Техника безопасности при работе с гельминтами

Пути заражения.

Человек гельминтами животных заражается: 1) через руки, загрязненные при работе на ферме, при уходе за домашними животными, ветеринарном обслуживании животных, сборе и исследовании материала от животных и объектов окружающей среды и т.д.; инвазионное начало с рук заноситься в рот с пищей, водой и даже при курении и т.д.; 2) при активном нападении промежуточных хозяев (кровососущих насекомых), происходит инокуляция личинок гельминтов (например, филярий); 3) при активном нападении в водоеме фуркоцеркарий шистозомат, в наземной среде – личинок стронгилоидид и анкилостомид домашних и диких животных; 4) при употреблении в пищу сырых или недостаточно обработанных термически, или недостаточно по времени просоленных животных и растительных продуктов, которые могут содержать яйца и личинки гельминтов; 5) при питье воды из водоемов, в которые могут поступать стоки ферм и бытовые отходы, и в этой воде которых могут находиться инвазионные элементы гельминтов.

Профилактику соблюдают при взятии материала от животных для копрологической диагностики и дальнейшем лабораторном исследовании материала, аналогичные меры профилактики соблюдают и при исследовании объектов окружающей среды.

Взятие проб фекалий из прямой кишки жвачных, лошадей, свиней или свеже выделенных фекалий, их исследование в ближайшее время (до полутора суток) является не опасным.

Напротив, несвежие фекалии, которые находились какое-то время в помещении или на пастбище при комнатной (положительной) температуре, могут представлять определенную опасность. В этой связи сбор материала и его упаковку необходимо производить в перчатках.

Свежие и полежавшие фекалии домашних и диких плотоядных очень опасны в смысле инвазии персонала личинками (онкосферами) тениид и различными цистицерками. Поэтому пробы берут и упаковывают в резиновых перчатках. Пробы фекалий целесообразно консервировать.

Пробы фекалий на месте взятия упаковывают в полиэтиленовые пакеты или специальные пластмассовые (стеклянные) банки, чтобы в пути не было загрязнения транспорта и окружающих предметов. В лаборатории упаковочный материал тщательно стерилизуют или утилизируют.

Подготовку материала для исследования и микроскопию препаратов проводят на отдельных столах, которые покрыты моющейся пленкой, при этом стол должен находиться рядом с водопроводным краном. Пробы фекалий для исследований готовят в больших кюветах, которые можно легко промыть и дезинвазировать (например, обработать термически).

Пробы фекалий берут специальным пинцетом, избегая контакта с руками.

Особенные меры предосторожности соблюдают при исследовании фекалий от домашних и диких плотоядных в районах неблагополучных по эхинококкозу, альвеококкозу и другим тениидозам, независимо от времени (сезона) взятия проб. Работу обязательно выполняют в резиновых перчатках. Гельминтологическое вскрытие и последующее исследование кишечника этих животных также производят обязательно в перчатках.

В хранившихся пробах от жвачных, свиней и лошадей (особенно молодняка) в теплое время (при температуре 25-30º С) через полтора суток развиваются инвазионные личинки строгилоидид, представляющие опасность для исследователей. Если проводить исследование проб в день взятия материала невозможно, их помещают в холодильник, что задеражать развитие личинок.

При культивировании личинок стронгилят (особенно анкилостоматид) учитывают, что возможно загрязнение рук инвазионным началом и последующее заражение. В этой связи обязательно работают в перчатках, исключая возможность загрязнения столов и помещения.

При исследовании мышц свиней, кабанов, медведей, барсуков и других млекопитающих с целью диагностики личинок трихинелл, соблюдают максимальные меры профилактики. После проведенной диагностической работы столы и инструментарий дезинфицируют спиртом. Аналогичные меры профилактики соблюдают и при исследовании пресноводных рыб и морепродуктов (рыба, крабы, креветки, моллюски и др.) особенно в районах неблагополучных по описторхозу, клонорхозу, псевдамфистомозу, нанофиэтозу, парагонимозу и др. При исследовании материала методом переваривания в искусственном желудочном соке обязательно работают в резиновых перчатках. Для микроскопических исследований материал отбирают специальной пипеткой с резиновым баллончиком.

