Чума плотоядных лабораторная диагностика

Различают кишечную, кожную, легочную и нервную формы. Тропность вируса к тем или иным тканям зависит от возраста и резистентности собаки. Поражаются животные всех возрастов, при этом для щенков характерна молниеносное и острое течение, кишечной и легочной формы чумы; для пожилых подострое, хроническое и атипичное течение с преобладанием кожной и нервной формы.

Лабораторные исследования.

Для лабораторной диагностики чумы плотоядных, в частности для обнаружения (индикации) возбудителя и его идентификации (определение видовой принадлежности) применяют следующие методы:

- метод флуоресцирующих антител прямой (МФА) – для установления раннего прижизненного диагноза, материалом служат мазки-отпечатки; в основе люминесцентная микроскопия соединений антигена, с меченным антителом. При исследовании недавно вакцинированных, возможны ложноположительные результаты.

- иммуноферментный анализ (ИФА) – для установления раннего прижизненного диагноза; разработаны промышленные диагностикумы на полистироловых пластинахд для выявления специфического антигена вируса; материал – пробы крови, смывы из глаз и глотки. При исследовании недавно вакцинированных, возможны ложноположительные результаты.

- реакция нейтрализации (РН) – для идентификации вируса в культуре клеток;

- реакция диффузной преципитации (РДП) – позволяет обнаруживать возбудитель на 3-4-й день болезни;

- реакция связывания комплемента (РСК) – для обнаружения антигена в органах и тканях больных животных и в культуре клеток;

- реакция непрямой гемагглютинации (РНГА) – для выявления специфических антител к возбудителю;

- реакция пассивной гемагглютинации (РПГА);

- биопроба на восприимчивость животных.

- ПЦР (полимеразно-цепная реакция) по выделению антигена. Высокая специфичность и чувствительность. При исследовании недавно вакцинированных, возможны ложноположительные результаты.

- цитологические исследования по обнаружению телец-включений в мазках со слизистых и аутопсийных тканях.

- экспресс-тесты на выявление антигена. При исследовании недавно вакцинированных, возможны ложноположительные результаты.

Для клинической практики наибольший интерес представляет выявление на ранней стадии патогномоничных для чумы плотоядных телец-включений. Внутриклеточные включения обнаруживаются в эпителиальных клетках, нейронах, лейкоцитах и эритроцитах, а также в эпителии мочевого пузыря.

Для обнаружения телец-включений предложен метод окраски мазков гематоксилином Делафильда с эозином. Более простым и быстрым является следующий метод окрашивания включений: 2 основных насыщенных р-ра красок на метаноле (метиловом спирте): а) 9 г метиленового синего растворяют в 90 мл метанола и б) 3 г основного фуксина – в 30 мл метанола, выдерживают 12сут для созревания. Затем для изготовления рабочей краски смешивают в следующих пропорциях: на 10мл. дистиллированной воды 3 капли раствора метиле­нового синего и 1 каплю р-ра основного фуксина. Готовая краска имеет сине-фиолетовый цвет.

На фиксированный препарат наносят 1-2 капли краски на 1 мин. Промытый водой и высушенный мазок просматривают под иммерсионной системой микроскопа. Выявляются единичные или множественные цитоплазматические (реже внеклеточные) включения овальной, округлой или полиморфной формы ярко-красного или малинового цвета.

В клинической практике ветеринарные клиники для прижизненного исследования берут отпечаток эпителия конъюнктивы, миндалин или мазки крови для обнаружения вирусных телец-включений в лейкоцитах. Цитологическое исследование, в отличие от других методов, связанных с выделением антигена или титра антител, возможно проводить, у недавно вакцинированных животных. Для постановки окончательного диагноза на чуму плотоядных обязательно необходимо обнаружение антигена возбудителя и определение его вирулентности.

При дифференциальной диагностике необходимо исключить следующие болезни: аденови русные инфекции, парво- и коронавирусный энтерит, лептоспироз, болезнь Ауески, сальмонеллез, пастереллез, отравление, энцефалиты, дерматиты и др.

