Для подтверждения диагноза чумы используют следующие методы
Для лабораторной диагностики чумы используют бактериоскопический, бактериологический, биологический, серологические и молекулярно-генетические методы.
Диагноз чумы у человека ставится на основании выявления у него возбудителя – выделение и идентификация культуры, обнаружения специфического для чумного микроба антигена FI и специфических антител к антигену FI в сыворотках больных и переболевших.
В качестве экспресс-методов используют иммунофлюоресцентный анализ (обнаружение микроба с помощью флюоресцирующих иммуноглобулинов), ПЦР (обнаружение микроба по наличию искомого участка ДНК в результате его многократного копирования), иммуносуспензионные методы – система 2-3 компонентных реакций с эритроцитарными диагностикумами или иммуноферментный анализ для обнаружения специфических антигенов чумного микроба. С этой же целью применяют и другие варианты иммуносуспензионных методов: дот-иммуноферментный анализ, радиоиммунный анализ. Все экспресс-методы выполняют после обеззараживания материала.
Обязательному лабораторному исследованию подлежит материал:
- от больных людей с симптомами болезни, сходными с клиническими проявлениями всех форм чумы;
- лиц, контактировавших с больными легочной чумой;
- лиц, участвовавших (без защитной одежды) во вскрытии трупов людей и верблюдов, погибших от чумы;
- лиц, участвовавших в прирезке и разделке туши больного чумой верблюда и других животных, обработке мяса в процессе приготовления пищи, употреблявших в пищу мясо больных чумой животных;
- лиц, совершивших аварию с разбрызгиванием заразного материала при работе с возбудителем чумы.
Материал от больных, как правило, целесообразно брать сразу при поступлении в лечебное учреждение и спустя 3 дня после окончания специфического лечения антибиотиками с интервалами между очередными исследованиями 24 ч до получения трех отрицательных результатов. Материал от лиц, контактировавших с больными или контаминированными объектами – при поступлении в изолятор и по окончании профилактического лечения, перед выпиской.
Исследованию подлежит: при легочной форме чумы – мокрота, при её отсутствии – мазок из зева, кровь из вены, моча; при септической форме – кровь, моча; при бубонной форме – пунктат бубона, кровь, моча; при кожной форме – отделяемое язвы, кровь, моча; при кишечной форме – кал, кровь, моча; при менингиальных явлениях – спинномозговая жидкость.
У лиц, контактировавших с больным легочной формой чумы, а также в других случаях, если есть подозрение, что заражение произошло аэрогенным путем, исследуют мазок из зева. В остальных случаях у контактных исследования не проводят.
Забор материала на исследование у больных с подозрением на чуму следует, как правило, проводить в условиях стационара до начала специфического лечения обученным квалифицированным медицинским персоналом под наблюдением специалиста противочумного учреждения или специалиста по особо опасным инфекциям ЦГиЭ субъекта Российской Федерации. В случае невозможности забрать материал в первые 2 ч после возникновения подозрения, лечение начинают по клиническим показаниям до забора материала.
Забор материала у лиц, контактировавших с больными чумой и совершивших аварию, производят в изоляторе до начала профилактического лечения.
Исследование материала проводят специалисты территориальных противочумных учреждений на своей базе, а также на базе лабораторий отделов особо опасных инфекций ФГУЗ ЦГиЭ субъекта Российской Федерации, если они соответствуют требованиям действующих "Санитарных правил безопасности работы с микроорганизмами I-II групп патогенности". Специалисты отделов особо опасных инфекций проводят исследование обеззараженного материала экспресс-методами. Ведущим методом является люминесцентно-серологический. Определение антигена у больного возможно только при осложненной клинике в спинномозговой жидкости, в пунктате бубона – при тяжелом течении болезни, в моче – при всех формах болезни, начиная с 3-4 дня заболевания в низких титрах.
Методы забора материала – в приложении 8.
Запрещается давать окончательный (отрицательный или положительный) ответ на основании результатов экспресс-методов.
Исследование материала от больного чумой.
- приготовление мазков, окраска фиксированных мазков анилиновыми красителями, чумными флюоресцирующими иммуноглобулинами;
- полимеразная цепная реакция;
- посев на жидкие и плотные питательные среды со стимуляторами роста чумного микроба (кровь, моча, спинномозговая жидкость, пунктат бубона);
- посев на плотные питательные среды со стимулятором роста чумного микроба и ингибиторами посторонней флоры (мокрота, мазок из зева, субстрат из вскрывшегося бубона, отделяемое язвы, моча, испражнения);
- проба с диагностическими бактериофагами нативного материала на соответствующей плотной среде;
- проба на чувствительность к антибиотикам с нативным материалом на плотной среде методом дисков;
- поиск антигена FI иммуносуспензионными методами: реакция непрямой гемагглютинации, реакция нейтрализации антител, иммуноферментный анализ, дот-иммуноферментный анализ, радиоиммунный анализ (моча, спинномозговая жидкость, пунктат бубона); параллельно в качестве контроля ставят те же реакции с диагностикумами на другие инфекции (туляремия, бруцеллёз, холера и др.);
- заражение лабораторных животных (морские свинки, белые мыши) внутрибрюшинно и подкожно (кровь, пунктат бубона, спинномозговая жидкость), подкожно и накожно (мокрота, мазок из зева, вскрывшийся бубон, отделяемое язвы, моча, испражнения).