После окончания работы тщательно промывают столы, лабораторную посуду и инструментарий. В том случае, если исследовали материал от плотоядных, то проводят дополнительную дезинвазию использованной лабораторной посуды, пластикового покрытия столов. Внешние детали микроскопа (поворотные ручки и объективы) протирают спиртом.

После окончания исследований руки моют с мылом под струей воды, особенно тщательно промывают подногтевые пространства, используя специальную щетку.

После исследования отработанный материал от плотоядных (остатки фекалий, смывы с проб, вода после промывания и т.д.) подвергают дезинвазии путем кипячения или утилизируют в специальной канализации.

При сборе и исследовании проб из окружающей среды (почва, ил, осадок сточных вод, навоз и др.) соблюдают аналогичные меры профилактики как и при исследований фекалий.

Нам важно ваше мнение! Был ли полезен опубликованный материал? Да | Нет

Лабораторная работа № 1

Структура и материально-техническое обеспечение лаборатории микробиологии. Лабораторное оборудование, применяемое в микробиологических исследованиях

Цель работы. Ознакомление с основными подразделениями и размещением лаборатории микробиологии.

Материалы и оборудование: пробирки бактериологические, шпатели Дригальского, пастеровские пипетки, ватно-марлевые пробки, штативы для пробирок, чашки Петри, колбы на 500 и 1000 мл, мерные цилиндры на 100 мл, пипетки градуированные на 1 и 10 мл, ручные дозаторы, воронки, фильтровальная бумага, вата, марлевые салфетки, индикаторная бумага для определения pH, дистиллированная вода, сухие готовые питательные среды, химические реактивы, красители, горелки газовые или электроплитки, водяные бани, весы электронные, термостат, автоклав, центрифуга, pH-метр, дистиллятор, настольная лупа.

Задание:

1. Ознакомиться с основными подразделениями и размещением лаборатории микробиологии.

2. Изучить лабораторное оборудование, основные принципы работы приборов.

Теоретическая часть

Различают микробиологические лаборатории нескольких типов: учебные, производственные и научно-исследовательские. Организация работы в лабораториях разных типов определяется стоящими перед ними задачами. Учебные лаборатории призваны знакомить будущих специалистов – микробиологов с основными методами диагностики, профилактики и терапии инфекционных болезней рыб.

Лаборатория микробиологии включает группы, занимающиеся изучением инфекционных болезней рыб. При проведении исследований большое значение имеет материально-техническое оснащение лаборатории. Кроме того, серьезные требования предъявляются к ее размещению.

Лаборатория микробиологии состоит из нескольких помещений, различающихся по целевому назначению, оборудованию и режиму работы. При этом особое значение имеет устройство подразделения лаборатории, в котором осуществляются бактериологические и микологические исследования. В составе лаборатории микробиологии выделяют следующие помещения.

1. Комната кабинетного типа, где проводят анализ данных эпизоотологического исследования, обработку результатов лабораторных работ и при необходимости – некоторые лабораторные исследования, например, микроскопию фиксированных препаратов.

2. Комната для лабораторных работ. Здесь исследуют рыбу (осмотр, вскрытие, взятие патологического материала), изучают патологический материал и выделенных возбудителей.

3. Препараторская. В этой комнате размещают основное оборудование лаборатории. Здесь же находятся реактивы, необходимые в работе лаборатории.

4. Аквариальная служит для проведения исследований, связанных с выяснением патогенной значимости выделенных возбудителей (постановка биологической пробы) и подбором эффективных профилактических и лечебных средств.

Микробиологический отдел лаборатории включает ряд помещений, где проводят работу с микроорганизмами. Кроме основного рабочего помещения лаборатория имеет стерилизационную, где размещены автоклавы и сушильные шкафы,бокс, моечную, комнату для приготовления питательных сред и реактивов.