1. Р.М. Гакселл М.Беннет Справочник по инфекционным болезням собак и кошек. М., “Аквариум” 1999г.
2. Х.Г. Ниманд П.Ф. Сутер Болезни собак. М., “Аквариум” 1998г.
3. В.Риган Т.Сандерс Д.Дениколс Атлас ветеринарной гематологии. М., “Аквариум” 2008г.
4. Сюрин В.М Самуйленко А.Я. и др. Вирусные болезни животных. М., ВНИТИБП 2004г.

ДИАГНОСТИКА ЧУМЫ ПЛОТОЯДНЫХ

Диагноз устанавливают на основании анализа эпизоотической ситуации, клинических признаков болезни, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований [2].

Чумой плотоядных болеют собаки, серебристо-черные и красные лисицы, песцы, норки, уссурийские еноты, белые африканские и бурые хорьки, куницы, медведи, ласки, горностаи, барсуки, выдры, шакалы, гиены, волки. Для различных видов животных патогенность вируса неодинакова - от скрытого бессимптомного течения болезни до острого, сопровождающегося 100%-ной смертностью. Наиболее чувствительны хорьки и тхорзофретки (помесь белого африканского хоря с черным лесным хорем). Вирус передается от больных и переболевших животных, также животных в инкубационном периоде болезни, выделяющих вирус во внешнюю среду с истечениями из носа, глаз, со слюной, мочой и калом. Инфицирование проходит через слизистые оболочки, может происходить при непосредственном контакте, респираторно и алиментарно. Переносить вирус могут человек, грызуны, а также птицы и насекомые. Возможны передача возбудителя чумы через различные предметы, контаминированные вирусом. Болезнь может возникнуть в любое время года и проявляться эпизоотией или спорадически.

Инкубационный период, при экспериментальном заражении составляет 2-7 дней, при естественном он более длительный - до 40 дней. Болезнь начинается, как правило, с повышения температуры тела на 1-3 ˚С. При этом наблюдается общее, всеохватывающее поражение наиболее важных систем организма: дыхательной, иммунной, кровеносной, лимфатической, нервной, пищеварительной, эндокринной и др. [2,7].

Нервная форма. Проявляется судорогами, спазмами, нервным тиком, животное может начать хромать, постепенно наступает паралич задних конечностей. Проявляется агрессия, повышается температура. Когда болезнь прогрессирует, начинаются эпилептические припадки, паралич мышц.

Легочная форма. Воспаляются миндалины, температура выше на 2-3 градуса, животное не ест и не пьет. Уже через несколько дней оно ослабевает, у него появляются гнойные выделения из носа, может открыться рвота, понос, начаться кашель.

Кишечная форма. Сопровождается поносом, сильной рвотой, отсутствием аппетита и сильной жаждой. Язык животного покрывается белым налетом, на эмали зубов заметны характерные темные пятна, от повышения температуры животное может терять сознание.

Кожная форма. Самая легкая форма болезни, характеризуется появлением нарывов и сыпи на лапах, ушах, носу животного. Язвы превращаются в сухую корку, которая трескается, в нее попадают микроорганизмы – начинается воспалительный процесс [9].

В лабораторном диагнозе на чуму плотоядных, в частности для индикации (обнаружения) возбудителя и его идентификации (определение видовой принадлежности) применяют метод флуоресцирующих антител прямой (МФА), ИФА, обнаружение телец-включений, реакции: РН, РДП, РСК, РНГА, РТГА и биопробу на восприимчивость животных. Реакции выполняются общепринятыми методами. Наличие АТ, выявляемых в любой из указанных реакций, в сыворотке крови животных свидетельствует о переболевании их чумой [4].

Для исследования в ветеринарную лабораторию доставляют: сыворотку крови больных животных, кровь берут в период лихорадочного состояния, как можно быстрее после проявления клинических признаков и повторно спустя 14-21 день. Также берут мазки из носа и конъюнктивы. От свежих трупов берут кусочки легких, трахеи, селезенки, почек, головного мозга и мочевой пузырь с диагностической целью для гистологического исследования.

