Стафилококкагар питательная среда для выделения стафилококков сухая
Для выделения культур стафилококков обычно используют 5%-ный кровяной агар (кровь овцы, кролика, крупного рогатого скота). При исследовании образцов, содержащих постороннюю микрофлору, целесообразно использовать селективные среды.
Таблица 9. Дифференциальные признаки стафилококков, имеющих основное медицинское значение
| Признак | S. aureus | S. epidermidis | S. saprophyticus | |
| Anaerobius | Aureus | |||
| Наличие каротиноидного сегмента | – | ± | – | + |
| Способность к росту в анаэробных условиях (тиогликолевая среда) | + | + | + | ± |
| Рост на средах с 10% NaCI | + | + | ± (слабо) | + |
| Рост при: | ||||
| 15°С | ? | + | – (слабо) | + |
| 45°С | – | + | + | ± |
| Образование кислоты при ферментации углеводов в аэробных условиях: | ||||
| ксилоза | – | – | – | – |
| арабиноза | – | – | – | – |
| раффиноза | – | – | – | – |
| сахароза | + | + | + | + |
| маннит | – | + | – | ± |
| манноза | – | + | ± | – |
| трегалоза | – | + | – | + |
| лактоза | – | + | ± | ± |
| галактоза | – | + | ± | – |
| фруктоза | + | + | + | + |
| ксилит | – | – | – | ± |
| Восстановление нитратов | – | + | + (слабо) | – |
| Щелочная фосфатаза | + | + | + | – |
| Гиалуронидаза | + | + | + | ? |
| Уреаза | ? | ± | + | + |
| Коагулаза (на сыворотке кролика) | + | + | – | – |
| Фибринолизин | ? | ± | ± | ? |
| Гемолитическая активность | + | + | – (слабо) | – |
| ДНКаза | + | + | – (слабо) | – |
| Чувствительность к новобиоцину (МИК >1,6 мкг/мл) | + | + | + | – |
С целью дифференциации патогенных стафилококков от сапрофитных, а также от микрококков, используют среды, позволяющие одновременно определить один из признаков, характеризующих патогенные стафилококки. Приводим рецепты некоторых питательных сред.
Молочно-солевой агар
В 100 мл МПБ растворяют 6,5 г хлорида натрия, 20 г агар-агара. Устанавливают рН 7,4, стерилизуют при 121°С 20 минут. Перед использованием агар расплавляют, охлаждают до 45°С, добавляют 10% стерильного обезжиренного молока и разливают по чашкам Петри. На этой среде определяют пигментообразование и способность к росту при наличии 6,5% хлорида натрия.
Лактозо-солевой бульон с фенолротом
В 1000 мл дистиллированной воды растворяют 10 г триптона, 5 г мясного экстракта, 1 г дрожжевого экстракта, 5 г хлористого лития, 20 г агара. Устанавливают рН 6,8, разливают по пробиркам и стерилизуют при 121°С 15 минут. При росте коагулазоположигельных стафилококков среда желтеет (тест на коагулазу положительный).
Теллурит-полимиксин-желточный агар Крисли
В 1000 мл дистиллированной воды растворяют 10 г триптона, 5 г дрожжевого экстракта, 5 г маннита, 20 г хлорида натрия, 2 г хлористого лития, 18 г агара. Устанавливают рН 7,3, стерилизуют 15 минут при 121°С. Перед использованием в среду добавляют 100 мл 30%-ной желточной эмульсии (на физиологическом растворе), 0,4 мл стерилизованного фильтрацией 1%-ного водного раствора полимиксина М, 10 мл стерилизованного автоклавированием (121°С 15 мин) 1%-ного водного раствора теллурита натрия.
Среда Джиолиотта и Кантони
В 1000 мл дистиллированной воды растворяют 10 г триптона, 5 г мясного экстракта, 5 г дрожжевого экстракта, 5 г хлористого лития, 20 г маннита, 5 г хлористого натрия, 1,2 г глицина, 3 г пирувата натрия. Устанавливают рН 6,9, стерилизуют при 115°С 20 мин. Перед употреблением к среде добавляют 0,1 мл 1%-ного водного раствора теллурита натрия, стерилизованного фильтрацией, При росте коагулазоположительных стафилококков наблюдается почернение среды или черный осадок.