Для проведения стерильных работ при изучении возбудителей инфекционных болезней рыб бокс может быть оборудован в комнате для лабораторных работ. Воздух и поверхность предметов в боксе должны быть стерильны. С этой целью помещение бокса герметизируют, а бокс оборудуют бактерицидными лампами. Бокс служит для работы с культурами микроорганизмов и представляет собой небольшую изолированную комнату, разделенную перегородкой на две части (собственно бокс и предбоксник). Оборудование бокса состоит из стола, стула, газовой горелки (или спиртовки) и бактерицидной лампы настенного или настольного типа. Удобно иметь в боксе приставной столик, на котором размещают необходимые во время работы предметы.

Рабочее место, где непосредственно проводится работа с культурами микроорганизмов, требует особенно тщательной обработки. Рабочий стол до и после окончания работы дезинфицируют 70 %-ным раствором этилового спирта или растворами хлорсодержащих препаратов (хлорамина Б и других).

Воздух в лаборатории наиболее просто дезинфицировать проветриванием. Продолжительная вентиляция помещения (в течение 30-60 мин) приводит к резкому снижению количества микроорганизмов в воздухе, особенно при значительной разнице в температуре между наружным воздухом и воздухом помещения. Более эффективный и надежный способ дезинфекции воздуха – облучение ультрафиолетовыми лучами с длиной волны от 200 до 400 нм. Эти лучи обладают высокой антимикробной активностью и могут вызвать гибель не только вегетативных форм микроорганизмов, но и спор.

В бокс входят через предбоксник, где надевают чистый халат. Там же размещают шкаф для хранения стерильной посуды.

При отсутствии отдельного помещения для бокса используют ламинарные шкафы или боксы настольные (рисунок 1).

Рисунок 1 – Оборудование для проведения стерильных работ в лаборатории

(а – ламинарный шкаф, б – настольный бокс)

Бокс может быть изолированным от общего помещения (рисунок 2)

Рисунок 2 – Изолированный бокс

Правила работы и техника безопасности в микробиологической лаборатории

Каждый сотрудник лаборатории должен иметь закрепленное за ним рабочее место. Каждое рабочее место имеет обязательный комплект оборудования: спиртовую или газовую горелку; закрывающиеся контейнеры с дезинфицирующим раствором; банку с дезинфицирующим раствором для использованных предметных и покровных стекол; плотно закрывающуюся банку для хранения чистых, обезжиренных стекол в смеси Никифорова; набор бактериологических петель разного диаметра; лупу 5-кратного увеличения; бинокуляр и микроскоп.

В ящиках стола находится дневной запас стерильных пастеровских и градуированных пипеток разного объема, резиновая груша или пипеточные дозаторы.

Перед началом работы следует надеть халат, который хранится отдельно от верхней одежды.

При работе со спиртовкой необходимо иметь под рукой одеяло или плотную ткань для быстрого тушения огня в случае аварии.

Насасывание в пипетки растворов химических реактивов и жидкостей, содержащих возбудителей инфекционных заболеваний рыбы, производят с помощью резиновой груши или автоматических дозаторов. Насасывание ртом не допускается.

Материал для исследования доставляют в лабораторию в контейнерах, биксах или сумках-холодильниках. Ёмкости с жидкими материалами закрывают пробками, исключающими выливание содержимого во время транспортирования. Дно контейнеров, содержащих емкости с патологическим материалом, покрывают адсорбирующим материалом (марлевая салфетка, ткань и др.). Не допускается доставка материала в хозяйственных сумках, чемоданах и других предметах личного пользования. Сопроводительную документацию к направляемому материалу прилагают отдельно, в полиэтиленовом пакете.

Для посевов используют бактериологическую петлю, замкнутую в непрерывное кольцо, с плечом не более 6 см. Допускается применение одноразовых промышленно изготовленных петель с большей длиной плеча.