Метод флуоресцирующих антител прямой (МФА), Иммуноферментный анализ (ИФА) – для установления раннего прижизненного диагноза. МФА - материалом служат мазки-отпечатки; в основе люминесцентная микроскопия соединений антигена, с меченным антителом; ИФА - разработаны промышленные диагностикумы на полистироловых пластинах для выявления специфического антигена вируса; материал – пробы крови, смывы из глаз и глотки. При исследовании недавно вакцинированных, возможны ложноположительные результаты.

Реакция нейтрализации (РН) – для идентификации вируса в культуре клеток.

Реакция диффузной преципитации (РДП) – позволяет обнаруживать возбудитель на 3-4-й день болезни.

Реакция связывания комплемента (РСК) – для обнаружения антигена в органах и тканях больных животных и в культуре клеток.

Реакция непрямой гемагглютинации (РНГА) – для выявления специфических антител к возбудителю. [6]

Микроскопия телец-включений. Цитоплазматические и реже внутирядерные тельца-включения являются патогномоническими для ЧС. Для обнаружения телец-включений предложен метод окраски мазков гамотоксилином Делафильда с эозином [8].

При вскрытии трупов собак, павших от чумы, вокруг глаз и носа находят корочки засохшего экссудата. Тело истощено, глаза впавшие, зрачок расширен, на роговице, губах и вокруг ноздрей возможны эрозии. Легкие переполнены кровью, с очагами красной и серой гепатизации, возможны отек легких и пневмония. Точечные и полосчатые кровоизлияния отмечают на плевре, в сердечной мышце, корковом слое почек, мочевом пузыре. В сердечной мышце видны сероватые и желтые очаги; печень рыхлая, полнокровная, с желтым оттенком; селезенка по краям имеет инфаркты; почки полнокровные; на слизистой оболочке желудка и двенадцатиперстной кишки эрозии, язвы, признаки катарального воспаления; в мочевом пузыре слизистая оболочка гиперемирована; брыжеечные и мезентериальные лимфатические узлы на разрезе сочные, с кровоизлияниями; сосуды головного мозга инъецированы.[2]

Биопробу ставят на животных того вида, от которых исследуют материал. Лучше ее проводить на щенках через 15 дней после отъема от самок. Животные заболевают на 10-14 день, а иногда и через 1-2 месяца с характерными признаками болезни [8].

При дифференциальной диагностике необходимо исключить болезни, имеющие подобные с чумой клинические признаки: инфекционный гепатит, бешенство, болезнь Ауески, парво - и коронавирусный энтерит, лептоспироз, пастереллез, сальмонеллез, авитаминоз В₁, отравление и др.

Лечение больных животных при чуме, как и при многих других инфекционных болезнях, наиболее эффективно на ранних стадиях заболевания. Учитывая, что чума плотоядных является полисистемной болезнью, поражающей многие важные физиологические системы организма, следует проводить научно обоснованное индивидуальное комплексное лечение больных животных [3].

Комплекс терапевтических воздействий включает:

- введения в организм животного иммунных сывороток, иммуноглобулинов, антибиотиков;

- применение общеукрепляющих медикаментов, средств дезинтоксикации для ослабления и прерывания патологических процессов;

- использование сердечных, болеутоляющих и других средств для воздействия на отдельные проявления заболевания;

- введение в организм водно-солевых растворов и витаминов для возмещения веществ, содержание которых понижено из-за болезни [5].

Важно учитывать, что все химиотерапевтические средства не обладают достоверным свойством, но помогают повысить общий тонус организма [3].

Единственный способ профилактики заболевания – вакцинация, первую прививку делают в 3-х месячном возрасте здоровым щенкам. Перед вакцинацией животным обязательно нужно дать препараты от глистов. Повторную ревакцинацию назначит ветеринар, переносятся прививки хорошо, зачастую это поливалентные вакцины, направленные на создание иммунитета к нескольким заболеваниям [9].

Библиографический список

Госманов Р.Г. Ветеринарная вирусология. [Текст] - Учебники и учеб. Пособия для студентов высш. учеб. Заведений / Р.Г. Госманов, Н .М. Колычев - М.: КолосС, 2006. – С. 157-159.