II этап (2-5 ч от начала исследования):
- выдача предварительного положительного ответа на основании наличия в мазках биополярно окрашенных грамотрицательных овоидных палочек, их специфического свечения при окраске мазка флюоресцирующими чумными иммуноглобулинами, положительной ПЦР, положительных иммуносуспензионных реакций при отрицательных контролях.
III этап (24-48 ч):
- выдача подтверждения предварительного положительного ответа на основании наличия характерного роста на жидких и плотных питательных средах, наличия в мазках из этих сред грамотрицательных овоидных палочек с биполярным окрашиванием, положительной пробой с бактериофагами (лизис культуры чумными бактериофагами Покровской и Л-413С).
Высев культуры для дальнейшей идентификации на питательный агар и агар с содержанием дефибринированной крови (5 %) для определения продукции FI после инкубации при 37° С. Одновременно выдача предварительного ответа о чувствительности выделенной культуры к антибиотикам. Посев культуры на среды Гисса с рамнозой, глицерином, сахарозой, арабинозой, ЦДС или среду Ленской для определения уреазной активности (после накопления чистой культуры).
IV этап (3-7-е сутки):
- выдача окончательного положительного ответа на основании выделения чистой культуры чумного микроба из посевов нативного материала, его идентификации по морфологическим, культуральным, биохимическим признакам, чувствительности к диагностическим бактериофагам, наличию специфических плазмид, а также на основании подтверждения диагноза выделением идентичных культур от павших или забитых лабораторных животных.
V этап (5-8-е сутки):
- выдача отрицательного ответа на основании отсутствия специфического роста на питательных средах при посеве нативного материала и органов забитых биопробных животных, отрицательной ПЦР, отрицательных иммуносуспензионных реакций с нативным материалом и органами забитых или павших биологических проб, отсутствия патологоанатомических изменений у последних, отсутствия в парных сыворотках больного специфических антител к чумному микробу.
Исследование материала от лиц, контактировавших с больными легочной формой чумы, а также лиц, присутствовавших при аварии с разбрызгиванием заразного материала.
Исследуемый материал – мазок из зева.
- приготовление мазков, окраска анилиновыми красителями, флюоресцирующими чумными иммуноглобулинами;
- полимеразная цепная реакция;
- посев на плотные селективные среды;
- заражение лабораторных животных подкожно и накожно.
- выдача предварительного положительного ответа на основании обнаружения специфически светящихся клеток в люминесцентном микроскопе, положительной ПЦР.
- выдача подтверждения предварительного положительного ответа на основании наличия характерных по морфологии колоний в посевах на плотной среде;
- пересев колоний на питательный слабощелочной агар, на селективный агар и на агар с кровью для дальнейшей идентификации (последний посев ставят в термостат с 37° С для последующего определения F1);
- при достаточном количестве колоний постановка пробы на чувствительность с диагностическими бактериофагами на плотной среде и пробы на чувствительность к антибиотикам методом дисков.
IV этап (3-4-е сутки):
- выдача положительного ответа на основании выделения типичной по морфологии культуры, лизирующейся диагностическими бактериофагами;
- положительных иммуносуспензионных реакций на наличие антигена F1;
- дальнейшая идентификация выделенной культуры.
V этап (5-8-е сутки):
- вскрытие забитых биопроб, их исследование бактериологически и серологически;
- выдача окончательного положительного ответа на основании выделения и идентификации культуры чумного микроба, типичной по морфологическим, культуральным, биохимическим свойствам, фаголизабельности, наличию специфических плазмид, подтверждения диагноза выделением идентичной культуры от павших или забитых биопробных животных (схема идентификации выделенных культур – в приложении 9;
- выдача отрицательного ответа на основании отсутствия специфически светящихся клеток в мазках, окрашенных люминесцирующими чумными иммуноглобулинами, отрицательной ПЦР, отсутствия роста характерных по морфологии колоний на плотной среде, отсутствия характерных для чумы изменений в органах у биопробных животных и отсутствия специфического роста на плотной среде из посевов отпечатков их органов.
Исследование материала от трупа человека, погибшего от чумы.