Среда Бэрда-Паркера
К 90 мл основной среды с температурой 45°С добавляют 6,3 мл глицинового раствора, 1 мл раствора теллурита натрия, 5 мл эмульсии желтка, перемешивают и разливают в чашки Петри. Среда пригодна к использованию в течение 28 дней (хранение при 4°С). Перед посевом на поверхность среды наносят 0,5 мл 20%-ного водного раствора пирувата натрия, стерилизованного фильтрацией; распределяют по поверхности, подсушивают. Колонии коагулазоположительных стафилококков черные, блестящие, с узкой серо-белой полосой и окружены прозрачной зоной.
Желточная эмульсия. Свежее куриное яйцо выдерживают в 0,001%-ном растворе HgCl2. Соблюдая требования асептики, отделяют желток и эмульгируют его в 200 мл физиологического раствора.
Глициновый раствор. Глицин — 20 г, дистиллированная вода — 100 мл. Стерилизуют при 120°С 15 минут.
Раствор теллурита натрия. Теллурит натрия — 1 г, дистиллированная вода — 100 мл. Стерилизуют фильтрацией.
Желточно-солевой агар Чистовича
В расплавленный МПА с 10% хлорида натрия (рН 7,2), охлажденный до температуры 60°С, добавляют желточную эмульсию. После тщательного перемешивания питательную среду разливают в чашки Петри.
Среда Чаплина-Бернса
К 100 мл МПА добавляют 3,3 мл 0,1%-ного водного раствора кристаллического фиолетового и 5 г лактозы. Устанавливают рН 6,8. Стерилизуют автоклавированием (110°С 30 минут). Колонии патогенных стафилококков растут быстрее, чем непатогенных, и приобретают фиолетовый или оранжевый цвет.
Среда Чемпена (для выделения патогенных стафилококков)
Вариант 1: пептон — 1%, D-маннит — 1%, натрия хлорид — 7,5%, дрожжевой экстракт — 0,25%, двузамещенный фосфорнокислый калий — 0,5%, агар-агар — 1,5%. Среду стерилизуют 90 минут при 110°С, устанавливают рН 7,0 и добавляют 10% стерильного обезжиренного молока (молоко способствует лучшему образованию пигмента).
Вариант 2: пептон — 1%, дрожжевой экстракт — 0, 25%, желатин — 3%, лактоза — 0,2%, D-маннит — 1%, натрия хлорид — 7,5%, двузамещенный фосфорнокислый калий — 0,5%, агар-агар — 1,5%. Стерилизуют 90 минут при 110°С, устанавливают рН 7,0.
Молочно-солевой агар: в 100 см 3 питательного агара растворяют при кипячении 6,5 г хлорида натрия, стерилизуют при 0,1 МПа в течение 20 мин. К расплавленному и остуженному до 45°С агару добавляют 10 см 3 на 100 см 3 обезжиренного стерилизованного молока, тщательно размешивают и разливают тонким слоем в чашки Петри. Учитывают колонии с зоной просветления.
Желточно-солевой агар: к 150 см 3 расплавленного и охлажденного до 45°С 6%-ного солевого агара стерильно добавляют 50 см 3 желточного раствора (1 желток куриного яйца растворяют в 150-200 см 3 физиологического раствора). Быстро перемешивают и разливают в чашки Петри.
Среды для культивирования дрожжей и микроскопических грибов
Среда Сабуро. Основой этой среды является дрожжевая вода. Для приготовления дрожжевой воды 70…100 г свежих прессованных дрожжей (7…10 г сухих дрожжей) кипятят в течение 20…30 мин в 1 л дистиллированной воды и отстаивают в высоком цилиндре на холоде 12 час. Отстоявшуюся жидкость декантируют, добавляют еще 1 л воды, кипятят 30 мин, фильтруют, доводят рН до требуемого значения. Приготовленную среду стерилизуют дробно по 20 мин 2…3 сут. К 100 мл стерильной дрожжевой воды добавляют 1% пептона, 2% агара, после растворения агара вносят 4% глюкозы или мальтозы, фильтруют, разливают в пробирки и стерилизуют при 0,05 МПа в течение 20 мин.