ЗАПРЕЩАЕТСЯ прикасаться руками к исследуемому материалу и культурам микробов. Все необходимые операции с названными объектами проводятся только с использованием специальных инструментов. Запрещается переливать жидкости, содержащие живые клетки микроорганизмов, из одного сосуда в другой; оставлять на столах нефиксированные мазки, открытую посуду с посевами.

По окончании работы все посевы убирают в термостаты и обязательно проводят дезинфекцию рабочих поверхностей столов.

Использованные в работе с инфицированным материалом стеклянные шпатели, пастеровские и градуированные пипетки погружают в емкость с дезинфицирующим раствором. Отработанный заразный материал помещают в специальные закрывающиеся контейнеры и сдают для дальнейшего обеззараживания в автоклавах.

Каждый сотрудник лаборатории должен быть обеспечен индивидуальной рабочей одеждой: медицинскими халатами, сменной обувью, одноразовыми перчатками в соответствии с действующими правилами. До проведения исследований в предбокснике рабочий халат снимают и для работы в боксе надевают новый халат.

Смена рабочей одежды проводится по мере загрязнения, но не реже одного раза в неделю. Перед сдачей в стирку защитную одежду обеззараживают.

В лаборатории необходимо хранить как минимум недельный запас дезинфицирующих средств. Вновь поступающие на склад серии дезинфицирующих средств, следует контролировать на содержание действующего вещества. На емкости с дезинфицирующим раствором должны быть указаны его название, концентрация и дата приготовления.

Автоклавирование проводится персоналом, имеющим свидетельство об окончании специальных курсов.

При возникновении аварийных ситуаций, таких как розлив инфицированного материала, в случае разбивания пробирок и чашек Петри с посевами, а также стеклотары в связи с перепадом температур при работе на автоклаве немедленно прекращают работу с культурами микроорганизмов и ставят в известность руководителя лаборатории. Все открытые части тела обрабатывают дезинфицирующим раствором или 70 % раствором этанола. При попадании инфицированного материала на слизистые оболочки их немедленно обрабатывают: глаза – 1 % раствором борной кислоты, несколькими каплями 1 % раствора азотнокислого серебра или струей воды; в нос закапывают, а рот и горло прополаскивают 0,05 % раствором перманганата калия или 1 % раствором борной кислоты. При аварии, приведшей к повреждениям кожных покровов, перчатки (если работа проводилась в них) обрабатывают дезинфицирующим раствором, снимают их, из ранки выдавливают кровь, руки обрабатывают 70 % раствором этанола, протирают их тампоном не менее 2 мин, затем моют водой с мылом, ранку смазывают раствором йода.

После обеззараживания места аварии защитную одежду замачивают в дезинфицирующем растворе.

Для ликвидации последствий аварии, а также профилактики возможного поражения сотрудников в лаборатории необходимо иметь аптечку для оказания экстренной медицинской помощи, запас дезинфицирующих средств, средства индивидуальной защиты (СИЗ), емкости для замачивания СИЗ, которые хранят в специально отведенном месте.

Аптечка экстренной помощи должна включать 70 % этиловый спирт, раствор йода, сухие навески перманганата калия, нитрата серебра и борной кислоты, которые в случае аварии растворяют в мерном объеме дистиллированной воды для получения требуемых концентраций дезинфицирующих средств, стерильную дистиллированную воду, глазные пипетки, ножницы, перевязочные средства, бактерицидный пластырь.

Лабораторное оборудование

Оборудование, применяемые в лаборатории микробиологии, делят на группы общего и специального назначения. Специальное оборудование применяют при определённых методах исследования: бактериологических, вирусологических, микологических, токсикологических. Оборудование общего назначения используют при разных методах исследования; оно включает микроскопическую технику, устройства для поддержания температуры, аппаратуру для очистки воды, стерилизаторы, центрифуги, pH-метры, приборы для взвешивания.