В. Лабораторная диагностика

2.6. Патологический материал

От больных животных берут кровь в период лихорадочного состояния, а также фракции лейкоцитов, мазки из носа и конъюнктивы. От свежих трупов (не менее чем 3-4) мазки-отпечатки со слизистых оболочек глаз, век, носовой полости и других отделов респираторного тракта, мочевого пузыря, миндалин, лимфатических узлов, кусочки лёгкого, трахеи, селезёнки, почек, головного мозга, мочевой пузырь.

Для серологических исследований берут кровь как можно быстрее после проявления клинических признаков и повторно спустя 14-21 день. Материал отправляют нарочным в термосе со льдом. Подготовку материала для выделения вируса проводят общепринятым методом.

2.10. Индикация вируса

С помощью ПЦР следует исследовать материал от невакцинированных собак с обязательным подтверждением диагноза другими методами.

Был предложен экспресс-метод индикации в РИГА антител к вирусу чумы плотоядных, позволяющий получить результат в течение 3 часов. Желательно исследовать парные пробы сывороток (с определенным интервалом), чтобы проследить рост или спад титров антител, однако и однократного взятия бывает достаточно для заключения о состоявшемся контакте непривитого животного с вирусом чумы. По чувствительности несколько превосходит РН.

Предлагалось много других методов — РДП, РСК и др., но широкое их применение не состоялось. Не оправдал себя и гистопатологический метод выявления цитоплазматических телец-включений в эпителии слизистых оболочек (мочевого пузыря и др.) из-за того, что после прививки живой вирус-вакциной образуются аналогичные включения (Уласов В.И., 2001) и др. Кроме того, ряд авторов признают, что на результат гистологических исследований влияют профессионализм исследователя, качество и давность приготовления красителей, наличие секундарной микрофлоры у павшего животного. И, наконец, обнаружение включений в клетках различных тканей должно быть интерпретировано только как предостережение, т.к. многие дегенеративные поражения клеток, фагоцитоз, другие вирусные инфекции (герпесвирусная, бешенство) могут приводить к образованию сходных структур. В то же время ультраструктурные и иммуногистохимические исследования предоставляют возможность отдифференцировать эти включения и избежать ошибок. Однако поствакцинальные включения надежнее всего можно исключить лишь с учетом времени прививок — вакцинный вирусный антиген сохраняется в лимфоидной системе норок 6-12 дней (Blixenkrone-Moller М., 1989), у собак — еще дольше. Геллер В.И. и др. (2003) указывают, что поствакцинальные включения у пушных зверей исчезают через 60 дней. Однако, как бы то ни было, диагностика по тельцам-включениям или вирусному антигену даже с учетом вышеизложенного не может быть точной, так как в зависимости от давности заражения они могут или не развиться, или уже исчезнуть. Официально этот метод не зарегистрирован в нашей стране, однако его используют как дополнительный тест при постановке диагноза.

Однако в нашей стране все еще производится индикация вируса с помощью таких методов, как РДП, РИФ, МФА.

Реакция диффузной преципитации (РДП). Преципитирующий АГ появляется в органах животных на 3-4-й день болезни и всегда обнаруживается в органах павших животных. В качестве антигенов используют 10%-ую суспензию органов больных животных (селезенка, лимфоузлы, костный мозг, тимус, голов­ной мозг, легкие, печень, почки, слюнные железы, поджелудочная железа, моча, перитоне-альная жидкость). Свиньи - хорошим источником антисывороток против ВЧП (2,4,5).

Реакция иммунофлуоресценции (РИФ). Позволяет поставить быстрый и ранний прижизненный диагноз. У хорьков самые надежные результаты при исследовании мазков крови. РИФ используют также для исследования кусочков органов от павших животных. Наиболее пригодны мозжечок, желудок, легкие, большой и продолговатый мозг. В РИФ антигены вируса чумы обнаруживали в мазках костного мозга, фиксированных ацетоном, в лейкоцитах крови и эпителиальных клетках конъюнктивы. В мононуклеарных клетках крови его обнаруживали на 2-3-й день после экспериментального заражения. Ряд авторов рекомендуют применять ИФ для обнаружения вирусного АГ в ЦНС, а также проводить гистологическое исследование препаратов мочевого пузыря, почечной лоханки и кожи.