Исследованию подлежат: кусочки паренхиматозных органов, легких из мест, где есть характерные для чумы изменения, лимфатические узлы, как регионарные к первичному аффекту, так и другие, увеличенные и имеющие изменения, сгустки крови из сердца и крупных сосудов, сыворотка крови, полученная из сгустков при их сокращении, участки любой ткани, имеющие изменения септического характера, спинномозговая жидкость, моча, содержимое кишечника, в случае наличия признаков загнивания трупа исследуют спинной и головной мозг.
Исследования ведут по этапам, как исследование материала от больного чумой человека.
Положительный предварительный диагноз может быть поставлен на любом этапе, так как при гибели от чумы все органы и ткани содержат большое количество возбудителя и его антигенов, в том числе FI. Поэтому весьма вероятен первый положительный ответ уже через 2 ч после исследования на основании наличия грамотрицательных биполярно окрашенных палочек, специфически светящихся в люминесцентном микроскопе при обработке мазков-отпечатков флюоресцирующим чумным иммуноглобулином, положительной ПЦР, высокого титра антигена FI в тканях и органах, наличия противочумных антител в сыворотке.
Высокая вероятность подтверждения диагноза через 24-48 ч после начала исследования на основании обнаружения типичных по морфологии колоний чумного микроба, положительной пробы с бактериофагом, которую следует ставить на селективном агаре во избежании зарастания пятна лизиса культуры посторонней флорой и отрицательного ответа в 2-5 часов исследований
Окончательный положительный ответ может быть поставлен через 48 ч – 6 сут. по результатам идентификации культуры чумного микроба и подтверждения ее выделением идентичной культуры от биопробного животного.
Окончательный отрицательный диагноз дают на 5-8 сутки, как и при исследовании материала от больного.
Запрещается выдавать отрицательный ответ по результатам ускоренного исследования и на основании результатов экспресс-методов.
Дата добавления: 2015-09-15 ; просмотров: 3845 . Нарушение авторских прав
Задание <<568>> ТЗ 568 Тема 1-31-0
Задание <<569>> ТЗ 569 Тема 1-31-0
Возбудителем ВИЧ-инфекции является:
+ ретровирусы 1 и 2 типов
- ДНК содержащий вирус
Задание <<570>> ТЗ 570 Тема 1-31-0
В нуклеокапсиде вируса иммунодефицита человека находится фермент:
+ обратная транскриптаза (ревертаза)
Задание <<571>> ТЗ 571 Тема 1-31-0
Составляющими вибриона ВИЧ не являются:
- гликопротеины кд 41, кд 120, кд 160
Задание <<572>> ТЗ 572 Тема 1-31-0
ВИЧ-инфицированный человек является источником инфекции:
- только в периодах, выраженных клинических проявлений
- только в терминальной стадии
- только в стадии бессимптомной инфекции (II Б)
- только в стадии острой инфекции (II А)
- только в серопозитивные периоды
Задание <<573>> ТЗ 573 Тема 1-31-0
Источником ВИЧ не могут быть:
- ребенок для матери при грудном вскармливании
+ животное, инфицированное ретровирусами
- донор крови для реципиента
Задание <<574>> ТЗ 574 Тема 1-31-0
Эпидемиологически опасные концентрации ВИЧ не содержатся:
- в грудном молоке
- во влагалищном секрете
Задание <<575>> ТЗ 575 Тема 1-31-0
Наибольшая концентрация ВИЧ имеется в:
Задание <<576>> ТЗ 576 Тема 1-31-0
ВИЧ передается следующими путями:
+ при грудном вскармливании от ребенка - матери
- при длительном бытовом контакте
- от инфицированной матери ребенку при уходе за ним
Задание <<577>> ТЗ 577 Тема 1-31-0
ВИЧ не передается следующим путем:
Задание <<578>> ТЗ 578 Тема 1-31-0
Манипуляцией, при которой наиболее часто может наступить заражение медицинских работников ВИЧ-инфекцией, является:
+ забор крови из вены
Задание <<579>> ТЗ 579 Тема 1-31-0
Заражение ВИЧ-инфекцией не может произойти при:
- переливании инфицированной крови
+ пользовании общим туалетом
- родах ВИЧ-инфицированной женщины
Задание <<580>> ТЗ 580 Тема 1-31-0
Инфицированию ВИЧ не способствует:
- беспорядочные гомо- и гетеросексуальные связи
+ длительные половые контакты с одним партнером
- наличие венерических заболеваний у сексуальных партнеров
- сексуальный контакт во время менструации
- большое количество сексуальных партнеров
Задание <<581>> ТЗ 581 Тема 1-31-0
Последовательность развития клинических симптомов при ВИЧ
1: инкубационный период
2: период острых проявлений
3: персистирующая лимфаденопатия
4: инфекционные поражения кожи и слизистых
5: инфекционные поражения внутренних органов, онкологические поражения
6: генерализация инфекции
7: терминальный период
Задание <<582>> ТЗ 582 Тема 1-31-0
В основе патогенеза ВИЧ-инфекции лежит:
+ поражение иммунокомпетентных клеток
- тяжелые метаболические нарушения
- тяжелые циркуляторные нарушения
Задание <<583>> ТЗ 583 Тема 1-31-0
Вируснейтрализующие антитела, появляющихся у больных ВИЧ-инфекцией
