, что приходит в соприкосновение с раной, должно быть свободно от бактерий.

Вначале метод асептики был направлен на предохранение больного и персонала от вредного действия антисептических препаратов (карболовая кислота, сулема и др.). Физические факторы, уничтожая микробов на всем, что соприкасается с раной, позволяли избежать непосредственного воздействия на рану токсичных антисептиков.

В дальнейшем выяснилось, что одна асептика не в состоянии обеспечить профилактику нагноений и что необходимо комплексное применение асептики и антисептики. Создано множество новых высокоактивных антисептических веществ и препаратов (антибиотики, сульфаниламиды, нитрофурановые соединения и др.), оказывающих менее вредное влияние на организм.

В целях обеспечения асептики в последние годы стал использоваться ряд физических факторов (радиоактивные излучения, ультрафиолетовые лучи, ультразвук и др.).

Выделяют два источника хирургической инфекции: экзогенный и эндогенный. Эндогенный источник находится в организме больного, экзогенный — в окружающей среде.

В предупреждении эндогенного инфицирования основная роль принадлежит антисептике, экзогенного инфицирования — асептике.

Экзогенная инфекция подразделяется на воздушную, капельную, контактную, имплантационную.

Источником воздушной инфекции являются микробные клетки, находящиеся в воздухе во взвешенном состоянии. Особенно насыщен микробами воздух городов, закрытых помещений, больниц.

Борьба с воздушной инфекцией — это прежде всего борьба с пылью. Основные мероприятия, направленные на уменьшение воздушной инфекции, сводятся к следующему:

1) устройство правильной вентиляции операционных и перевязочных (кондиционирование воздуха);

2) ограничение посещения операционных и сокращение передвижения по ним персонала и посетителей;

3) защита от статического электричества, способствующего рассеиванию пыли;

4) влажная уборка помещений;

5) регулярное проветривание и облучение помещения операционной ультрафиолетовыми лучами;

6) сокращение времени контакта с воздухом открытой раны.

Капельная инфекция — разновидность воздушной инфекции, когда источником инфицирования является воздух, загрязненный капельками слюны изо рта и дыхательных путей больного, персонала или мелкими каплями других инфицированных жидкостей. Капельная инфекция, как правило, наиболее опасна для больного.

Основные мероприятия, направленные на борьбу с капельной инфекцией,— запрещение разговоров в операционной, обязательное ношение марлевых масок, прикрывающих рот и нос персонала, а также своевременная текущая уборка операционных.

Контактная инфекция — инфицирование раны при соприкосновении с ней нестерильных инструментов, инфицированных рук, материалов и др.

Профилактика контактной инфекции заключается в стерилизации всех приборов, инструментов и материалов, соприкасающихся с раной (см. Стерилизация, в хирургии), и строгом соблюдении правил обработки рук хирурга (см. Обработка рук). Важное значение придается также оперированию в перчатках и выполнению большинства манипуляций с тканями при помощи инструментов, а не рук.

Имплантационная инфекция — инфекция, вносимая в рану шовным материалом, тампонами, дренажами, протезами и т. п.

Профилактика этой инфекции заключается в тщательной стерилизации шовного материала, дренажей, эндопротезов и т. д. и по возможности более редком использовании оставляемых в ране инородных тел (применение бестампонного метода лечения ран, рассасывающихся шовных материалов и т. п.).

Имплантационная инфекция часто может быть дремлющей (латентной) и проявить себя только через длительный период времени при ослаблении защитных сил организма.

Особое значение профилактика имплантационной инфекции приобретает при пересадке органов и тканей, так как при применении различных иммунодепрессорных веществ подавляются защитные силы организма, в результате чего обычно невирулентная сапрофитная микрофлора становится весьма опасной.

Метод асептики для уничтожения микроорганизмов и их спор требует применения физических факторов и химических веществ.

Из физических факторов наиболее часто используется действие высокой температуры, вызывающей денатурацию белков микробной клетки. Споры большинства микробов более устойчивы к действию высокой температуры.

Чувствительность микробов к температуре зависит от их вида, штамма и состояния микробной клетки (делящиеся и молодые бактерии более чувствительны). Важное значение имеет и среда, в которой находятся бактерии (белки, сахар уменьшают чувствительность, а щелочи и кислоты увеличивают ее). Холод задерживает размножение микробных клеток, не оказывая выраженного бактерицидного действия.

Выраженным бактерицидным действием обладают ультрафиолетовые лучи. От их действия погибают микробы в воздухе, на поверхности тканей, на коже живых объектов, на стенах и полу помещений и т. п.