Иммуноферментный анализ (ИФА) позволяет обнаружить вирус в секретах и экскретах животных одновременно с появлением клинических признаков болезни. Shestopalov A.M. et al. (1996), Сазонкин В.Н. (1998) успешно испытали твердофазный точечный ИФА на нитроцеллюлезе (dot-ИФА) для индикации вируса чумы собак в окулоназальных выделениях. Однако при исследовании паренхиматозных органов павших пушных зверей в некоторых зверохозяйствах Приморья встречались случаи ложных положительных результатов. Изредка такие же результаты можно получить и после вакцинации, но в большинстве случаев вакцинный вирус не выявлялся.

Метод флуоресцирующих антител (МФА) при чуме собак применяют уже более 20 лет как рутинный при экспресс-диагностике. Широкое признание получил прямой метод, когда меченные ФИТЦ антитела наносят непосредственно на мазки-отпечатки. По чувствительности он незначительно уступает иммуноферментному анализу (ИФА). Однако в редких случаях у вакцинированных собак против чумы отмечена неспецифическая положительная реакция. Сущность метода заключается в соединении меченых антител со специфическим антигеном и в обнаружении светящихся комплексов антиген - антитело под люминесцентным микроскопом.

В связи с отсутствием стандартных по активности и специфичности коммерческих флуоресцирующих сывороток МФА как перспективный метод не нашел должного применения на практике.

Вирусоскопия, электронная и иммуноэлектронная микроскопия широко не используются.

2.11. Выделение вируса.

Выделение вируса осуществляется методом биопробы на чувствительных системах. В качестве материала берут кровь от больных собак в начальной стадии в период повышения температуры тела, а от павших - патматериал: селезенку, печень, почки, головной мозг. Готовят 10%-ю суспензию на физиологическом растворе или питательной среде, центрифугируют и внутримышечно вводят щенкам собак или тхорзофреткам. За подопытными животными ведут наблюдение в течение 1-1.5 месяцев. Наиболее чувствительными являются тхорзофретки, которые погибают через 7-10 суток с характерными клиническими признаками чумы. Щенки собак могут погибнуть значительно позже (1.5-2 месяца), иногда нельзя получить четких результатов, так как многие животные являются носителями антител к вирусу чумы плотоядных. Несмотря на то что этот метод дорогостоящий, он позволяет в короткий срок получить положительные результаты.

В первых пассажах вирс чумы плотоядных вызывает лишь слабое помутнение ХАО и гибель КЭ в 5-10% случаев. При дальнейшем пассировании поражение ХАО становится более выраженным. О наличии вируса судят по специфической гибели эмбрионов, поражению ХАО и РГА. При инокуляции в желточный мешок гибель эмбрионов наблюдается на 7-11-е сутки, титр вируса достигает 105-106 ЕЛД50/мл.

С помощью этого метода в культуре клеток можно выделить вирус. Его изолируют из смывов слизистых оболочек носовой полости, конъюнктивы, крови и патматериала. С диагностической целью этим пользуются довольно редко из-за сложности и длительности проведения, так как к изолятам вируса не все культуры клеток обладают чувствительностью и требуется его адаптация путем серийных пассажей, на что уходит много времени.

2.12. Идентификация выделенного вируса

Идентификация вируса проводится с помощью всех тех реакций, которые я рассматривала в главе 2.10, с добавлением реакции нейтрализации (РН), которая, к тому же, редко используется.

Её применяют для идентификации вируса в культуре клеток. Сущность реакции со­стоит в том, что к зараженной культуре добавляют питательную среду с 5%-ной специфической сыворотки сразу же после контакта вируса с культурой клеток. По подавлению ЦПД вируса судят о специфичности поражений клеточного монослоя.

2.13. Доказательство этиологической роли выделенного вируса

Доказательство этиологической роли выделенного вируса чумы собак ничем особо не отличается от остальных. Для этого используют парные сыворотки крови в серологических реакциях. В качестве АГ используют выделенный вирус, а в качестве АТ – парные сыворотки. Повышение титра антител во второй сыворотке в 4 и более раз свидетельствует о этиологической роли выделенного вируса.