+ блокируют ВИЧ, находящийся в крови в свободном состоянии
- блокирует ВИЧ, находящийся в цитоплазме пораженных клеток
- блокирует ВИЧ, находящийся в ядре пораженных клеток
- антитела не действуют на вирус
- блокируют ВИЧ, находящийся только в СД 4 лимфоцитах
Задание <<584>> ТЗ 584 Тема 1-31-0
Характерными первичными проявлениями ВИЧ-инфекции не являются:
Задание <<585>> ТЗ 585 Тема 1-31-0
Стадия ПА у больных ВИЧ-инфекцией не может проявиться следующим клиническим синдромом:
Задание <<586>> ТЗ 586 Тема 1-31-0
Мононуклеозоподобный синдром в стадии IIА ВИЧ-инфекцим отличается от инфекционного мононуклеоза:
- лимфоцитозом и наличием атипичных мононуклеаров в периферической крови
+ отрицательной реакцией Хоффа-Бауэра
Задание <<587>> ТЗ 587 Тема 1-31-0
Оппортунистические инфекции возникают в стадии ВИЧ-инфекции:
Задание <<588>> ТЗ 588 Тема 1-31-0
Лимфатические узлы у больных ВИЧ-инфекцией:
- болезненные, флюктуируют при пальпации
- с гиперемией кожных покровов над ними
- увеличены до 3 см и более
+ безболезненные, имеют туго-эластичную консистенцию
Задание <<589>> ТЗ 589 Тема 1-31-0
Клиническая стадия II Б у больных ВИЧ-инфекцией характеризуется:
- потерей массы тела более 10%
- признаками генерализованного кандидоза
+ отсутствием клинических проявлений
Задание <<590>> ТЗ 590 Тема 1-31-0
Для СПИДа не характерны следующие поражения кожи:
- рецидивирующий простой герпес
Задание <<591>> ТЗ 591 Тема 1-31-0
К оппортунистическим инфекциям не относят:
Задание <<592>> ТЗ 592 Тема 1-31-0
- хронический криптоспоридиоз кишечника (длительная диарея)
Задание <<593>> ТЗ 593 Тема 1-31-0
Клинические проявления стадии вторичных заболеваний ВИЧ-инфекции не являются:
- прогрессирующая потеря массы тела
- длительный диарейный синдром
- стойкие бактериальные, вирусные и протозойные, грибковые инфекции
Задание <<594>> ТЗ 594 Тема 1-31-0
Для СПИДа не характерны следующие формы поражения пищеварительного тракта:
- кандилоз слизистой рта и пищевода
+ неспецифический язвенный колит
Задание <<595>> ТЗ 595 Тема 1-31-0
Не характерными возбудителями оппортунистических инфекций при СПИДе являются:
- вирус простого герпеса
Задание <<596>> ТЗ 596 Тема 1-31-0
Для ВИЧ-инфекции не характерны следующие патологические процессы в ЦНС:
- острый серозный энцефалит
Задание <<597>> ТЗ 597 Тема 1-31-0
При исследовании сыворотки крови для диагностики ВИЧ-инфекции методом иммунного блоттинга результат считается положительным при:
+ выявлении антител к 2-3 гликопротеинам ВИЧ
- выявлении антител к каким-либо протеинам ВИЧ
- отсутствии антител к каким-либо протеинам ВИЧ
- выявление антител к 1 гликопротеину ВИЧ
- выявлении антител к 1 гликопротеину и какому-либо протеину ВИЧ
Задание <<598>> ТЗ 598 Тема 1-31-0
Для подтверждения диагноза ВИЧ-инфекции не используют следующие методы:
Задание <<599>> ТЗ 599 Тема 1-31-0
Для предварительной диагностики ВИЧ-инфекции в медицинской практике применяют:
+ обнаружение AT методом ИФА
Задание <<600>> ТЗ 600 Тема 1-31-0
Для окончательной диагностики ВИЧ-инфекции применяют:
- определение количества и соотношения Т- и В-лимфоцитов
- электронную микроскопию крови
+ обнаружение антител в иммунном блоте
- выделение гемокультуры вируса
Задание <<601>> ТЗ 601 Тема 1-31-0
Клинические признаки, при которых не показано обследование на ВИЧ:
- длительно текущие пневмонии
- необъяснимая потеря массы тела
Задание <<602>> ТЗ 602 Тема 1-31-0
Для лечения больных СПИДом не применяются:
Задание <<603>> ТЗ 603 Тема 1-31-0
Наиболее широко применяемым препаратом для лечения больных ВИЧ-инфекцией является:
Задание <<604>> ТЗ 604 Тема 1-31-0
При обнаружении ВИЧ-инфекции у беременной следует:
- рекомендовать грудное вскармливание новорожденного
- рекомендовать смешанное вскармливание
+ родоразрешить кесаревым сечением
Задание <<605>> ТЗ 605 Тема 1-31-0
Не подлежат обязательному обследованию на ВИЧ-инфекции методом ИФА следующие категории:
+ лица, направляемые на санаторно-курортное лечение
- постоянные реципиенты крови
- доноры органов и биологических субстратов
Задание <<606>> ТЗ 606 Тема 1-31-0
Для специфического лечения больных ВИЧ-инфекцией следует применять:
- ингибиторы обратной транскриптазы ВИЧ Б. ингибиторы протеазы ВИЧ
- сочетание ингибиторов обратной транскриптазы ВИЧ с цитостатиками
+ сочетание ингибиторов протеазы с ингибиторами обратной транскриптазы ВИЧ
- сочетание ингибиторов протеазы ВИЧ с иммуностимуляторами
Случаи, требующие обследования на COVID-19 при обращении в медицинские учреждения пациентов без признаков поражения дыхательной системы: наличие тесных контактов за последние 14 дней с лицами, у которых лабораторно подтверждён диагноз COVID-19, возвращение из зарубежной поездки за 14 дней до обращения, работа с больными с подтвержденными и подозрительными случаями COVID-19.