Термостат

Для выращивания бактерий и грибов, культивирования вирусов, изучения иммунитета и гистологических исследований необходимо выдерживать материал при постоянной температуре. Приборы, которые автоматически поддерживают определенную температуру воздушной или водной среды в рабочей камере, называют термостатами (рисунок 3).

Рисунок 3 – Лабораторный суховоздушный термостат

Стенки прибора для улучшения теплоизолирующих свойств делают двухслойными. Между стенками находятся воздух или вода.

Для сушки и стерилизации лабораторной посуды применяют сушильные шкафы. Сушильный шкаф принципиально устроен так же, как термостаты на 25-60 °С, но приспособлен для создания более высоких температур (200 °С).

Водяные бани и термостаты служат для поддержания определенной температуры водной среды. Во внутренней камере этих приборов находится жидкость, в которую помещают штатив с пробами. Регулировка температуры воды от 30 до 100 °С осуществляется автоматически с помощью контактного термометра, соединенного с электронагревателями. На верхней крышке погружного термостата смонтирован двигатель, приводящий в движение мешалку и насос для перекачки подогретой воды в другие емкости. Поддержание стабильной температуры в открытых емкостях от 25 до 85 °С может быть осуществлено также с помощью погружного термостатирующего устройства УТП-1. Устройство состоит из двух разобщенных блоков: блока нагрева и перемешивания и блока управления.

При отсутствии автоматических нагревающих приборов используют электроплитку, на которую устанавливают металлическую емкость с водой. Пробирки с пробами и пробирку с термометром помещают в металлическую сетку или штатив и погружают в воду. Затем температуру в бане доводят до необходимой величины, следя за показаниями термометра. Температуру поддерживают на определенном уровне, включая или отключая плитку.

Для создания температуры 4-6 °С используют бытовые холодильники. Длительное замораживание материала осуществляют в морозильных камерах бытовых холодильников или в специальных морозильниках, обеспечивающих температуру до -25 °С.

Дистиллятор

Для приготовления питательных сред и растворов реактивов необходимо пользоваться очищенной водой. Одним из распространенных методов очистки, воды является перегонка (дистилляция), которая осуществляется с помощью дистилляторов (рисунок 4).

Рисунок 4 – Дистиллятор лабораторный ДЛ-25

В камере испарения воду нагревают до кипения. Образовавшийся пар поступает в конденсатор, который охлаждается водопроводной водой, непрерывно протекающей между стенкой конденсатора и наружным стальным кожухом прибора. Сконденсированный пар в виде дистиллята вытекает через ниппель. В верхней части испарительной камеры находятся отражательные, экраны, сепарирующие пар и обеспечивающие чистоту дистиллята. По мере выкипания воды в камере через вентиль поступают новые порции водопроводной воды, уровень которой поддерживается уравнителем.

При вирусологических и других исследованиях требуется вода с определенными физико-химическими свойствами. В таких случаях применяют повторную дистилляцию или пропускают воду через ионообменники. Для двукратной перегонки воды используют бидистилляторы БД-2 и БД-4.

Автоклав

При проведении микробиологических исследований необходимо приготовить стерильные питательные среды, растворы реактивов, посуду и т.д. Широко распространенным методом стерилизации является автоклавирование. Стерилизация в автоклаве осуществляется с помощью нагретого пара под давлением (рисунок 5).

Рисунок 5 – Стерилизатор паровой (автоклав) ГК-100-3

Стерилизатор может быть настольный (рисунок 6).

Рисунок 6 – Настольный стерилизатор (автоклав) TNP-88 М

Материал в металлических биксах или сетках загружают в стерилизационную камеру, которая сообщается с водопаровой камерой. Обе камеры герметически изолированы от атмосферного воздуха при помощи крышки. В водопаровую камеру заливают дистиллированную воду и после герметизации автоклава нагревают ее с помощью электронагревательных элементов. По достижении необходимого давления пара им заполняют стерилизационную камеру, вытесняя из нее воздух. По окончании продувки вентиль закрывают, и давление повышают до требуемой величины, определяемой по манометру. По окончании стерилизации перекрывают сообщение междуводопаровой и стерилизационными камерами, выпускают пар и конденсат и специальным приемом подсушивают материал под вакуумом. Затем давление в камере уравнивают с атмосферным и автоклав разгружают.

Шприцы и инструменты стерилизуют кипячением в электрических стерилизаторах, которые представляют собой оборудованные электрическим подогревом металлические ванны с крышкой.

Бактерицидный облучатель.

Для стерилизации воздуха и поверхности предметов в помещениях лаборатории применяют стационарные и переносные облучатели (рисунок 7).

Рисунок 7 – Бактерицидные облучатели (а – стационарный, б – переносной)

Стерилизацию (необратимые изменения микробных клеток, а затем их гибель) осуществляют с помощью ультрафиолетовых лучей (УФЛ), излучаемых бактерицидной лампой, укрепленной в штативе и соединенной с электропитающим устройством. Стационарный бактерицидный облучатель устанавливается на потолке или стене. Передвижной облучатель позволяет устанавливать необходимое расстояние от лампы до объекта, так как лампа с рефлектором подвижно закреплена на вертикальной стойке.

Центрифуга

Для разделения частиц и отделения их от растворителя при обработке патологического материала и культур возбудителей применяют центрифугирование (рисунок 8).

Рисунок 8 – Центрифуга лабораторная настольная ЦЛМН-Р 10-01

Принцип работы центрифуги заключается в том, что при вращении пробирок с материалом возникает центробежная сила, отбрасывающая частицы с большей плотностью, чем жидкость, на дно пробирки. Существует большое количество типов и моделей центрифуг. В микробиологии используют центрифуги с нерегулируемым температурным режимом, рефрижераторные центрифуги и ультрацентрифуги.

Все приборы имеют ряд общих элементов: вращающееся приспособление с гнездами для проб (ротор), электродвигатель, регулятор скорости вращения ротора и кожух с крышкой.

Кроме всего прочего в микробиологической лаборатории используют торсионные весы для взвешивания сухих сред и химических веществ, используемых для исследования, а также используют магнитные мешалки для приготовления растворов и рН-метр для определения активной реакции среды получаемых растворов (рисунок 9).

Рисунок 9 – Торсионные весы (слева); магнитная мешалка (справа): рН-метр (на переднем плане)

Для просмотра колоний бактерий, выросших на питательной среде в чашках Петри, используют специальную настольную лупу с подсветкой (рисунок 10).

Как организовать дистанционное обучение во время карантина?

Конспект открытого урока на тему:

Цель : Обобщить и систематизировать знания учащихся о многообразии гельминтозов и необходимости соблюдать правила личной гигиены для защиты от заражения паразитическими червями.

формировать умения формулировать проблему, выдвигать гипотезы, искать необходимую информацию, использовать её для решения практических задач, анализировать, сравнивать, устанавливать причинно-следственные связи, учить читать схемы, диаграммы, делать выводы;

учить ставить перед собой цель, планировать свою деятельность;

развивать умение работать в сотрудничестве с учителем и сверстниками, умение работать в группе, паре, принимать решения, умение с достаточной полнотой и точностью выражать свои мысли;

развивать умение использовать полученные знания в жизни.

Технология урока: кейс-метод (кейс-стади)

- анализировать состояние проблемы в данный момент;

- устанавливать связь между проблемой и необходимостью ее решения;

- осознавать личную ответственность за состояние собственного здоровья;

- использовать естественнонаучные тексты с целью поиска и извлечения

значимой информации для ответа на вопросы.

Побуждение учащихся к активной, интенсивной деятельности в ходе урока осуществляется через использование такой формы коллективной деятельности, как групповая работа.