2.14. Ретроспективная серодиагностика

Серологическая диагностика применяется лишь в экспериментальных целях. Серологические тесты, основанные на исследовании сывороток крови собак в РН и РНГА, показывают, что титры специфических антител к ВЧП широко варьируют у разных пород собак в зависимости от давности и тяжести течения инфекции.

Для ретроспективной диагностики ЧП используются РН, РСК, РДП. Объектом исследования в данном случае являются пробы сыворотки крови переболевших животных. Реакции выполняются общепринятыми метода­ми. Наличие AT, выявляемых в любой из указанных реакций, в сыворотке крови животных свидетельствует о переболевании их чумой. Для выявления AT к ВЧП предложены РНГА, которая не уступает ELISA (29).

А.В. Васильев в 1996 г. разработали набор на основе сенсибилизированных эритроцитов, содержащий все необходимые компоненты в готовом виде: специфический ВЧП, эритроцитарный диагностикум, специфическую и отрицательную к ВЧП сыворотки, разбавитель и микропанель для постановки реакции. Набор можно использовать в ветеринарных лабораториях и других специализированных учреждениях. РНГА по сравнению с РН более чувствительна, совпадаемость результатов превышает 90%. В РНГА улавливают AT не только к поверхностным АГ вируса, но и ко всем вирионным белкам, а также выявляют AT в более низких титрах, ещё не улавливаемых в РН. При исследовании сывороток крови, полученных в динамике развития болезни, устанавливается 4-кратное увеличение титра AT (диагностический прирост титра) уже на 5-7-е сут. после первого взятия крови. Таким образом, РНГА, осуществляемая с помощью набора эритроцитарных диагностикумов, - быстрый, чувствительный, специфический и воспроизводимый метод выявления антител к вирусу чумы плотоядных. С помощью набора можно быстро подтвердить или исключить клинический диагноз - чума, при этом в спорных случаях образцы сыворотки необходимо дополнительно обработать меркаптоэтанолом для тестирования специфических IgM. Показано, что латексный AT диагностикум эффективен на ранней стадии болезни. Обнаружение антигенов к вирусу чумы плотоядных также возможно с использованием радиоактивных ДНК-РНК-зондов.

И инфекционного гепатита плотоядных, парвовирусной инфекции собак

Цель занятия: изучить методы диагностики чумы, инфекционного гепатита плотоядных и парвовирусной инфекции собак, систему профилактических и оздоровительных мероприятий.

Материалы и оборудование: таблицы, инструменты для взятия крови и ее исследования, биопрепараты.

Место проведения занятия: городская ветеринарная станция или аудитория кафедры эпизоотологии.

Чума плотоядных — остропротекающая контагиозная болезнь собак и других плотоядных, вызываемая морбилливирусом семейства Paramyxoviridae.

Методы диагностики. Диагноз устанавливают на основании эпизоотологических данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований.

По эпизоотологическим данным, чумой болеют все плотоядные, особенно молодняк. Источником возбудителя служат больные и переболевшие животные, резервуаром — дикие животные (еноты, лисицы). Болезнь распространена повсеместно, возникает в любое время года в виде эпизоотии или спорадических случаев.

Клинические признаки проявляются после инкубационного периода, который в среднем составляет у собак 14…21 день, у пушных зверей 9..30дней (иногда до 90дней). Болезнь протекает в легочной, кишечной, нервной, кожной, смешанной и абортивной формах и в зависимости от формы характеризуется лихорадкой, острым катаром слизистых оболочек, пневмониями, кожной экзантемой и др. Поражение глаз наблюдают при всех формах болезни.

При патологоанатомических изменениях, если болезнь протекала остро, то, как правило, находят скопление большого количества серозной жидкости в перикарде, мелкие кровоизлияния в сердечной мышце и катаральное воспаление слизистых оболочек. В легких серовато-красные, красно-бурые уплотненные и ателектазные участки. Слизистые оболочки желудка и кишечника катарально воспалены, с кровоизлияниями, эрозиями и язвочками. Брыжеечные лимфатические узлы увеличены, на разрезе сочные.

Для лабораторных исследований от больных животных берут кровь в период острого лихорадочного состояния и повторно через 14…21 день, а также мазки из носа и с конъюнктивы, от свежих трупов (не менее чем 3…4) — кусочки легких, трахеи, селезенки, почек, головного мозга и мочевой пузырь. Материал отправляют в термосе со льдом обязательно с нарочным.

Вирус выделяют общепринятыми методами (в культуре клеток, на куриных эмбрионах и биопробой). Для идентификации вируса, серодиагностики и ретроспективной диагностики применяют РИФ, РН, РСК, РГА, РТГА, моноклональные антитела.

При гистологическом исследовании обнаруживают тельца-включения в эпителиальных клетках.

При дифференциальной диагностике исключают инфекционный гепатит, бешенство, болезнь Ауески, вирусный энтерит норок, сальмонеллез, пастереллез, алеутскую болезнь, авитаминоз В, отравления.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. В целях охраны хозяйств от заноса возбудителя инфекции необходимо приобретать собак, пушных зверей для комплектования племенного стада только в хозяйствах, благополучных по чуме плотоядных; всех вновь поступивших животных выдерживать в профилактическом карантине в течение 30 дней.

При установлении чумы плотоядных накладывают карантин на ферму. Больных и подозрительных по заболеванию немедленно изолируют, лечат поливалентной сывороткой против чумы, парвовирусной инфекции и вирусного гепатита. Одновременно назначают симптоматическое лечение (жаропонижающие, сердечные, слабительные, седативные), антибиотики, сульфаниламидные или нитрофурановые препараты. Кроме того, применяют стимулирующие препараты (риботан, кинорон, иммунофан), витамины группы В и т. д. Клинически здоровых взрослых животных вакцинируют (щенков по достижении соответствующего возраста).

Для дезинфекции используют раствор хлорной извести, содержащий 2 % активного хлора, 3%-й раствор креолина или лизола, 2…4%-й раствор каспоса, 1%-й раствор формальдегида. Навоз обеззараживают в течение 3 сут при 25…33 °С, затем выдерживают 10 сут при комнатной температуре. Тушки после снятия шкурок сжигают.

Карантин снимают через 30 дней со дня последнего случая выздоровления или смерти животного и заключительной дезинфекции. Вывозить собак разрешают через 1,5 мес, пушных зверей — через 6 мес после снятия карантина.

Инфекционный гепатит плотоядных — острое контагиозное заболевание, вызываемое вирусом семейства Adenoviridae.

Методы диагностики. Диагноз устанавливают на основании анализа эпизоотологических данных, клинических признаков, патологоанатомических изменений и результатов лабораторных исследований.

По эпизоотологическим данным, болеют собаки, песцы и лисицы всех пород и возрастов. Наиболее восприимчив молодняк (1,5… б мес). Животные старше 3 лет заболевают редко. Инкубационный период у собак 6…9 дней, у пушных зверей 10…20 дней и более.

Клинические признаки болезни зависят от ее течения (молниеносное, острое, подострое, хроническое и латентное). Для острого течения характерны лихорадка, рвота с примесью желчи, диарея, тонзиллит, ринит, гибель молодняка в первые дни жизни. Для хронического — исхудание животного, анемия, кератиты, аборты, пропустования самок.

Патологоанатомические изменения следующие: скелетные мышцы красновато-желтого цвета, подкожная клетчатка в области груди, паха и реже живота с выраженными студенистыми инфильтратами и кровоизлияниями. Печень резко увеличена, глинистой окраски; консистенция дряблая, на разрезе мажущаяся.

Желчный пузырь переполнен желчью светло-желтого цвета. Лимфатические узлы увеличены и отечны. При хроническом течении обнаруживают анемию, истощение, дистрофические изменения паренхиматозных органов.

При гистологическом исследовании в клетках печени и других органов находят овальные или округлые внутриядерные включения — тельца Рубарта.

При дифференциальной диагностике исключают чуму, лептоспироз, бешенство, сальмонеллез, токсоплазмоз, парвовирусный энтерит (на основании результатов лабораторных исследований).

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Основное направление профилактики — охрана хозяйств от заноса возбудителя. С этой целью приобретают животных для комплектования племенного стада только в хозяйствах, благополучных по вирусному гепатиту; всех вновь поступивших пушных зверей выдерживают в профилактическом карантине.

При установлении заболевания среди зверей в хозяйстве вводят ограничения.

Всех больных и подозрительных по заболеванию изолируют и лечат поливалентной сывороткой против чумы, парвовирусных инфекций и вирусного гепатита. Сыворотку применяют с профилактической и лечебной целью. Одновременно назначают симптоматическую терапию (витамины группы В — тиамин, рибофлавин, пиридоксин, цианкобаламин; поливитамины; сердечные средства; противорвотные и т. д.), а также стимулирующие препараты (риботан, кинорон и т. д.), антибиотики и сульфаниламидные препараты.

Проводят общие санитарные мероприятия по локализации и уничтожению возбудителя во внешней среде.

Ограничения снимают через 30 дней со дня последнего случая выздоровления или гибели больных животных.

Парвовирусная инфекция собак — контагиозная болезнь, вызываемая представителями семейства Parvoviridae.

Методы диагностики. Предварительный диагноз, основанный на эпизоотологических, клинических и патологоанатомических данных, подтверждают лабораторными исследованиями.

Согласно эпизоотологическим данным в естественных условиях болезнь регистрируют у собак всех возрастов, но чаще у щенков до 6-месячного возраста. Болеют также куницы и енотовидные собаки, особенно их молодняк. Норки, красные лисицы, еноты, скунсы не восприимчивы.

Для клинической картины характерны лихорадка, вялость, тошнота, рвота с примесью крови, жидкие кровянистые с гнилостным запахом испражнения, дегидратация, слабый пульс, тахикардия. Описанную форму наблюдают у собак в возрасте от 3 до 8 нед. При энтеритной форме первыми клиническими признаками служат легкое недомогание с последующим развитием в течение 24 ч тяжелой рвоты, диареи. Болезнь поражает собак всех возрастов, но чаще животных в возрасте от 8 нед до 9 мес. Смешанную форму отмечают у животных в возрасте от 6 до 16 нед (иногда до 7 мес).

Патологоанатомические изменения находят в основном в кишечнике: слизистая оболочка набухшая, катарально-геморрагически воспалена, с эрозиями. Содержимое кишечника жидкое, неприятного запаха, грязно-желтого или темно-красного цвета, в фекалиях много слизи и желчи. Мезентериальные лимфоузлы увеличены, сочные, геморрагически воспалены. Селезенка незначительно увеличена. Костный мозг, как правило, темно-красный, размягчен.

Для лабораторной диагностики направляют от больных животных пробы фекалий, взятые в первые дни болезни, и сыворотку крови (при возможности парные сыворотки). От погибших животных — сердце и тонкий отдел кишечника (в термосе со льдом).

Материал к исследованию готовят общепринятыми методами. Считают, что для биопробы хорошей моделью служат собаки породы бигль. При гистологическом исследовании в мышечных волокнах сердца обнаруживают внутриядерные включения, а при электронной микроскопии — в ядрах клеток большое количество парвовируса. Парвовирус идентифицируют с помощью РИФ, РТГА, РИГА, ИФА, РН.

Профилактические и оздоровительные мероприятия. Профилактика парвовирусной инфекции у собак в основном заключается в своевременной иммунизации. Используют вакцину против аденовирусных инфекций и парвовирусного энтерита собак; вакцину против чумы, инфекционного гепатита, аденовироза и парвовирусного энтерита плотоядных и др.

При установлении диагноза на парвовирусный энтерит больных и подозрительных по заболеванию собак изолируют и лечат поливалентной сывороткой против чумы, парвовирусной инфекции и вирусного гепатита плотоядных. Назначают симптоматическое лечение, антибактериальные препараты и иммуностимуляторы. Животных, подозреваемых в заражении парвовирусом, иммунизируют одной из перечисленных вакцин против парвовирусного энтерита. Одновременно организуют ветеринарно-санитарные мероприятия.

ЗАДАНИЕ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ

Разработать схему дифференциальной диагностики парвовирусного энтерита собак, чумы, лептоспироза, инфекционного гепатита, короновирусной инфекции.