1. Реакция обратной транскрипции – это синтез
1) ДНК на матрице ДНК;
2) кДНК на матрице РНК;+
3) РНК на матрице РНК;
4) РНК на матрице ДНК.
2. Лабораторное обследование на COVID-19 в обязательном порядке проводится следующим категориям лиц
3. Стандартное определение подтвержденного случая заболевания COVID-19 обязательно включает наличие
1) РНК SAR-CoV-2 вне зависимости от клинических проявлений;+
2) РНК SAR-CoV-2 и клинических проявлений ОРИ;
3) РНК SAR-CoV-2 и повышения температуры выше 37°С;
4) РНК SAR-CoV-2 и сухого кашля, одышки.
4. Наибольшая стабильность SARS-CoV-2 во внешней среде на
1) нержавеющей стали;
2) картоне;
3) меди;
4) пластике.+
5. Возбудителем коронавирусной инфекции являются
1) Paramyxovirus;
2) Picornavirus;
3) Сoronavirus;+
4) Adenovirus.
6. Образцы должны быть транспортированы с соблюдением требований
7. При обследовании дифференциальная диагностика должна включать исследования на
1) аденовирусы;+
2) герпесвирус;
3) риновирусы;+
4) вирусы парагриппа.+
8. При подозрении на COVID-19 общее лабораторное обследование включает
1) клинический анализ крови;+
2) иммунограмма;
3) АЛТ, АСТ, ЛДГ, ГГТ;+
4) СРБ.+
9. К какой группе патогенности относится SARS-CoV-19?
10. Актуальный источник инфекции, вызванной SARS-CoV-2
1) больной человек;+
2) грызуны;
3) комары;
4) домашние животные.
11. Контаминация может привести к
1) ложноположительным результатам;+
2) ложноотрицательным результатам;
3) заражению вирусными возбудителями инфекций;
4) заражению бактериальными возбудителями инфекций.
12. Длительное хранение биообразцов осуществляется при температуре
13. К какой группе патогенности относится риновирус?
14. Пути передачи коронавируса
1) воздушно-капельный;+
2) трансмиссивный;
3) воздушно-пылевой;+
4) контактно-бытовой.+
15. Материалом для исследования является
1) ликвор;
2) мокрота;+
3) фекалии;+
4) мазок из носоглотки.+
16. Высокий риск тяжелого течения болезни и летального исхода наблюдается у больных COVID-19 старше
1) 65 лет с сопутствующими заболевания;+
2) 40 лет без сопутствующих заболеваний;
3) 65 лет без сопутствующих заболеваний;+
4) 50 лет без сопутствующих заболеваний.
17. Выписка пациента с подтвержденным диагнозом проводится при отсутствии клинических симптомов и получении двукратного отрицательного результата на выявление РНК SAR-CoV-2 c интервалом не менее
1) 3 дней;
2) 1 дня;+
3) 11 дней;
4) 14 дней.
18. Ближневосточный респираторный синдром был вызван
1) HcoV-HKU1;
2) SARS-CoV;
3) MERS-CoV;+
4) HcoV-229E.
19. Сотрудники, работающие с микроорганизмами II группы патогенности
1) не проходят обсервацию;
2) проходят обсервацию только при работе с возбудителем холеры;+
3) проходят обсервацию только при работе с возбудителем сибирской язвы;
4) проходят обсервацию.