Работа в группах преследует следующие цели :

Самостоятельное и правильное распределение ролей при выполнении задания;

Умение сотрудничать в различном качестве – руководителя группы или исполнителя;

Умение общаться друг с другом, устанавливать и поддерживать деловые взаимоотношения;

Умение вести дискуссию, высказываться и слушать других, доказывать свою правоту.

Приблизится к изучаемой проблеме вместе, независимо от назначенной роли.

Такая форма организации деятельности учащихся на уроке направлена на формирование Универсальных Учебных Действий (УУД).

Личностные УУД обеспечивают ценностно-смысловую ориентацию учащихся, их ориентацию в социальных ролях и межличностных отношениях;

Регулятивные УУД позволяют учащимся организовать свою учебную деятельность: совместно планировать учебную деятельность, воспринимать и уяснять информацию, обсуждать, осуществлять взаимный контроль.

Познавательные УУД предполагают умение сформулировать проблему, самостоятельно создать алгоритм деятельности при решении проблем творческого и поискового характера, а так же поиск и выделение необходимой информации.

Коммуникативные УУД обеспечивают социальную компетентность и учет позиции других людей, партнеров по деятельности; умение слушать и вступать в диалог; участвовать в коллективном обсуждении проблемы ; интегрироваться в группу сверстников и строить продуктивное взаимодействие и сотрудничество со сверстниками и взрослыми.

Содержание кейса к уроку:

Фото. Малыши играют в песочнице (для постановки проблемы);

Фото. Внешний вид гельминта (конкретно для каждой группы);

Схема. Цикл развития гельминта (конкретно для каждой группы);

Терминология по теме;

Раздаточный материал (карточки для заполнения);

1. Создание проблемной ситуации

Учащиеся высказывают свои предположения. Результатом обсуждения должен стать вывод, что играя в песочнице, дети могут заразиться гельминтами, т.к. детская площадка посещается животными (кошками и собаками), которые используют ее в качестве туалета.

Таким образом – проблема ГЕЛЬМИНТЫ .

Какими гельминтами можно заразиться, играя в песочнице?

2. Поиск путей решения данной проблемы

1 . Состояние проблемы

в городе Полевской

2. Цикл развития гельминта

2. Приспособления к паразитизму

4. Как уберечь себя от заражения?

Посмотрите на схему и сформулируйте тему урока!

Тема урока : Как уберечь себя от заражения гельминтами.

3. Анализ состояния проблемы.

С чего начать решение проблемы? Сразу с многообразия паразитических червей? Но в мире существует огромное количество гельминтов опасных для человека и потребуется много сил и времени, чтобы поговорить обо всех.

Учащимся предлагается сузить поиск и приблизить проблему к себе. Для этого им предлагается проанализировать два текста:

Данный этап работы позволяет сделать вывод, что решение проблемы необходимо начинать с анализа ситуации по гельминтозам в своем городе. Из текста учащиеся узнают о том, то в городе Полевской существует реальная опасность заражения пятью видами гельминтозов: энтеробиозом, аскаридозом, токсокарозом, описторхозом, тениозом.

Какие гельминты вызывают данные заболевания, учащиеся ответить не могут. Следовательно, необходимо обратиться к содержимому кейса для поиска необходимой информации.

4. Этап исследования.

Начинается работа в группах. Каждая группа получает индивидуальное задание и кейс с материалами для исследования. Фотографии паразита и схему его цикл развития учащиеся могут посмотреть на компьютере, который есть у каждой группы. Содержание кейса представлено в виде печатных материалов и в компьютерном варианте.

В результате анализа и обсуждения группа находит необходимую информацию по предложенному плану.

- Какой паразитический червь является возбудителем заданного

- Какой организм выступает в роли основного хозяина?

- Какой организм является промежуточным хозяином?

- Что является основным источником заражения данным видом

5. Этап обмена информацией.

Каждая группа представляет результат своего исследования. На доске размещены названия гельминтозов. Необходимо прикрепить листы с ответами под соответствующим названием. При этом группа комментирует результаты своей поисковой работы.