Среду можно готовить и на обычной 1%-ной пептонной воде.
Синтетическая среда Ридер для дрожжей. В состав среды входят (в г/л):сульфат аммония 3,сульфат магния 0,7, нитрат кальция 0,04, хлорид натрия 0,5. дегидрофосфат калия 1,0, гидрофосфат калия. Начальное значение рН среды 6,6.Для изучения размножения дрожжей добавляют 2% сахара, для исследования брожения 5…10%. Полная синтетическая среда содержит также витамины (в мкг/мл): инозит 5, биотин 0,0001, пантотеновую кислоту 0,25, тиамин 1,0, пиридоксин 0,25, никотиновую кислоту 0,5. Стерилизуют среду в автоклаве при давлении 0,1 МПа.
Картофельно-глюкозный агар. Очищенный и нарезанный ломтиками картофель массой 200 г заливают 1 л дистиллированной воды и кипятят в течение 1 часа. Отвар фильтруют, к фильтрату добавляют воду до первоначального объема, 2% глюкозы и 2…3% агар-агара. Среду разливают в пробирки или колбы и стерилизуют при 0,1 МПа в течение 10 мин. При употреблении устанавливают рН 3,5 при помощи 10%-ного стерильного раствора безводной лимонной кислоты.
Синтетическая среда Чапека для грибов. Состав среды (в г/л): сахароза или глюкоза 30, дигидрофосфат калия 1,0, нитрат натрия 2,0, сульфат магния 0,5, хлорид калия 0,05, сульфат железа 0,1, агар 20. Навеску агара выщелачивают и добавляют к указанным ингредиентам, предварительно растворенным в 1 л дистиллированной воды, прогревают текучим паром, устанавливают рН 4,0…5,5 10% раствором лимонной кислоты или гидроксида натрия. Фильтруют, разливают в пробирки и стерилизуют дробно текучим паром 3 сут по 30 мин.
Полная среда с лизином для выявления несовершенных дрожжей. В 1 л водопроводной воды вносят (в г/л): глюкозу - 50, сульфат магния - 1, дигидрофосфат калия - 2, лактат калия - 12 мл 50% раствора, L(+) моногидрат лизина – 1, витаминный раствор (на 100 мл стерильной дистиллированной воды добавляют (в г) инозитола 2, пантотената кальция 0,4, никотинамида 0,5, хлоргидраттиамина 0,1), агара - 20. рН среды составляет 5,0…5,2. Среду разливают в пробирки и стерилизуют 15 мин при 0,1 МПа.
Среда с ацетатом для обнаружения несовершенных дрожжей. На 1 л водопроводной воды берут 10 г ацетата натрия, 10 г хлорида аммония, 5 г глюкозы, 3 мл дрожжевого автолизата, разливают в пробирки и стерилизуют при давлении 0,05 МПа в течение 30 мин.
Среды для культивирования молочнокислых бактерий
Цельное молоко разливают в пробирки или колбы и стерилизуют при 0,1 МПа в течение 10 мин. Среду используют для изучения физиологических свойств молочнокислых бактерий.
Обезжиренное молоко отделяют от сливок путем сепарирования, разливают в пробирки или колбы и стерилизуют при тех же режимах, что и цельное молоко. Среду используют для изучения физиологических свойств микробов и для группового количественного учета молочнокислых бактерий.
Гидролизованное молоко. В стерильном обезжиренном молоке устанавливают рН 7,6…7,8. Молоко нагревают до 45 0 С и к 1 л молока добавляют 0,5 - 1 г панкреатина, предварительно растворенный в теплой воде, и 5 мл хлороформа. Емкость с молоком плотно закрывают корковой пробкой, смесь тщательно перемешивают и ставят в термостат при температуре 40 0 С на 18…24 часа. Затем полученную прозрачную жидкость декантируют и фильтруют через бумажный фильтр. Фильтрат разводят водой в 2 раза, устанавливают рН 7,0…7,2 и стерилизуют при 0,1 МПа в течение 15 мин.
Агар с гидролизованным молоком. В гидролизованное молоко вносят 1,5…2,0% агар-агара. Смесь нагревают до кипения и выдерживают до полного растворения агара. Горячую среду фильтруют через ватный фильтр, разливают в пробирки или колбы и стерилизуют при давлении 0,1 МПа в течение 10…15 мин.
Среда для количественного учета гнилостных бактерий
Молочный агар готовят путем внесения 20% горячего стерильного обезжиренного молока в стерильный расплавленный 2% водный раствор агар-агара. Используется эта среда для количественного учета протеолитических и пептонизирующих бактерий (микрококков, маммококков). Вокруг колоний гнилостных бактерий образуются зоны протеолиза и пептонизации.
Среда с говяжьим жиром. В состав среды входят: пептон – 1 г, дрожжевой автолизат – 0,3, двузамещенный фосфат натрия – 0,1 г, агар – 1,5 г, дистиллированная вода – до 100 мл, рН 7,0…7.4.
Отдельно готовят в пробирках стерильный говяжий жир. Среду стерилизуют при 121 0 С (0,1 МПа) в течение 15 мин.
Молочно-солевой агар: в 100 см 3 питательного агара растворяют при кипячении 6,5 г хлорида натрия, стерилизуют при 0,1 МПа в течение 20 мин. К расплавленному и остуженному до 45°С агару добавляют 10 см 3 на 100 см 3 обезжиренного стерилизованного молока, тщательно размешивают и разливают тонким слоем в чашки Петри. Учитывают колонии с зоной просветления.
Желточно-солевой агар: к 150 см 3 расплавленного и охлажденного до 45°С 6%-ного солевого агара стерильно добавляют 50 см 3 желточного раствора (1 желток куриного яйца растворяют в 150-200 см 3 физиологического раствора). Быстро перемешивают и разливают в чашки Петри.
Среды для культивирования дрожжей и микроскопических грибов
Среда Сабуро. Основой этой среды является дрожжевая вода. Для приготовления дрожжевой воды 70…100 г свежих прессованных дрожжей (7…10 г сухих дрожжей) кипятят в течение 20…30 мин в 1 л дистиллированной воды и отстаивают в высоком цилиндре на холоде 12 час. Отстоявшуюся жидкость декантируют, добавляют еще 1 л воды, кипятят 30 мин, фильтруют, доводят рН до требуемого значения. Приготовленную среду стерилизуют дробно по 20 мин 2…3 сут. К 100 мл стерильной дрожжевой воды добавляют 1% пептона, 2% агара, после растворения агара вносят 4% глюкозы или мальтозы, фильтруют, разливают в пробирки и стерилизуют при 0,05 МПа в течение 20 мин.
Среду можно готовить и на обычной 1%-ной пептонной воде.
Синтетическая среда Ридер для дрожжей. В состав среды входят (в г/л):сульфат аммония 3,сульфат магния 0,7, нитрат кальция 0,04, хлорид натрия 0,5. дегидрофосфат калия 1,0, гидрофосфат калия. Начальное значение рН среды 6,6.Для изучения размножения дрожжей добавляют 2% сахара, для исследования брожения 5…10%. Полная синтетическая среда содержит также витамины (в мкг/мл): инозит 5, биотин 0,0001, пантотеновую кислоту 0,25, тиамин 1,0, пиридоксин 0,25, никотиновую кислоту 0,5. Стерилизуют среду в автоклаве при давлении 0,1 МПа.
Картофельно-глюкозный агар. Очищенный и нарезанный ломтиками картофель массой 200 г заливают 1 л дистиллированной воды и кипятят в течение 1 часа. Отвар фильтруют, к фильтрату добавляют воду до первоначального объема, 2% глюкозы и 2…3% агар-агара. Среду разливают в пробирки или колбы и стерилизуют при 0,1 МПа в течение 10 мин. При употреблении устанавливают рН 3,5 при помощи 10%-ного стерильного раствора безводной лимонной кислоты.
Синтетическая среда Чапека для грибов. Состав среды (в г/л): сахароза или глюкоза 30, дигидрофосфат калия 1,0, нитрат натрия 2,0, сульфат магния 0,5, хлорид калия 0,05, сульфат железа 0,1, агар 20. Навеску агара выщелачивают и добавляют к указанным ингредиентам, предварительно растворенным в 1 л дистиллированной воды, прогревают текучим паром, устанавливают рН 4,0…5,5 10% раствором лимонной кислоты или гидроксида натрия. Фильтруют, разливают в пробирки и стерилизуют дробно текучим паром 3 сут по 30 мин.
Полная среда с лизином для выявления несовершенных дрожжей. В 1 л водопроводной воды вносят (в г/л): глюкозу - 50, сульфат магния - 1, дигидрофосфат калия - 2, лактат калия - 12 мл 50% раствора, L(+) моногидрат лизина – 1, витаминный раствор (на 100 мл стерильной дистиллированной воды добавляют (в г) инозитола 2, пантотената кальция 0,4, никотинамида 0,5, хлоргидраттиамина 0,1), агара - 20. рН среды составляет 5,0…5,2. Среду разливают в пробирки и стерилизуют 15 мин при 0,1 МПа.
Среда с ацетатом для обнаружения несовершенных дрожжей. На 1 л водопроводной воды берут 10 г ацетата натрия, 10 г хлорида аммония, 5 г глюкозы, 3 мл дрожжевого автолизата, разливают в пробирки и стерилизуют при давлении 0,05 МПа в течение 30 мин.
Среды для культивирования молочнокислых бактерий
Цельное молоко разливают в пробирки или колбы и стерилизуют при 0,1 МПа в течение 10 мин. Среду используют для изучения физиологических свойств молочнокислых бактерий.
Обезжиренное молоко отделяют от сливок путем сепарирования, разливают в пробирки или колбы и стерилизуют при тех же режимах, что и цельное молоко. Среду используют для изучения физиологических свойств микробов и для группового количественного учета молочнокислых бактерий.
Гидролизованное молоко. В стерильном обезжиренном молоке устанавливают рН 7,6…7,8. Молоко нагревают до 45 0 С и к 1 л молока добавляют 0,5 - 1 г панкреатина, предварительно растворенный в теплой воде, и 5 мл хлороформа. Емкость с молоком плотно закрывают корковой пробкой, смесь тщательно перемешивают и ставят в термостат при температуре 40 0 С на 18…24 часа. Затем полученную прозрачную жидкость декантируют и фильтруют через бумажный фильтр. Фильтрат разводят водой в 2 раза, устанавливают рН 7,0…7,2 и стерилизуют при 0,1 МПа в течение 15 мин.
Агар с гидролизованным молоком. В гидролизованное молоко вносят 1,5…2,0% агар-агара. Смесь нагревают до кипения и выдерживают до полного растворения агара. Горячую среду фильтруют через ватный фильтр, разливают в пробирки или колбы и стерилизуют при давлении 0,1 МПа в течение 10…15 мин.
Среда для количественного учета гнилостных бактерий
Молочный агар готовят путем внесения 20% горячего стерильного обезжиренного молока в стерильный расплавленный 2% водный раствор агар-агара. Используется эта среда для количественного учета протеолитических и пептонизирующих бактерий (микрококков, маммококков). Вокруг колоний гнилостных бактерий образуются зоны протеолиза и пептонизации.
Среда с говяжьим жиром. В состав среды входят: пептон – 1 г, дрожжевой автолизат – 0,3, двузамещенный фосфат натрия – 0,1 г, агар – 1,5 г, дистиллированная вода – до 100 мл, рН 7,0…7.4.
Отдельно готовят в пробирках стерильный говяжий жир. Среду стерилизуют при 121 0 С (0,1 МПа) в течение 15 мин.
| Категория реферата: Рефераты по медицине
| Теги реферата: доклад по обж, конспект урока по математике
| Добавил(а) на сайт: Ячменев.
Государственный научный центр прикладной микробиологии.
Стафилококкагар.
Питательная среда для выделения стафилококков, сухая.
ХАРАКТЕРИСТИКА
Стафилококкагар предназначен для выделения стафилококка из исследуемого материала (пищевых продуктов, грудного молока, крови, кала, мочи, мокроты, мазков из носоглотки, отделяемого ран, свищей, глаз и др.). Используется в качестве основы для приготовления молочно-желточного солевого агара.
Представляет собой гигроскопичный мелкодисперсный порошок светло-желтого цвета.
СОСТАВ
Стафилококкагар агар состоит из панкреатического гидролизата рыбной муки, панкреатического гидролизата казеина, дрожжевого экстракта, хлорида натрия, гидрофосфата натрия и агара.
1. Препарат в количестве, указанном на этикетке, размешивают в 1 л дистиллированной воды, доводят до кипения и кипятят 2-3 мин до полного расплавления агара.
2. Разливают во флаконы или другие емкости.
3. Стерилизуют автоклавированием при температуре 121 °С в течение 15 мин.
4. Стерильную среду охлаждают до температуры 45-50 °С, разливают в стерильные чашки Петри слоем 4-6 мм
5. После застывания чашки подсушивают при температуре (37±1) °С в течение
40-60 мин.
Готовая среда непрозрачная, зеленовато-желтого цвета
КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА
|Тест-штамм |
|Инокулят |
|Инкубация |
|Наблюдаемый эффект |
| |
|Staphylococcus aureus "Виотко" |
|0,1 мл из разведения 10-7 |
|46-50 ч 36-38 °С |
|Наличие непрозрачных, выпуклых, круглых с ровными краями блестящих |
|колоний, диаметром 3,0-3,5 мм. |
| |
|Staphylococcus epidermidis ATCC 14990 |
|0,1 мл из разведения 10-6 |
|46-50 ч 36-38 °С |
|Наличие непрозрачных, выпуклых, круглых с ровными краями блестящих |
|колоний, диаметром 2,0-2,5 мм. |
| |
|Staphylococcus saprophyticus CCM 883 |
|0,1 мл из разведения 10-6 |
|46-50 ч 36-38 °С |
|Наличие непрозрачных, выпуклых, круглых с ровными краями блестящих |
|колоний, диаметром 2,0-2,5 мм. |
| |
|Escherichia coli 168/59(O111:K58 |
|0,1 мл из разведения 10-2 |
|46-50 ч 36-38 °С |
|Полное отсутствие роста |
| |
|Pseudomonas aeruginosa 273 |
|0,1 мл из разведения 10-2 |
|46-50 ч 36-38 °С |
|Полное отсутствие роста |
| |
|Proteus vulgaris HX 19 222 |
|0,1 мл из разведения 10-2 |
|46-50 ч 36-38 °С |
|В случае роста - отсутствие "роения" |
| |
При посеве смеси тест-штаммов S. aureus "Виотко" и P. vulgaris HX 19 222 наличие роста P. vulgaris HX 19 222 не должно ингибировать рост S. aureus
"Виотко".
ПОСЕВ И ИНТЕПРЕТАЦИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ
o Взятие , посев инфицированного материала и учет результатов проводят в соответствии с приказом Минздрава СССР N 720 от 31 июля 1978 г "Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией" и приказом Минздрава СССР от 22.04.85 г. N 535 "Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений". o Через 46-50 ч инкубации при температуре (37+1) °С проводят учет результатов на наличие роста стафилококков. Стафилококк образуют непрозрачные, выпуклые, круглые, блестящие с ровными краями колонии.
На среде угнетается рост большинства энтеробактерий, в случае роста протея отсутствует его роение.
СРОК ГОДНОСТИ сухой среды - 2 года.
Скачали данный реферат: Жиренков, Chelomcev, Янчуковский, Kolesov, Сусоев, Аникита.
Последние просмотренные рефераты на тему: рецензия на дипломную работу, quality assurance design patterns системный анализ, банк курсовых, изложение 8 класс по русскому.
Государственный научный центр прикладной микробиологии.
Питательная среда для выделения стафилококков, сухая.
Стафилококкагар предназначен для выделения стафилококка из исследуемого материала (пищевых продуктов, грудного молока, крови, кала, мочи, мокроты, мазков из носоглотки, отделяемого ран, свищей, глаз и др.). Используется в качестве основы для приготовления молочно-желточного солевого агара. Представляет собой гигроскопичный мелкодисперсный порошок светло-желтого цвета.
Стафилококкагар агар состоит из панкреатического гидролизата рыбной муки, панкреатического гидролизата казеина, дрожжевого экстракта, хлорида натрия, гидрофосфата натрия и агара.
- Препарат в количестве, указанном на этикетке, размешивают в 1 л дистиллированной воды, доводят до кипения и кипятят 2-3 мин до полного расплавления агара.
- Разливают во флаконы или другие емкости.
- Стерилизуют автоклавированием при температуре 121 °С в течение 15 мин.
- Стерильную среду охлаждают до температуры 45-50 °С, разливают в стерильные чашки Петри слоем 4-6 мм
- После застывания чашки подсушивают при температуре (37±1) °С в течение 40-60 мин.
Готовая среда непрозрачная, зеленовато-желтого цвета
При посеве смеси тест-штаммов S. aureus "Виотко" и P. vulgaris HX 19 222 наличие роста P. vulgaris HX 19 222 не должно ингибировать рост S. aureus "Виотко". ПОСЕВ И ИНТЕПРЕТАЦИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ q Взятие , посев инфицированного материала и учет результатов проводят в соответствии с приказом Минздрава СССР N 720 от 31 июля 1978 г "Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией" и приказом Минздрава СССР от 22.04.85 г. N 535 "Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений". q Через 46-50 ч инкубации при температуре (37+1) °С проводят учет результатов на наличие роста стафилококков. Стафилококк образуют непрозрачные, выпуклые, круглые, блестящие с ровными краями колонии. На среде угнетается рост большинства энтеробактерий, в случае роста протея отсутствует его роение. Государственный научный центр прикладной микробиологии. Питательная среда для выделения стафилококков, сухая. Стафилококкагар предназначен для выделения стафилококка из исследуемого материала (пищевых продуктов, грудного молока, крови, кала, мочи, мокроты, мазков из носоглотки, отделяемого ран, свищей, глаз и др.). Используется в качестве основы для приготовления молочно-желточного солевого агара. Представляет собой гигроскопичный мелкодисперсный порошок светло-желтого цвета. Стафилококкагар агар состоит из панкреатического гидролизата рыбной муки, панкреатического гидролизата казеина, дрожжевого экстракта, хлорида натрия, гидрофосфата натрия и агара. Препарат в количестве, указанном на этикетке, размешивают в 1 л дистиллированной воды, доводят до кипения и кипятят 2-3 мин до полного расплавления агара. Разливают во флаконы или другие емкости. Стерилизуют автоклавированием при температуре 121 °С в течение 15 мин. Стерильную среду охлаждают до температуры 45-50 °С, разливают в стерильные чашки Петри слоем 4-6 мм После застывания чашки подсушивают при температуре (37±1) °С в течение 40-60 мин. Готовая среда непрозрачная, зеленовато-желтого цвета Staphylococcus aureus "Виотко" 0,1 мл из разведения 10 -7 Наличие непрозрачных, выпуклых, круглых с ровными краями блестящих колоний, диаметром 3,0-3,5 мм. Staphylococcus epidermidis ATCC 14990 0,1 мл из разведения 10 -6 Наличие непрозрачных, выпуклых, круглых с ровными краями блестящих колоний, диаметром 2,0-2,5 мм. Staphylococcus saprophyticus CCM 883 0,1 мл из разведения 10 -6 Наличие непрозрачных, выпуклых, круглых с ровными краями блестящих колоний, диаметром 2,0-2,5 мм. Escherichia coli 168/59(O111:K58 0,1 мл из разведения 10 -2 Полное отсутствие роста Pseudomonas aeruginosa 273 0,1 мл из разведения 10 -2 Полное отсутствие роста Proteus vulgaris HX 19 222 0,1 мл из разведения 10 -2 В случае роста - отсутствие "роения" При посеве смеси тест-штаммов S. aureus "Виотко" и P. vulgaris HX 19 222 наличие роста P. vulgaris HX 19 222 не должно ингибировать рост S. aureus "Виотко". ПОСЕВ И ИНТЕПРЕТАЦИЯ РЕЗУЛЬТАТОВ Взятие , посев инфицированного материала и учет результатов проводят в соответствии с приказом Минздрава СССР N 720 от 31 июля 1978 г "Об улучшении медицинской помощи больным с гнойными хирургическими заболеваниями и усилении мероприятий по борьбе с внутрибольничной инфекцией" и приказом Минздрава СССР от 22.04.85 г. N 535 "Об унификации микробиологических (бактериологических) методов исследования, применяемых в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений". Через 46-50 ч инкубации при температуре (37+1) °С проводят учет результатов на наличие роста стафилококков. Стафилококк образуют непрозрачные, выпуклые, круглые, блестящие с ровными краями колонии. На среде угнетается рост большинства энтеробактерий, в случае роста протея отсутствует его роение. СРОК ГОДНОСТИ сухой среды - 2 года. Понятие о внутрибольничной инфекции. Возбудители, факторы и пути передачи внутрибольничной инфекции в лечебно-профилактических учреждениях. Профилактика и борьба с внутрибольничными инфекциями. Субстраты для изучения жизнедеятельности микроорганизмов при определенных условиях, которые изменяются по воле экспериментатора. Жидкие и твердые питательные среды для бактерий. Значение реакции питательной среды для жизнедеятельности микроорганизмов. Проведение лабораторных опытов с двумя пробами сточных вод, взятых с территориальных участков животноводческого комплекса. Характеристика роста исследуемых проб на различных питательных средах. Изучение биохимических свойств выделенных стафилококков. Анализ и учет результатов. Частота и встречаемость гнойного бактериального менингита в мире в зависимости от возбудителя. Характеристика возбудителей гнойных бактериальных менингитов. Патогенез бактериального менингита, микробиологическая диагностика. Характеристика, виды, строение и функции болезнетворных стафилококков, возможные пути заражения. Этиология стафилококковой инфекции, основные методы ее своевременной диагностики. Особенности лечения данного заболевания и средства для его профилактики. Основные принципы обнаружения и идентификации патогенных стафилококков. В последние годы внимание инфекционистов привлекают "новые" инфекции, обусловленные нетрадиционными микроорганизмами. Особое место занимает протейная инфекция. Пищевые токсикологические инфекции - болезни человека, связанные с приёмом пищи, обильно обсеменённой определенными видами бактерий. Этиологическая роль Bacillus cereus при пищевых отравлениях. Морфологические, культуральные и ферментативные свойства. В здоровом организме около 90% всех бактерий толстой кишки составляет бифидофлора. Остальное - лактобациллы, бактероиды, кишечная палочка, а также условно-патогенные микроорганизмы: стрептококки, энтерококки, стафилококки. Выделение возбудителя в начальном периоде болезни при микробиологической диагностике, исследование крови, изучение колоний на дифференциальной среде. Исследование дуоденального содержимого с диагностической целью, при обследовании на бациллоносительство. Общая документация для процедурного кабинета. Функции медицинской сестры процедурного кабинета. Нормативные документы, регламентирующие учет, хранение и выдачу медикаментов различных групп. Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Рассмотрение истории возникновения псевдотуберкулеза. Характеристика этиологии, морфологических, тинкториальных, культуральных, биохимических и патогенных свойств возбудителя, антигенной структуры, методов диагностики, профилактики и лечения заболевания. В настоящее время хирургические заболевания, развивающиеся на фоне сахарного диабета остаются одним из наиболее актуальных вопросов современной хирургии. По данным международного комитета ВОЗ, количество Общая характеристика. Токсические продукты. Патогенность. Госпитальная стафилококковая инфекция. Патологическая анатомия. Эпидемиология. Иркутский Государственный Медицинский Университет Кафедра Микробиологии РЕФЕРАТ Санитарно-микробиологические исследования и контроль в лечебно-профилактических учреждении за внутрибольничными инфекциями Кафедра клинической фармакологии и антимикробной химиотерапии Смоленской государственной медицинской академии Контактный адрес: Дехнич Андрей Владимирович Стафилококки: патогенные биохимические свойства, морфология и антигенная структура. Патогенез и токсинообразование. Проблемы лабораторной диагностики, вопросы иммунитета. Антигены как серологический классификатор стрептококков. Мастит и биопрепараты. Ситуация по распространению и мутациям туберкулеза в России на современном этапе. Токсическое воздействие микобактерий на организм. Характеристика туберкулёзных бактерий. Техника люминесцентной микроскопии и количественная оценка ее результатов. Лекарственное растение и его сохранность от микробной порчи. Микроорганизмы, населяющие растения: нормальная микрофлора, фитопатогенные микроорганизмы. Микрофлора готовых лекарственных форм. Объекты санитарно-бактериологического обследования в аптеках. Читайте также:
|