20. Инкубационный период при коронавирусной инфекции составляет
1) 3-5 дней;
2) 10 дней;
3) 7 дней;
4) 14 дней.+
21. Случаи, требующие обследования на COVID-19 при обращении в медицинские учреждения пациентов без признаков поражения дыхательной системы
1) наличие тесных контактов за последние 14 дней с лицами, у которых лабораторно подтверждён диагноз COVID-19;+
2) возвращение из зарубежной поездки за 14 дней до обращения;+
3) работа с больными с подтвержденными и подозрительными случаями COVID-19;+
4) возвращение из зарубежной поездки за 21 дней до обращения.
22. К работе с тест-системами для диагностики COVID-2019 в лаборатории медицинской организации допускаются только специалисты _____________________ и прошедшие инструктаж, проведенный сотрудниками лабораторий Роспотребнадзора, имеющих санитарно-эпидемиологическое заключение на работу с возбудителями инфекционных заболеваний человека II группы патогенности
1) имеющие сертификат;
2) имеющие опыт работы;
3) добровольно согласившиеся работать;
4) давшие письменное согласие.+
23. Тяжелый острый респираторный синдром вызывает
1) SARS-CoV;+
2) HcoV-229E;
3) HcoV-NL63;
4) HcoV-HKU1.
24. Все образцы, полученные для лабораторного исследования, следует считать потенциально инфекционными и при работе с ними должны соблюдаться требования
25. Методом специфической лабораторной диагностики на COVID-19 является
1) реакция гемагглютинации;
2) проточная цитометрия;
3) полимеразная цепная реакция;+
4) иммунофлюоресцентная микроскопия.
26. Специфичность ПЦР обеспечивают
1) эффективное выделение нуклеиновых кислот;
2) полимераза;
3) обратная транскриптаза;
4) праймеры.+
27. Подсемейство Coronaviridae делится на
1) Omegacoronavirus;
2) Alphacoronavirus;+
3) Deltacoronavirus;+
4) Betacoronavirus.+
28. Официальное название нового коронавируса
1) MERS-CoV;
2) batSARSlike-CoV;
3) SARS-CoV-19;
4) SARS-CoV-2.+
29. Направление на лабораторное исследование должно содержать
1) фамилию, имя, отчество (при наличии) медицинского работника, осуществившего взятие биоматериала;+
2) этническую принадлежность пациента;
3) дату и время назначения лабораторного исследования; дату и время взятия материала;+
4) персональные данные пациента, обеспечивающие его однозначную идентификацию.+
30. Клетками-мишенями SARS-CoV-2 являются
1) альвеолярные макрофаги;
2) эпителиоциты;
3) клетки реснитчатого эпителия;+
4) клетки цилиндрического эпителия.
31. К какой группе патогенности относится вирус гриппа А?
1) 1;
2) 2;
3) 3;+
4) 4.
32. Возможные причины ложноотрицательных результатов на этапе выделения ДНК/РНК
1) разрушение нуклеиновых кислот в биообразце;+
2) контаминация в процессе выделения между образцами;
3) разрушение нуклеиновых кислот после выделения;+
4) потеря нуклеиновых кислот в процессе выделения.+
УТВЕРЖДАЮ
Министр здравоохранения Российской Федерации
УТВЕРЖДАЮ
Руководитель Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
М.А. Мурашко
А.Ю. Попова
Временные методические рекомендации
ПРОФИЛАКТИКА, ДИАГНОСТИКА И ЛЕЧЕНИЕ НОВОЙ КОРОНАВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ (2019-nCoV)
Версия 1 (29.01.2020)
Введение
1. Этиология и патогенез…. . 2
2. Эпидемиологическая характеристика…. 4
3. Диагностика коронавирусной инфекции . 6
3.1. Алгоритм обследования пациента с подозрением на новую
коронавирусную инфекцию, вызванную 2019-nCoV…. 6
3.2. Клинические особенности коронавирусной инфекции . 9
3.3. Лабораторная диагностика коронавирусной инфекции . 10
4. Лечение коронавирусной инфекции . 12
4.1. Этиотропная терапия…. 12
4.2. Патогенетическая терапия…. 14
4.3. Симптоматическая терапия . 17
4.4. Особенности клинических проявлений и лечения заболевания у
детей…. 17
4.4.1. Особенности клинических проявлений…. 17
4.4.2. Особенности лечения…. 20
4.5. Терапия неотложных состояний при коронавирусной инфекции…. 24
4.5.1. Интенсивная терапия острой дыхательной недостаточности….
4.5.1.1 Проведение неинвазивной и искусственной вентиляции легких….
4.5.1.2 Проведение экстракорпоральной мембранной оксигенации….