В последнее время арсенал асептики пополнился гамма - лучами, источником которых обычно являются радиоактивные изотопы 60 Со и 137 Cs. Стерилизацию этими лучами проводят в специальных камерах при дозе 1,5—2 млн. р. Этим методом можно стерилизовать белье, шовный материал, системы для переливания крови и др.

Ультразвуковая стерилизация требует мощных генераторов ультразвука и практического значения пока не имеет.

Жидкие среды можно освобождать от микробов и спор, подвергая их фильтрации через бактериальные фильтры, однако они не задерживают фильтрующихся вирусов.

Химические вещества, применяемые для стерилизации, должны быть бактерицидными и не портить инструменты и материалы, с которыми они соприкасаются.

Кроме традиционных веществ, заимствованных из арсенала антисептики (йод, спирт, хлорамин и др.), для обеззараживания приборов, инструментов, материалов применяются и другие вещества (например, диацид).

В последнее время вместо повязок иногда для закрытия раны применяют пленкообразующие вещества (типа пластубола), которые обычно упаковываются в аэрозольные баллоны.

Важным мероприятием по обеспечению асептики является санация обслуживающего персонала. Исследования последних лет показывают, что нередко источником хирургической инфекции является медперсонал, в зеве и носоглотке которого часто находится антибиотикоустойчивая патогенная флора. В случаях, когда санация не дает результатов, приходится прибегать к трудоустройству стойких бациллоносителей вне хирургических отделений.

Знание и строгое соблюдение правил асептики всеми сотрудниками должно быть законом работы хирургических отделений. См. также Хирургическая операция.

[youtube.player]

ПРОФИЛАКТИКА КОНТАКТНОЙ ИНФЕКЦИИ

Предупреждения контактного инфицирования достигается соблюдением одного из основных принципов асептики: “Все, что приходит в соприкосновение с раной, должно быть стерильно”. Во время операции с раной соприкасаются:

• руки хирурга;
• операционное поле (кожа самого больного);
• хирургические инструменты;
• перевязочный материал и хирургическое белье.

Для того чтобы было стерильным все вышеперечисленное, производится обработка рук хирурга и операционного поля, стерилизация инструментов, перчаток, операционного белья, перевязочного и шовного материала.

ПРИНЦИПЫ И МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ

СТЕРИЛИЗАЦИЯ – слово латинского происхождения ^епНБ – бесплодный), означает полное освобождение предметов от микроорганизмов путем воздействия на него физическими или химическими факторами.

Стерилизация является одним из основных элементов асептики. Благодаря ней достигается стерилизация всех предметов соприкасающихся с раной. Все методы стерилизации основаны на применении физических или химических факторов. В зависимости, какие предметы подвергаются обработке, избирается тот или иной метод воздействия. Существует множество методов стерилизации, но все они должны соответствовать определенным требованиям. Применяемые методы и средства стерилизации должны обладать следующим качествами:

• обладать эффективным бактерицидным действием.
• не вызывать повреждение тканей, быть безопасными для больных и медперсонала.
• не разрушать инструменты и оборудование.

Любой применяемый метод стерилизации должен в первую очередь обеспечить гибель всех, как патогенных, так и не патогенных микроорганизмов, при этом он должен быть безвреден для больных и медработников, не оказывать разрушительного действия на инструменты и приборы.

Существующие методы стерилизации делятся на физические и химические.

Физические методы: термическая обработка – обжигание и кипячение, стерилизация сухим жаром, стерилизация паром под давлением (автоклавирование); лучевая стерилизация.

Химические методы: стерилизация растворами химических веществ, стерилизация газообразными веществами.

Выбор метода стерилизации зависит в первую очередь от вида и свойств стерилизуемого предмета.

ФИЗИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ

Обжигание. В настоящее время не применяется, но его можно использовать при необходимости стерилизации металлических инструментов в полевых условиях. Обжигают инструменты открытым пламенем. В металлическую емкость укладывают инструменты, наливают небольшое количество этилового спирта и поджигают его.

Кипячение. Стерилизация кипячением в последнее время применяется редко. Это обусловлено тем, что при этом методе невозможно добиться уничтожения спороносных микроорганизмов, из-за невозможности достичь температуры выше 100 градусов. Стерилизация производится в электрических стерилизаторах. На специальную сетку помещают инструменты в раскрытом виде (шприцы в разобранном состоянии) и погружают в стерилизатор заполненный дистиллированной водой с добавлением гидрокарбоната натрия (20 г натрия гидрокарбоната на 1 л воды – 2 % раствор). Время стерилизации – 30 минут с момента закипания.

В настоящее время термическая стерилизация производится либо водяным паром в автоклаве при температуре 120-132°С, либо сухим жаром в сухожаровых стерилизаторах (шкаф) при температуре 170-200°С. При термической стерилизации необходимо выделять следующие рабочие фазы:

• Фаза нагревания – от начала подогрева до достижения предписанной температуры по термометру в рабочей камере;
• Время уравновешивания – от момента достижения температуры стерилизации в рабочей камере до момента выравнивания ее в стерилизуемом материале;
• Время уничтожения микробов, продолжительность которого предписана инструкцией;
• Время охлаждения – от момента прекращения нагревания до снижения температуры до 80°С при стерилизации сухим жаром и до 60°С при стерилизации в автоклаве.

Истинное время стерилизации в полезном пространстве состоит из времени уравновешивания, времени уничтожения и времени дополнительной безопасности, обеспечивающего надежность стерилизации (50 % времени).

Стерилизация сухим жаром. Стерилизацию осуществляют в сухожаровых шкафах-стерилизаторах, действующим фактором является воздух, нагретый до 170-200°С. При сухожаровой стерилизации происходит разогревание стерилизуемых объектов. Так как горячий воздух в отличие от водяного пара служит только переносчиком тепла, температура стерилизуемых предметов должна достигнуть 170-200°С. Нагревание обеспечивается за счет посту пления горячего воздуха через специальный клапан в нижней части воздушного стерилизатора, а его выход – через верхний клапан.

Путем сухожаровой стерилизации можно обрабатывать все термостабильные, негорючие материалы из стекла, металла или фарфора. Сухожаровая стерилизация непригодна для перевязочного материала, резины, катетеров, изделий из бумаги и пластиков.

Стерилизация осуществляется следующим образом:

• укладывают инструменты на полки шкафа-стерилизатора при открытой дверце при температуре 80°С высушивают инструменты в течение 30 минут.
• закрыв дверцу шкафа, стерилизуют в течение 1 часа при температуре 180°С.
• после остывания стерилизатора до 50-70°С дверцу приоткрывают, а при окончательном остывании инструментарий забирают.

Добавление новых материалов и предметов для стерилизации недопустимо.

Стерилизация паром. Действующим фактором при этом методе является горячий пар. Существует два метода стерилизации: стерилизация текучим паром и стерилизация под давлением. От первого метода в настоящее время отказались, так достигается температура 100°С, а этого недостаточно для уничтожения некоторых видов микроорганизмов. При стерилизации под давлением вода нагревается при повышенном давлении, поэтому повышается точка кипе- имя воды н соответственно температура пара (при давлении 2 атмосферы до 132,9°С).

Горячий водяной пар служит переносчиком тепла. Он действует интенсивнее, чем горячий воздух, т. к. высокая теплоемкость пара при конденсации переносится на стерилизуемый объект. Одновременно пар действует как непосредственный стерилизатор – стерилизующий агент действует путем гидратирования. коагуляции и гидролиза белков.

Стерилизация паром осуществляется в автоклавах. Аппарат для стерилизации под давлением (автоклав) состоит из двух металлических цилиндров разного диаметра, вставленных один в другой так, что между ними остается пространство, которое наполняется водой. Во внутреннюю камеру автоклава кладут стерилизационные коробки с фильтром, биксы с перевязочным материалом или пакеты с инструментами в двухслойной упаковке из бязи или в пергаментной бумаге. Плотно завинчивают боковую дверь парового стерилизатора и начитают стерилизацию в заданном режиме. Паровой стерилизатор оборудован термометром, манометром (указывает давление пара внутри аппарата) и предохранительным клапаном, который срабатывает при нарастании избыточного давления.

Все предметы, которые не выдерживают высокой температуры жаровой стерилизации и для которых температура пара не является повреждающей, должны стерилизоваться автоклавированием (перевязочный материал, резиновые и синтетические предметы, бумажные фильтры, закрытые ампулы и банки с водосодержащими препаратами и др.).

Перевязочный материал, белье, инструменты укладываются в металлические коробки (бикс Шиммельбуша), закрывают крышку и, оставив открытыми боковые отверстия, биксы загружают в автоклав. Проводить стерилизацию можно в 3 режимах – при давлении 1,1 атмосферы – 1 час, 1,5 атмосферы – 45 минут, 2 атмосферы – 30 минут. Перчатки стерилизуются при 1,1 атм. в течение 45 минут или при 1,5 атм. -15-20 минут. Хирургические инструменты и шприцы при 2 атм’ 20 мин

По истечении времени стерилизации биксы оставляют для просушки в автоклаве при приоткрытой крышке последнего. Боковые отверстия закрываются сразу после извлечения бикса из автоклава. На стерильный бикс прикрепляют бирку с указанием даты стерилизации. Закрытый бикс остается стерильным 72 часа. В случае открытия – 24 часа.

Основными методами стерилизации в настоящее время являются

- стерилизация сухим жаром и стерилизация паром под давлением. В лечебных учреждениях для проведения стерилизации создаются центральные стерилизационные отделения (ЦСО), где и осуществляется стерилизация инструментов (шприцы, иглы, простые хирургические наборы, зонды, катетеры и пр.) для всех отделений больницы. Хирургический инструментарий, стерилизуется в операционных блоках.

Для стерилизации может применяться ионизирующее излучение (У-лучи), ультрафиолетовые лучи и ультразвук. Наиболее часто применяется первый вид.

Стерилизацию ионизирующим излучением применяют для стерилизации шприцов, шовного материала, катетеров, зондов систем для переливания и. т. д. Инструменты и материалы стерилизуют в герметичных упаковках в заводских условиях в специальных помещениях. Срок хранения при гаком методе стерилизации 5 лет. Преимуществом этого вида стерилизации заключается в том, что при его применении не теряются свойства стерилизуемых объектов.

ХИМИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ СТЕРИЛИЗАЦИИ Газовая стерилизация

При газовой стерилизации действующим агентом являются газообразные антисептики (пары формалина, окись этилена). Проводится она в специальных герметичных камерах, на дно которых кладут таблетки формальдегида. Инструменты помещают на сетку, над химическим препаратом. Сроки стерилизации 6-8 часов. Преимуществом метода является минимальное вредное влияние на стерилизуемые объекты. Поэтому газовая стерилизация применяется для стерилизации оптических, особо точных и дорогостоящих инструментов.

Стерилизация растворами антисептиков

В качестве антисептиков при стерилизации в растворах применяются тройной раствор, 96 % этиловый спирт, 6 % перекись водорода, спиртовой раствор хлоргексидина. Применяется этот метод для стерилизации режущих инструментов, так как не приводит к затуплению.

Стерилизацию осуществляют следующим образом, инструменты в раскрытом или разобранном виде погружают в раствор. Время стерилизации зависит от вида антисептика, при использования спирта или тройного раствора 2-3 часа, перекиси водорода – 6 часов.

Произвести стерилизацию – это не просто подвергнуть стерилизуемый объект воздействию физического или химического фактора. Современная стерилизация – это целый технологический процесс, включающий несколько этапов.

I этап— предстерилизационная подготовка

II этап — укладка и подготовка к стерилизации;

III этап — стерилизация;

IV этап — хранение стерильного материала.

Вне зависимости ог вида стерилизуемою объекта и метода стерилизации, этапность выполнения её сохраняется всегда.

СТЕРИЛИЗАЦИЯ ХИРУРГИЧЕСКИХ ИНСТРУМЕНТОВ

Этап 1 – предстерилизационная подготовка. Целью предстерн- лизационной подготовки является – механическая очистка инструментов, удаление пирогенных веществ, уничтожение вируса гепатита. До недавнего времени объем предстерилизационной подготовки определялся степенью инфицированности инструментов, обработка инструментов после чистых операций (перевязок), гнойных операций, операций у больных, перенесших гепатит, и в группе риска по СПИДу существенно отличались. Сейчас правила предстерилизационной подготовки ужесточены. Учитывая высокую опасность распространения СПИДа, обработка должна гарантировать уничтожение вируса иммунодефицита человека. Инструменты после гнойных операций, операций у больных, перенесших в течение 5 последних лет гепатит, а также при риске СПИДа обрабатываются отдельно от других.

Предстерилизационная подготовка состоит из следующих этапов:

Использованные инструменты погружаются в емкости с дезинфицирующими средствами. В качестве дезинфицирующих средств можно применять 3 % раствор хлорамина (экспозиция 40-60 минут), 6 % раствор перекиси водорода (экспозиция 90 минут), анолита (экспозиция 30 мин). Полидез – 1 % – 45’; 0,5 % – 60; комбинированный дезинфектант инструментария – 1 % – 15’; инкрасепт- 1 % – 30’, дезавит

- 1 % – 20’. После проведения дезинфекции инструменты промываются проточной водой.

Мытье инструментов осуществляют в специально приготовленном моющем растворе, в состав которого входит моющее средство (стиральный порошок), перекись водорода и вода. Инструменты погружаются в раствор, нагретый до 50-60°С. После 20 минутной экспозиции инструменты тщательно моют щетками в этом же растворе, а затем в проточной воде.

После мытья инструменты необходимо высушить. Сушить можно естественным путем, но наиболее часто сушку проводят в сухожаровом шкафу при 80′С в течение 30 минут.

После окончания предстерилизационной очистки подлежит проверить ее качество. Она считается эффективной, если на изделиях, подвергнутых обработке, не обнаружены остаточные количества крови или моюших средств, наличие которых определяют с помощью специальных проб. Эги пробы основаны на изменении цвета реактива в присутствии соответствующих веществ (кровь, щелочные моющие средства).

В настоящее время применяется азопирановая проба.

Азопирановая проба – раствор азопирана смешивают с 3 % перекиси водорода в равных частях, капают 2-3 капли и при присутствии следов крови немедленно или не позже, чем через Г появляется вначале фиолетовое, затем переходящее в розово-сиреневое окрашивание, при наличии ржавчины или хлорсодержащих окислителей – буроватое окрашивание.

Инструменты с наличием остатков крови подвергаются повторной предстерилизационной очистке.

Выбор метода стерилизации

Метод стерилизации избирается в зависимости от вида инструментов. Необходимо помнить, что любой метод должен, во-первых, обеспечивать полное уничтожение микроорганизмов, во-вторых, не приводить к быстрому разрушению стерилизуемых приборов и инструментов.

Хирургические инструменты делят на три группы:

• металлические (режущие и не режущие),
• резиновые и пластмассовые,
• оптические.

Для стерилизации металлических не режущих инструментов можно применяют стерилизацию горячим воздухом в сухожаровом шкафу или в автоклаве.

Для стерилизации режущих металлических инструментов применяют химическую стерилизацию в растворах антисептиков, но самым лучшим способом является газовая стерилизация. Применение термических способов приводит к быстрому их затуплению.

Стерилизация резиновых и пластмассовых инструментов осу- ществляется автоклавированием. Различные катетеры и зонды подвергаются лучевой стерилизации, чаще они используются однократно. Стерилизация перчаток также осуществляется автоклавированием.

Стерилизация оптических инструментов

Любые оптические инструменты, применяемые в хирургии, отличаются сложностью устройства и дороговизной. Поэтому стерилизация их осуществляется наиболее бережно. Оптимальным методом является газовая стерилизация. Стерилизации фиброгастроскопов, ко- лсноскопов, бронхоскопов может осуществляться методом холодной стерилизации с использованием химических антисептиков (этиловый спирт, хлоргексидин, сайдекс и. т. д., 40 % формалин с хлорамином в соотношении 1: 8-их парами 40’).

Этап 2 – укладка и подготовка к стерилизации.

В зависимости от избранного метода производится подготовка и укладка стерилизуемых предметов.

При подготовке к стерилизации в сухожаровых стерилизаторах, инструменты помещают в металлические коробки или укладывают их на металлические сетки в один слой. Шприцы разбирают и заворачивают в два слоя плотной бумаги.

При подготовке к стерилизации в автоклавах инструменты заворачивают в хлопчатобумажную ткань в виде пакета и укладывают в металлические коробки.

В случае стерилизации шприцев в автоклавах, их разбирают, отдельно в марлевые салфетки заворачивают цилиндр и поршень. Затем их заворачивают в хлопчатобумажную ткань и укладывают в бикс.

Резиновые перчатки пересыпают тальком, засыпая его внутрь, заворачивают попарно в марлевые салфетки и укладывают в отдельный бикс.

Этап 3 – стерилизация. Осуществляют стерилизацию избранным методом, соблюдая стандартные режимы.

Этап 4 – хранение стерильного материала. Стерильные биксы хранят в специальном помещении. Стерильность сохраняется в течение 48 ч, если биксы не вскрывались.

[youtube.player]

ЭКЗАМЕНАЦИОННАЯ ПРОГРАММА

(лечебный факультет)

АСЕПТИКА

Внутрибольничные инфекции: источники инфицирования больного, источники эндо- и экзогенной инфекции, пути передачи инфекции от больного медперсоналу.

По определению комитета экспертов ВОЗ: "К внутри-больничным инфекциям относятся любые клинически рас-позноваемые болезни микробной этиологии, которые пора-жают пациента в результате его пребывания в больнице или обращении в нее за лечебной помощью /вне зависи-мости от появления симптомов заболевания до или во время пребывания в больнице/, или сотрудника больницы вслед-ствие его работы в данном учреждении".

Внутрибольничные инфекции разделяют на :

- традиционные инфекции \ грипп, дизентерия \;

- госпитальные гнойно - септические инфекции.

Источниками инфицирования больного /носителями и переносчиками патогенной микрофлоры/ являются

- люди: медперсонал, больной, лица, имеющие контакт с раной, лица, контактирующие с больным, его родственниками;

- медицинский инструментарий, шовный материал, окружающие предметы /матрацы, одеяла и пр./;

- окружающий воздух, загрязненный пылью или капельками влаги.

Таким образом, источниками инфицирования больного является все, что его окружает и сам больной.

Источники инфекции могут располагаться внутри организма /эндогенная или внутренняя инфекция / и вне организма/ экзогенная или внешняя инфекция /.

ОСНОВНЫЕ ИСТОЧНИКИ ЭНДОГЕННОЙ ИНФЕКЦИИ

- хронические заболевания вне зоны операции /дрем-лющая инфекция/. Из первичного очага инфекция распространяется гемато- или лимфогенным путем;

- острые воспалительные заболевания в органах, на которых выполняется операция. Инфицирование происходит контактным способом;

- сапрофитная микрофлора кожи, полости рта, желудочно-кишечного тракта. Инфицирование преимущественно наступает контактным способом.

ОСНОВНЫЕ ИСТОЧНИКИ ЭКЗОГЕННОЙ ИНФЕКЦИИ

- бациллоносители /медперсонал и больные/. Распро-странение инфекции ими происходит воздушно-капельным путем;

- больные с гнойно-воспалительными заболеваниями. Инфекция распространяется воздушно-пылевым и контактным путем;

- госпитальные штаммы антибиотикоустойчивых микроорганизмов /госпитальная инфекция/. Инфицирование происходит воздушно-пылевым путем;

- ятрогенная инфекция /инфицирование медперсоналом/;

распространяется контактным, имплантационным и

Таким образом, пути передачи эндогенной инфекции - контактный, гематогенный, лимфогенный; экзогенной ин-фекции - воздушно-капельный, воздушно-пылевой, кон-тактный, имплантационный.

Пути передачи инфекции от больного медперсоналу

- контактный путь: руки медперсонала с повреждениями кожи или его слизистые оболочки контактируют с микро-бнообсемененными или инфицированными выделениями, или биологические жидкости больного, микробнообсемененным медоборудованием, предметами ухода за больными;

- через кровь: кровь пациента контактирует с кровью медперсонала при повреждениях им кожи рук острыми или колющими предметами;

- фекально-оральный: руки, вода, пища могут быть загрязнены фекальной микрофлорой пациентов, что может произойти при уходе за больными или обработки предметов ухода /судна, подкладные круги и пр./;

- ингаляционный: вдыхание болезнетворных микробов, попавших от больных в воздух и осевших на частицах пыли и капельках жидкости.

Предупреждение развития ВБИ достигается методами асептики, а лечение уже возникшей ВБИ и внебольничной инфекции - методами антисептики.

2. Методы профилактики воздушно – пылевой инфекции.

- специальная планировка операционного блока и перевязочных;

- ношение медперсоналом спецодежды и спецобуви;

- режим работы операционной и перевязочных;

- ограничение движения в операционной;

- УФО перевязочных и операционной;

- уборка операционной и перевязочных;

- ламинарный поток воздуха в операционных;

- сокращение пред- и послеоперационного периодов.

Методы профилактики воздушно-капельной инфекции.

- санация воспалительных заболеваний полости рта и носа у медперсонала;

- речевые ограничения в операционной.

Для предупреждения воздушно-капельной инфекции применяется комплекс мер, главными из которых являются организационные мероприятия, направленные на уменьшение загрязнения воздуха микробами, а также на уничтожение уже имеющихся.

Принцип соблюдения правил асептики и антисептики лежит основе организации хирургического стационара. Большинство больниц строится в зеленых, наиболее чистых районах. Хирургические отделения не должны располагаться на первом этаже стационара, по возможности палаты должны быть рассчитаны на 1-2 человек. Площадь палат общехирургического профиля определяется из расчета 6,5 - 7,5 м2 на одну койку при высоте помещения не менее 3 м и ширине не менее 2,2 м. Ориентация окон палат и лечебно-диагностических кабинетов хирургического отделения может быть любая, соотношение площади окон и пола составляет 1:6, 1:7. Температура воздуха в палатах должна составлять 18-20 0С, влажность воздуха - 50-60%.

В хирургическом отделении должны быть оборудованы палаты для больных, пост палатной медсестры, процедурный кабинет, чистая и гнойная перевязочные, санитарная комната, лечебные и диагностические кабинеты, кабинеты заведующего отделением и старшей медсестры, ординаторская, сестринская.

Хирургическое отделение должно быть приспособлено для тщательной многократной влажной уборки с применением антисептических средств. Для этого полы должны быть каменными или заливными, либо покрыты линолеумом. Стены выложены плиткой или окрашены краской. В операционной и перевязочной эти же требования предъявляются и к потолкам. Мебель должная быть легкой, без сложной конфигурации поверхностей, иметь колесики для передвижения. Количество мебели следует максимально ограничивать в соответствии с потребностями.

Влажная уборка помещений производится ежедневно утром и вечером. Стены моют и протирают влажной тряпкой один раз в 3 дня. Один раз в месяц очищают от пыли и протирают от пыли верхние части стен, потолки, плафоны, протирают оконные и дверные рамы.

В хирургическом отделении обязательно использование спецодежды. Все работники должны иметь сменную обувь, халаты или специальные костюмы из легкой ткани, регулярно проходящие стирку. Оптимальным является использование санпропускника: сотрудники, приходящие на работу, принимают душ, снимают с себя повседневную одежду и надевают костюмы (халаты). Выход в спецодежде за пределы отделения не разрешается.

В перевязочной, процедурном кабинете, в операционной, в послеоперационных отделениях и отделении реанимации необходимо ношение колпаков и масок. Ношение колпаков обязательно для постовых медсестер, выполняющих различные процедуры у постели больно (инъекции, забор крови на анализ и т.д.).

Для профилактики воздушно-капельной инфекции большое значение имеет контроль за соблюдением правил личной гигиены медперсоналом, отстранение от работы сотрудников с простудными и гнойничковыми заболеваниями.

Согласно приказу № 720 1 раз в 3 месяца проводится обследование медперсонала на носительство стафилококка в носоглотке. При положительном ответе сотрудник отстраняется от работы, в течение 3-4 дней закапывает в нос антисептик, регулярно проводит полоскания зева, после чего у него повторно берут мазок из носоглотки.

Операционный блок удаляют от хирургических отделений. Лучше размещать его в изолированном помещении, соединенном с отделением переходом и связанном с отделением реанимации и интенсивной терапии. Указанный блок размещают с ориентацией окон на север или северо-запад. Для предотвращения загрязненности воздуха в непосредственной близости от операционной раны при организации операционного блока соблюдают принцип зональности. Существуют четыре зоны стерильности в операционной:

1. стерильная зона (операционная, стерилизационная).

2. зона строгого режима (предоперационная, наркозная, аппаратная).

3. зона ограниченного режима (инструментально - материальная, лаборатория срочных анализов, комната медицинских сестер, хирургов, протокольная).

4. зона общебольничного режима.

Основным принципом в работе оперблока является строжайшее соблюдение правил асептики. В связи с этим выделяют различные виды операционных: гнойные и чистые, плановые и экстренные. При составлении расписания операций в каждой операционной их порядок определяют в соответствии со степенью инфицированности – от менее инфицированной к более инфицированной.

Лица, участвующие в операции должны проходить строго регламентированную санитарно-гигиеническую подготовку: переодевание в зоне санпропускника, по возможности принятие душа. Операционную бригаду желательно обеспечить специальной бактерицидной одеждой из хлопчатобумажного материала, непроницаемого для жидкостей и бактерий.

Переодевание персонала в специальную операционную одежду (брюки, рубашка, бахилы) для работы в операционной или ее помещениях также преследует цель уменьшения опасности воздушной инфекции. По этой же причине недопустимо посещение операционных в шерстяных вещах. Необходимость нахождения в операционной в маске диктуется опасностью капельной инфекции. По этой же причине не разрешается разговаривать без крайней необходимости. Ноги должны быть обуты в бахилы. Хирург и ассистенты надевают фартуки, которые защищают одежду от загрязнения кровью, а также стерильный халат от инфицирования потом хирургов.

Перед входом в операционный блок обязательным является соблюдение "Правила красной черты", т.е. все входящие за красную полосу должны надеть халат, шапочку, маску и бахилы.

Бактериологические исследования свидетельствуют о том, что в окружающую среду из дыхательных путей и кожных покровов в течение 1 минуты выделяется от 10 тыс. до 100 тыс. микробов, а при разговоре – до 1 млн. Поэтому, в операционной не должно быть лишних людей. После операции количество микробов в 1 м3 воздуха возрастает в 3-5 раз, а при присутствии группу студентов из 5-6 человек – в 20-30. В связи с этим в операционной запрещается ведение лишни разговоров, а для просмотра операций устраиваются специальные колпаки либо используется система видеотехники.

В операционной и перевязочной температура воздуха должна быть не более 24 гр. С, влажность 50%.

Виды уборки операционной:

1. Предварительная - проводится ежедневно утром перед началом операций. Протирают антисептиками пол, стены, подоконники и др., чтобы убрать пыль, которая осела за ночь.

2. Текущая - в процессе операции убирают упавшие на пол предметы, вытирают пол, загрязненный кровью и другими жидкостями. По окончании операции обрабатывают операционный стол, пол вокруг стола и испачканную мебель.

3. Заключительная - после окончания операционного дня. Это мытье пола, стен (на высоту человеческого роста), протирают мебель.

4. Генеральная - мытье операционной один раз в 7 - 10 дней горячей водой с мылом и антисептиками, включая потолок. Протирают мебель и аппаратуру.

Уборка операционных осуществляется влажным способом (1% хлорамин Б, 3% перекись водорода с 0,5% раствором моющих средств, 0,2% дезоксон - 1, 2% дихлор - 1 и др.).

Для профилактики воздушно-капельной инфекции в операционной и перевязочной применяются бактерицидные ультрафиолетовые лампы. После 2 - 3 часовой работы бактерицидных ламп отмечается снижение микробного обсеменения по сравнению с исходным на 50 - 80 %. Бактерицидная лампа создает вокруг себя стерильную дозу до 2 - 3 метров.

Вентиляция операционных осуществляется через установки кондиционирования воздуха, фильтры, которые улавливают микроорганизмы. Очищенный воздух подается под небольшим давлением. Обмен воздуха осуществляется 7 - 10 раз в час. Вентиляция должна быть приточной (объем притока воздуха должен превосходить объем оттока).

С целью уменьшения загрязнения воздуха в операционной при особо чистых операциях (трансплантация органов и тканей) оперирующие хирурги и операционные сестры надевают специальные костюмы и шлемы, под которые поступает свежий воздух, подводимый в области лба. Выдыхаемый воздух и испарения кожи удаляют с помощью вакуумных отсосов за пределы операционной. В шлеме вмонтированы устройства системы связи между членами бригады.

Данная экипировка является обязательной для сверхчистых операционных с ламинарным течением воздуха. Через потолок операционной постоянно нагнетается стерильный воздух, прошедший через бактериальный фильтр. В пол вмонтировано устройство, забирающее воздух. Благодаря этому создается постоянное ламинарное (прямолинейное) движение воздуха, препятствующее вихревым потокам, поднимающим пыль и микроорганизмы с нестерильных поверхностей. Смена стерильного воздуха осуществляется до 500 раз в течение 1 часа, что приводит к снижению бактериальной обсемененности в десятки раз по сравнению с обычными операционными.

К недостаткам сверхчистых операционных относятся значительные экономические затраты на их содержание, необходимость постоянной технической и гигиенической проверки. В ином случае они могут стать источником бактериального обсеменения воздуха операционной ("бактериальная катапульта").

4. Профилактика контактной инфекции.

- общая подготовка больного к операции;

- соответствующая обработка рук медперсонала;

- подготовка операционного поля;

- стерилизация инструментов, перевязочного материала и операционного белья;

- соблюдение правил асептики во время операции.

С операционной раной соприкасаются: хирургический инструментарий, перевязочный материал и хирургическое белье, руки хирурга.

Основой для профилактики контактной инфекции является стерилизация – полное освобождение какого-либо предмета от микроорганизмов путем воздействия на него с помощью физических или химических факторов.

Используемые в практике методы стерилизации должны:

· обладать бактерицидной и спороцидной активностью;

· быть безопасными для больных и медперсонала;

· не должны ухудшать рабочие свойства инструментов.

В современной асептике используют физические и химические методы стерилизации.

5. Профилактика имплантационной инфекции.

- стерилизация шовного материала, тампонов, дренажей, протезов.

Профилактика имплантационной инфекции – обеспечение строжайшей стерильности всех предметов, внедряемых в организм больного.

Источники имплантационной инфекции:

шовный материал – основной возможный источник имплантационной инфекции;

специальные приспособления (кавафильтры, спирали, стенты);

трансплантированные органы и ткани.

Способ стерилизации имплантантов определяется тем, из какого материала они выполнены.

Способы стерилизации шовного материала

В настоящее время основным способом стерилизации шовного материала является лучевая стерилизация в заводских условиях.

В условиях стационара сейчас стерилизуются только капрон, лавсан и металлические скрепки автоклавированием или кипячением. После стерилизации или вскрытия упаковок после лучевой стерилизации шовный материал хранят в 960 этиловом спирте.

Классические способы стерилизации шелка (метод Кохера) и кетгута (методы Ситковского, Губарева и Клаудиуса) применяются редко из-за их длительности, сложности и не всегда достаточной эффективности.

Стерилизация конструкций, протезов, трансплантатов

Металлические конструкции для остеосинтеза стерилизуются как металлические нережущие инструменты (в автоклаве, сухожаровом шкафу, кипячением). Сосудистые протезы стерилизуются кипячением. Сложные протезы, в состав которых входят пластмассовые детали (протезы клапанов сердца, суставов) лучше стерилизовать химическими способами. В последнее время ведущие фирмы – производители протезов выпускают их в герметичных упаковках, стерилизованных лучевым методом.

Стерилизация трансплантатов невозможна, поэтому при заборе органов необходимо соблюдать строжайшую стерильность.

Дата добавления: 2018-05-12 ; просмотров: 1708 ;

[youtube.player]