4.5.2. Лечение пациентов с септическим шоком…. 26
5. Профилактика коронавирусной инфекции…. 27
5.1. Специфическая профилактика коронавирусной инфекции…. 27
5.2. Неспецифическая профилактика коронавирусной инфекции…. 28
5.3. Медикаментозная профилактика коронавирусной инфекции…. 30
6. Маршрутизация пациентов и особенности эвакуационных мероприятий больных или лиц с подозрением на новую коронавирусную инфекцию, вызванную 2019-nCoV…. 30
6.1. Маршрутизация пациентов и лиц с подозрением на новую коронавирусную инфекцию, вызванную 2019-nCoV…. 30
6.2. Особенности эвакуационных мероприятий больных или лиц с подозрением на новой коронавирусную инфекцию, вызванную 2019— nCoV, и общие принципы госпитализации больного, подозрительного на заболевание коронавирусной инфекцией . 34
Приложение 1-4. 44
1
ВВЕДЕНИЕ
Появление в декабре 2019 г. заболеваний, вызванных новым коронавирусом (2019-nCoV), поставило перед специалистами в области охраны здравоохранения и врачами трудные задачи, связанные с быстрой диагностикой и клиническим ведением больных c этой инфекцией. В настоящее время сведения об эпидемиологии, клинических особенностях, профилактике и лечении этого заболевания ограничены. Известно, что наиболее распространенным клиническим проявлением нового варианта коронавирусной инфекции является пневмония, у значительного числа пациентов зарегистрировано развитие острого респираторного дистресс— синдрома (ОРДС).
Рекомендации, представленные в документе, в значительной степени базируются на фактических данных, опубликованных специалистами ВОЗ, китайского и американского центра по контролю за заболеваемостью, а также Европейского Центра по контролю за заболеваемостью в материалах по лечению и профилактике этой инфекции.
Методические рекомендации предназначены для врачей лечебно— профилактических учреждений инфекционного профиля, а также врачей— реаниматологов отделений интенсивной терапии инфекционного стационара.
1. ЭТИОЛОГИЯ И ПАТОГЕНЕЗ
Коронавирусы (Coronaviridae) – это большое семейство РНК— содержащих вирусов, способных инфицировать человека и некоторых животных. У людей коронавирусы могут вызвать целый ряд заболеваний – от легких форм острой респираторной инфекции до тяжелого острого респираторного синдрома (ТОРС). В настоящее время известно о циркуляции среди населения четырех коронавирусов (HCoV-229E, -OC43, -NL63 и —
HKU1), которые круглогодично присутствуют в структуре ОРВИ, и, как правило, вызывают поражение верхних дыхательных путей легкой и средней тяжести.
По результатам серологического и филогенетического анализа коронавирусы разделяются на три рода: Alphacoronavirus, Betacoronavirus и Gammacoronavirus. Естественными хозяевами большинства из известных в настоящее время коронавирусов являются млекопитающие.
До 2002 года коронавирусы рассматривались в качестве агентов, вызывающих нетяжелые заболевания верхних дыхательных путей (с крайне редкими летальными исходами). В конце 2002 года появился коронавирус (SARS-CoV), возбудитель атипичной пневмонии, который вызывал ТОРС у людей. Данный вирус относится к роду Betacoronavirus. Природным резервуаром SARS-CoV служат летучие мыши, промежуточные хозяева – верблюды и гималайские циветты. Всего за период эпидемии в 37 странах по миру зарегистрировано более 8000 случаев, из них 774 со смертельным исходом. С 2004 года новых случаев атипичной пневмонии, вызванной SARS-CoV, не зарегистрировано.
В 2012 году мир столкнулся с новым коронавирусом MERS (MERS— CoV), возбудителем ближневосточного респираторного синдрома, также принадлежащему к роду Betacoronavirus. Основным природным резервуаром коронавирусов MERS-CoV являются верблюды. С 2012 года зарегистрировано 2494 случая коронавирусной инфекции, вызванной вирусом MERS-CoV, из которых 858 закончились летальным исходом. Все случаи заболевания географически ассоциированы с Аравийским полуостровом (82% случаев зарегистрированы в Саудовской Аравии). В настоящий момент MERS-CoV продолжает циркулировать и вызывать новые случаи заболевания.
Новый коронавирус 2019-nCoV (временное название, присвоенное Всемирной организацией здравоохранения 12 января 2020 года) представляет собой одноцепочечный РНК-содержащий вирус, относится к семейству Coronaviridae, относится к линии Beta-CoV B. Вирус отнесен ко II группе патогенности, как и некоторые другие представители этого семейства (вирус SARS-CoV, MERS-CoV).
Коронавирус 2019-nCoV предположительно является рекомбинантным вирусом между коронавирусом летучих мышей и неизвестным по происхождению коронавирусом. Генетическая последовательность 2019— nCoV сходна с последовательностью SARS-CoV по меньшей мере на 70%.
Патогенез новой коронавирусной инфекции изучен недостаточно. Данные о длительности и напряженности иммунитета в отношении 2019— nCoV в настоящее время отсутствуют. Иммунитет при инфекциях, вызванных другими представителями семейства коронавирусов, не стойкий и возможно повторное заражение.
2. ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА
Пути передачи инфекции: воздушно-капельный (при кашле, чихании, разговоре), воздушно-пылевой и контактный. Факторы передачи: воздух, пищевые продукты и предметы обихода, контаминированные 2019-nCoV.
Установлена роль инфекции, вызванной2019-nCoV, как инфекции, связанной с оказанием медицинской помощи. По состоянию на 23.01.2020 в одной из больниц г. Ухань выявлено 15 подтвержденных случаев заболевания среди врачей, контактировавших с больными 2019-nCoV.
Стандартное определение случая заболевания новой коронавирусной инфекции 2019-nCoV
Подозрительный на инфекцию, вызванную 2019-nCoV, случай:
— наличие клинических проявлений острой респираторной инфекции, бронхита, пневмонии в сочетании со следующими данными эпидемиологического анамнеза:
— посещение за последние 14 дней до появления симптомов эпидемиологически неблагополучных по 2019-nCoV стран и регионов (главным образом г. Ухань, Китай);
— наличие тесных контактов за последние 14 дней с лицами, находящимися под наблюдением по инфекции, вызванной новым коронавирусом2019-nCoV, которые в последующем заболели;
— наличие тесных контактов за последние 14 дней с лицами, у которых лабораторно подтвержден диагноз 2019-nCoV.
Вероятный случай инфекции, вызванной 2019-nCoV:
— наличие клинических проявлений тяжелой пневмонии, ОРДС, сепсиса в сочетании с данными эпидемиологического анамнеза (см. выше).
Подтвержденный случай инфекции, вызванной 2019-nCoV:
1.Наличие клинических проявлений острой респираторной инфекции, бронхита, пневмонии в сочетании с данными эпидемиологического анамнеза (см. выше).
2. Положительные результаты лабораторных тестов на наличие РНК 2019-nCoV методом ПЦР.
3. ДИАГНОСТИКА КОРОНАВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ
3.1. АЛГОРИТМ ОБСЛЕДОВАНИЯ ПАЦИЕНТА С ПОДОЗРЕНИЕМ НА НОВУЮ КОРОНАВИРУСНУЮ ИНФЕКЦИЮ, ВЫЗВАННУЮ 2019-NCOV
Диагноз устанавливается на основании клинического обследования,
данных эпидемиологических анамнеза и результатов лабораторных исследований.
1. Подробная оценка всех жалоб, анамнеза заболевания,
эпидемиологического анамнеза. При сборе эпидемиологического анамнеза обращается внимание на посещение в течение 14 дней до первых симптомов, эпидемически неблагополучных по 2019-nCoV стран и регионов (в первую очередь г. Ухань, Китай), наличие тесных контактов за последние 14 дней с лицами, подозрительными на инфицирование2019-nCoV, или лицами, у которых диагноз подтвержден лабораторно.
2. Физикальное обследование, обязательно включающее:
— оценку видимых слизистых оболочек верхних дыхательных путей,
— аускультацию и перкуссию легких,
— пальпацию лимфатических узлов,
— исследование органов брюшной полости с определением размеров печени и селезенки,
— термометрию,
с установлением степени тяжести состояния больного.
3. Лабораторная диагностика общая:
-выполнение общего (клинического) анализа крови с определением уровня эритроцитов, гематокрита, лейкоцитов, тромбоцитов, лейкоцитарной формулы;
-биохимический анализ крови (мочевина, креатинин, электролиты, печеночные ферменты, билирубин, глюкоза, альбумин). Биохимический анализ крови не дает какой-либо специфической информации, но обнаруживаемые отклонения могут указывать на наличие органной дисфункции, декомпенсацию сопутствующих заболеваний и развитие осложнений, имеют определенное прогностическое значение, оказывают влияние на выбор лекарственных средств и/или режим их дозирования;
-исследование уровня С-реактивного белка (СРБ) в сыворотке крови. Уровень СРБ коррелирует с тяжестью течения, распространенностью воспалительной инфильтрации и прогнозом при пневмонии;
— пульсоксиметрия с измерением SpO2 для выявления дыхательной недостаточности и оценки выраженности гипоксемии. Пульсоксиметрия является простым и надежным скрининговым методом, позволяющим выявлять пациентов с гипоксемией, нуждающихся в респираторной поддержке и оценивать ее эффективность;
— пациентам с признаками острой дыхательной недостаточности (ОДН) (SрO2 менее 90% по данным пульсоксиметрии) рекомендуется исследование газов артериальной крови с определением PaO2, PaCO2, pH, бикарбонатов, лактата;
— пациентам с признаками ОДН рекомендуется выполнение коагулограммы с определением протромбинового времени, международного нормализованного отношения и активированного частичного тромбопластинового времени.
4. Лабораторная диагностика специфическая:
4. ЛЕЧЕНИЕ КОРОНАВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ
Читайте также: