Туберкулез бруцеллез сап у животных

Бруцеллез животных – симптомы, серологическая диагностика, изменения во внутренних органах. Эпизоотологические данные, дифференциальный диагноз, профилактика заболевания и меры борьбы.

Бруцеллез животных

Болезнь Бруцеллез – хроническое инфекционное заболевание с латентным течением, особенно опасное для пушных зверей в период размножения. Возбудители Br. abortus, Вг. melitensis. Попадают они в организм зверей с мясными кормами из неблагополучных по бруцеллезу животноводческих ферм.

К бруцеллезу восприимчивы все домашние и многие виды диких животных. Из пушных зверей при клеточном содержании бруцеллезом болеют серебристо-черные лисицы, песцы и норки. Восприимчивы взрослые и молодые животные. Человек также болеет бруцеллезом. Резервуаром инфекции могут быть аргасовые и иксодовые клещи .

Бруцеллы долгое время сохраняются живыми в молоке, молочных продуктах, мясе, воде, почве, навозе и пыли. Заражение происходит именно через эти объекты. Самыми опасными являются ткани и жидкости, выделяемые из организма самок во время абортов, и плоды.

Патогенез бруцеллеза пушных зверей изучен не полностью. Поскольку доказано, что пушные звери спонтанно заражаются бруцеллезом, поедая мясные корма от больных сельскохозяйственных животных, можно предположить, что бруцеллы, попадая в желудочно-кишечный тракт, с лимфой и кровью разносятся по всему организму. Доказательством этого является выделение культуры бруцелл и обнаружение выраженных микроскопических изменений в паренхиматозных органах и лимфатических узлах, которые особенно характерны у норок.

Течение болезни в основном зависит от времени заражения зверей. При заражении животных в периоды гона и беременности может наблюдаться большой процент стерильности самок; повышенный падеж новорожденных щенков. В другое же время болезнь протекает латентно и может быть незамеченной.

При парентеральном введении бруцелл серебристо-черным лисицам инкубационный период болезни равен 4 – 5 дням. Для пушных зверей характерно латентное течение болезни, поэтому абортам, протекающим без последующих осложнений, часто не придают значения, а их возникновение объясняют другими причинами.

Ведущей формой бруцеллеза у зверей, так же как и у целого ряда других животных, является генитальная. Больные бруцеллезом звери остаются холостыми, пустыми, наблюдаются аборты и рождение нежизнеспособных щенков. У таких животных отмечено отсутствие аппетита, в отдельных случаях появление гнойных конъюнктивитов , которые через 1 – 2 недели проходят без лечения.

Бруцеллез у серебристо-черных лисиц протекает без повышения температуры тела и изменений частоты пульса и дыхания. В крови число эритроцитов снижается до 5 – 6 млн на длительный период времени, иногда снижается содержание гемоглобина и наблюдается кратковременный лейкоцитоз . Анализ лейкоцитарной формулы показывает слабо выраженную защитную реакцию.

Норки в период покоя также не проявляют каких-либо заметных клинических признаков болезни. Во время щенения норок устанавливают повышенное количество пустых самок, аборты и гибель новорожденных щенков в первые дни жизни.

Изменения во внутренних органах у пушных зверей при бруцеллезе выражены слабо и не специфичны. На вскрытии у серебристо-черных лисиц наблюдается увеличение селезенки и вилочковой железы, полнокровность печени, кровоизлияния на вилочковой железе и почках. Регионарные лимфатические узлы нередко увеличены, иногда гиперемированы . В отдельных случаях на почках отмечаются мелкие беловатые узелки.

У норок изменения выражены более четко. Селезенка темно-вишневого цвета, набухшая, с гладкой блестящей поверхностью, очень часто увеличена в 4 – 5 раз. Лимфатические узлы также увеличены, сочные, слабо гиперемированы или пигментированы.

У песцов отмечается только резкое увеличение лимфатических узлов. Остальные органы видимых изменений не имеют.

Поставить диагноз на бруцеллез у животных довольно трудно, так как специфические симптомы болезни отсутствуют; патологоанатомические изменения слабо выражены; бактериологические исследования требуют длительного времени (30 – 40 дней) и не всегда результативны. Лучшим методом прижизненной диагностики бруцеллеза является серологический . Кровь зверей можно исследовать по реакции агглютинации (РА) и реакции связывания комплемента (РСК). Наряду с длительной РА хорошие результаты дает капельная РА на стекле.

У крупных зверей кровь для серологических реакций берут из бедренной вены или вены ушной раковины, а у норок из мякиша пальца задней лапки или кончика хвоста. Во избежание гемолиза эритроцитов от крови в день ее взятия необходимо отделить сыворотку.

Чаще удается выделить бруцелл при постановке биопробы на беременных морских свинках или белых мышах. От павших норок иногда можно выделить бруцелл непосредственно из органов. Пушные звери, по-видимому, быстро освобождаются от возбудителя, так как через год после заражения выделить бруцелл не удается даже с помощью биопробы.

Бруцеллез у животных следует дифференцировать от паратифа . Делают это на основании результатов бактериологического исследования. Возбудителя паратифа постоянно обнаруживают в крови больных зверей и во всех органах павших животных. При паратифе, кроме того, хорошо выражены патологоанатомические изменения, свойственные этой болезни.

Большое значение имеет профилактика инфекционной болезни и особенно антропозоонозной , наносящей ущерб не только экономике звероводства, но также и здоровью людей. Распространение бруцеллеза происходит главным образом во время абортов и с больными животными. Ветеринарно-санитарные мероприятия нужно направлять на недопущение заноса бруцеллезной инфекции в звероводческие хозяйства.

Особое внимание стоит обращать на особый контроль мясных и молочных кормов. Все подозреваемые в инфицировании бруцеллами корма скармливают животным тщательно проваренными. В зверохозяйствах Севера необходимо учитывать, что бруцеллез у оленей протекает бессимптомно, поэтому использовать в корм зверям мясо вынужденно убитых после абортов или неблагополучных отелов оленей можно только в вареном виде.

Клетки, в которых находились больные бруцеллезом звери, дезинфицируют 1 – 3% раствором фенола, 1 – 2% раствором формалина. Почву обрабатывают 5 % раствором свежегашеной извести или хлорной известью, содержащей 4 – 5% активного хлора. Одежду кипятят в 2 % растворе соды или замачивают на 3 часа в 1 % хлорамине.

Выполнение перечисленных мероприятий будет способствовать оздоровлению хозяйства без наложения каких-либо дальнейших ограничительных мер.

Бруцеллез (Brucellosis) — инфекционная, хронически протекающая болезнь домашних, некоторые виды диких животных и человека, характеризующаяся поражением многих систем жизнеобеспечения, нарушением функций сосудистой, пищеварительной, мочеполовой систем и системы воспроизводства.

Изучая причины мальтийской лихорадки, английский врач Д. Брюс в 1886 – 1887 гг. установил, что виновником ее является специфический микрококк, названный им Micrococcus melitensis. Дальнейшие исследования показали, что источником возбудителя мальтийской лихорадки являются козы, пораженные инфекцией, а причиной заражения людей — потребление молока от таких коз. Несколько позже Micrococcus melitensis был выделен у овец.

В1897 г. датские ученые Банг и Стриболд установили, что массовые аборты у коров вызывает микроорганизм, названные B. abortus bovis. В 1914 г. Траум обнаружил очень сходный микроорганизм, названный Br. abortus suis, при массовых абортах у свиней.

Для диагностики бруцеллеза в 1897 г. Райтом была предложена серологическая реакция агглютинации, а в 1922 г. Берне разработал внутрикожную аллергическую пробу, облегчающую распознавание болезни.

Долгое время мальтийская лихорадка у людей и массовые аборты у домашних животных считались самостоятельными заболеваниями. В 1918 – 1920 гг. Ивенс, Мейер и Фезье, изучая биологические свойства возбудителя мальтийской лихорадки и массовых абортов у крупного рогатого скота, обнаружили их чрезвычайную близость. Эти исследования явились основанием объединить указанных возбудителей, в том числе и возбудителя массовых абортов у свиней, в одну родовую группу под наименованием Brucella (в честь Брюса), а вызываемые ими заболевания именовать бруцеллезом.

В России начало изучения бруцеллеза было положено работами Е. И. Марциновского (1911), но детальному изучению заболевание подверглось в различных местностях СССР лишь с 1935 г. Большой вклад в изучение бруцеллеза сельскохозяйственных животных внесли отечественные ученые: С. Н. Вышелесский, П. Ф. Здродовский, П. А. Вершилова, М. К. Юсковец, Е. С. Орлов, Р. А. Цион, А. П. Бессонов и др. Были всесторонне изучены биологические свойства возбудителя, усовершенствованы методы диагностики, показаны значение в борьбе с бруцеллезом вакцинальной профилактики и пути ее совершенствования.

Клинические признаки бруцеллеза у крупного рогатого скота

Длительность инкубационного периода 2 – 3 недели. Первым показателем развившегося инфекционного процесса служит появление в крови инфицированных животных агглютининов в постепенно нарастающих титрах.

У коров основным клиническим признаком бруцеллеза является аборт и реже рождение нежизнеспособного приплода. Коровы, заразившиеся до покрытия, в большинстве случаев приносят нормальный приплод. Аборт чаще всего происходит на 5 – 8-м месяце. За 1 – 2 дня до наступления аборта у коров отмечается припухание наружных половых органов, выделение из влагалища бесцветной или буроватой жидкости и набухание вымени. После аборта происходит задержка последа и развивается эндометрит, сопровождающийся обильными слизисто-гнойными или гнойно-фибринозными выделениями. При тяжело протекающем эндометрите повышается температура тела, снижаются удои, отмечается потеря веса, убыстряется СОЭ; умеренный лейкоцитоз. Эндометритам нередко сопутствуют серозные или серозно-катаральные маститы. В процессе могут вовлекаться яичники и фаллопиевы трубы, что приводит к нарушению полового цикла и временному или стойкому бесплодию.

У отдельных животных в связи с абортом или независимо от него можно наблюдать развитие серозных бурситов или серофибринозных артритов. Последние в большинстве случаев возникают в суставах передних конечностей — запястном, путовом, коленном, локтевом. У быков бруцеллез, хотя и редко, сопровождается развитием орхитов и эпидидимитов.

Лабораторная диагностика бруцеллеза основана на результатах бактериологического и серологического исследований. Бактериологическое исследование в основном применяют при первичной постановке диагноза на бруцеллез в ранее благополучных хозяйствах.

В лабораторию направляются пробы крови (сыворотки) для серологического исследования, абортивный плод с плодными оболочками, околоплодную жидкость, истечения из родовых путей или желудок плода, кусочки печени, селезенки, пробы молока (последние порции). При убое животных берут паренхиматозные органы, лимфатические узлы, пораженные суставы, у самцов — семенники. Объектом исследования могут быть молочные продукты (брынза, сыр, масло), объекты внешней среды.

При массовых диагностических исследованиях ставят пробирочную РА, роз бенгал пробу (РА на стекле), РСК, РДСК, кольцевую реакцию с молоком (КР). Диагностикумы для этих исследований, а также бруцеллин ВИЭВ для аллергической диагностики готовятся на Щелковском биокомбинате.

По данным К. В. Шумилова до 1952 года борьба с бруцеллезом крупного рогатого скота в нашей стране сводилась к проведению диагностических исследований и удалению из стад больных животных, без применения противобруцеллезных вакцин. В связи с осложнением эпизоотической ситуации в 1953 году в систему противобруцеллезных мероприятий была включена иммунизация животных вакциной из штамма B. abortus 19.

Вакцину из штамма B. abortus 19 применяли до 1970 года. За 20 лет применения вакцины многие хозяйства, даже области, были оздоровлены от болезни. Однако в регионах с широким распространением бруцеллеза эффективность оздоровительных мероприятий оказалась низкой. В первую очередь, это было обусловлено высокой агглютиногенностью вакцины. Агглютинины и комплементсвязывающие антитела, вырабатывающиеся в ответ на введение вакцины, сохраняются в организме животных до 5 – 8 лет и затрудняют дифференциацию иммунизированных животных от больных бруцеллезом.

С 1971 по 1974 год вакцину из штамма B. abortus 19 использовали только на телках 5 – 8 месячного возраста. С 1974 года и по настоящее время в России в комплексе противобруцеллезных мероприятий применяются вакцины из штаммов B. abortus 82 и 19. Живая сухая вакцина против бруцеллеза из слабоагглютиногенного штамма № 82 отличается от вакцины из штамма 19 слабым серологическим ответом с быстрым снижением уровня гуморальных антител, что позволяет при помощи серологических реакций дифференцировать вакцинированных животных.

За 30 лет работы с применением вакцины из штамма B. abortus 82 и смены пяти поколений коров к 2004 году (К. В. Шумилов) количество неблагополучных по бруцеллезу пунктов и заболевших животных значительно сократилось.

Сухая живая вакцина против бруцеллеза крупного рогатого скота из штамма B. abortus 75/79-АВ разработана сотрудниками ВГНКИ и Алтайской НИВС с использованием культуры штамма 75/79, выделенного от коровы, ранее иммунизированной вакциной из штамма B. abortus 82. После многократных пассажей выделенного штамма через организм морских свинок и телок и целенаправленной селекции на питательных средах, был получен новый вакцинный штамм 75/79-АВ. Вакцины не обладает абортогенными свойствами, что дает возможность проводить иммунизацию маточного поголовья независимо от сроков стельности. Вакцина является слабоагглютиногенной; агглютинины и комплементсвязывающие антитела регистрируются у привитых животных в течение трех месяцев после иммунизации, что делает возможным их исследование по истечении указанного срока. У животных, иммунизированных вакциной, выраженный иммунитет сохраняется в течение года, что позволяет за указанный срок оздоравливать неблагополучные хозяйства от бруцеллеза.

Штамм B. abortus КВ 17/100, находящийся в R-форме, получен путем целенаправленной селекции по культуральным, морфологическим, биохимическим и антигенным свойствам из вакцинного штамма B. abortus 104М, находящегося в S-форме. Адъювант-вакцина не индуцирует синтез S-бруцеллезных антител в диагностических титрах у животных, не сенсибилизированных бруцеллами. Адъювант-вакцина индуцирует синтез S-бруцеллезных антител у крупного рогатого скота с латентной формой бруцеллеза, что позволяет за счет быстрого удаления из стад таких животных, ускорить оздоровление хозяйств, неблагополучных по бруцеллезу.

Адъювант-вакцина не абортогенна и может быть использована для иммунизации маточного поголовья крупного рогатого скота независимо от сроков стельности.

Бруцеллез животных

Информация о документе
Дата добавления:
Размер:
Доступные форматы для скачивания:

35. Провести аллергическую диагностику инфекционных заболеваний у разных видов животных (туберкулез, сап и т.п.) проведите иммунизацию животных (активную, пассивную, смешанную). Объясните, в каких случаях и почему целесообразно выбирать тот или иной вид иммунизации.

Аллергическая диагностика -диагностика инфекционных и инвазионных болезней с помощью реакций, выявляющих повышенную чувствительность клеток и тканей организма к специфическим инфекционным аллергенам. На введение аллергена (в кожу, под кожу, на слизистые оболочки) инфицированный организм отвечает аллергической реакцией, которая протекает как местное (гиперемия, отёк, болезненность) или общее (угнетение, повышение температуры тела, учащение дыхания, нарушение сердечной деятельности) явление. Введение аллергена в неинфицированный организм не вызывает таких реакций. Практическая ценность Аллергическая диагностика заключается в высокой чувствительности и специфичности, а также простоте её выполнения; она позволяет выявлять инфицированных животных при отсутствии клинически выраженных признаков болезни. Аллергическая диагностика применяют при сапе, туберкулёзе, бруцеллёзе, паратуберкулёзном энтерите, туляремии, эпизоотическом лимфангите, токсоплазмозе, эхинококкозе.

Для аллергической диагностики сапа применяют маллеиновую пробу (глазную, подкожную и внутрикожную).

Глазную пробу считают основным методом диагностики сапа у лошадей (верблюдам аллерген вводят внутривенно). Пробу выполняют двукратно с промежутком 5…6 дней. На конъюнктиву здорового глаза утром наносят 3…4 капли маллеина. Реакцию учитывают через 3, 6, 9 и 24 ч.

Офтальмопробу считают положительной при развитии гнойного конъюнктивита. Конъюнктива интенсивно краснеет, набухает. Веки припухшие, глаз закрыт. В глазной щели, по краям нижнего века, появляется шнурок гноя, спускающийся с внутреннего угла глаза (рис. 14). Наряду с этим у некоторых лошадей отмечают се-

Розно-гнойное истечение из ноздри. Реакцию считают сомнительной при интенсивном покраснении конъюнктивы, припухлости век и слезотечении. Во внутреннем углу глаза появляется незначительное количество (капля) гноя. При отрицательном результате офтальмопробы глаз остается нормальным или обнаруживают легкое покраснение конъюнктивы и слезотечение. В случае сомнительной реакции пробу повторяют через 5…6дней, нанося аллерген на конъюнктиву того же глаза. Повторная реакция проявляется через 2…5 ч и обычно бывает более резко.

Подкожную пробу применяют при заболевании глаз, а также при неясных показаниях глазной пробы. За 1 сут до введения маллеина у лошади определяют среднесуточную температуру тела, которая не должна превышать 38,5 °С.

Для удобства наблюдения за температурной реакцией 1 мл маллеина вводят вечером (в 22…24 ч) в подкожную клетчатку в области подгрудка или шеи. Температуру тела начинают измерять на другой день: в 6 ч утра, т. е. через 6…8 ч после введения препарата, затем каждые 2 ч до 20 ч и, наконец, через 24 и 36 ч после введения аллергена. Исследуемую лошадь в течение 20 ч запрещается поить холодной водой. Реакцию считают положительной, если отмечен типичный подъем температуры до 40 °С и выше.

Внутрикожную пробу применяют в основном для полудиких табунных лошадей. Маллеин вводят в области шеи в дозе 0,2 мл. Реакцию учитывают через 48 ч. Пробу считают положительной, если на месте введения маллеина развивается строго очерченная, горячая, болезненная припухлость тестоватой консистенции размером 2х 3,5 см и больше.

Внутрикожная туберкулинизация приобрела весьма ценные свойства, связанные с выявлением больных животных, сенсибилизированных многими возбудителями инфекционной и инвазионной этиологии, внешними и внутренними физиологическими, физическими и химическими факторами.

Способ включает выявление туберкулиновой пробой в хозяйствах и дворах плановыми аллергическими исследованиями реагирующих животных. У положительно реагирующих на туберкулин животных проводят гематологические туберкулиновые исследования реакцией специфического лизиса лейкоцитов с использованием в качестве диагностикумов туберкулинов ППД для млекопитающих, ППД для птиц, КАМ и других аллергенов, приготовленных из инфекционных и инвазионных возбудителей.

Способ позволяет провести дифференциацию специфических и неспецифических (вызванных агентами нетуберкулезной природы) реакций на туберкулиновую внутрикожную пробу и диагностировать туберкулез на ранней стадии заболевания, а так же определить заразные агенты нетуберкулезной природы, вызвавшие аллергическое состояние организма животных и сенсибилизацию к внутрикожному введению туберкулина.

Широко распространенным и относительно простым методом иммунодиагностики туберкулеза крупного рогатого скота является внутрикожная аллергическая проба с туберкулином для млекопитающих. Туберкулин избавлен от балластных веществ, качественно изготовлен из микобактерий туберкулеза и стандартизирован.

Лабораторная аллергическая диагностика позволяет многократно брать от животного кровь для исследования на туберкулез, без инъекций туберкулина, и тем самым исключить сенсибилизацию. Она устраняет необходимость необоснованного убоя животных с положительными реакциями на внутрикожную туберкулинизацию, так как возможно несколько раз переисследовать, в том числе и комиссионно, кровь с несколькими аллергенами, и выяснить этиологический фактор, вызвавший повышенную чувствительность к внутрикожной инъекции туберкулина.

Иммунопрофилактика инфекционных болезней (далее иммунопрофилактика) - предупреждение определенных инфекционных болезней путем проведения иммунизации животных для создания у них искусственного иммунитета.

Иммунизация животных (проведение профилактических прививок) имеет наиболее важное значение в системе специфической профилактики инфекционных болезней собак и кошек, поэтому необходимо рассмотреть более подробно это направление.

Различают три вида иммунизации : активную, пассивную и пассивно-активную.

Активная иммунизация - метод создания активного искусственного иммунитета путем введения в организм вакцин и (или) анатоксинов. В зависимости от вида используемых вакцин активная иммунизация подразделяется на простую (раздельную) и комплексную. Для простой иммунизации применяют только моновакцины (Вакчум, Мультикан-1, Рабизин и др.). При комплексной активной иммунизации, когда необходимо сформировать у животных иммунитет в короткий срок против двух и более болезней, используют одновременное или последовательное введение нескольких моновакцин. Однако в последние годы для активной иммунизации собак и кошек применяют в основном ассоциированные вакцины против 3-5 и более болезней.

Пассивная иммунизация - метод создания пассивного искусственного иммунитета посредством введения в организм определенных антител, содержащихся в иммунных сыворотках, иммуноглобулинах, иммунолактонах. Пассивная иммунизация, так же как и активная, делится на простую и комплексную. Для простой пассивной иммунизации используют моносыворотки, а для комплексной иммунизации - поливалентные сыворотки иммунных животных и (или) иммуноглобулины: Витакан-С (сыворотка поливалентная против чумы, парвовирусного энтерита и аденовирусных инфекций плотоядных), Витафел-С (сыворотка специфическая против панлейкопении, инфекционного ринотрахеита и калицивироза кошек), Глобкан-5 (иммуноглобулины против чумы, парвовирусного, коронавирусного энтеритов и аденовирусных инфекций собак) и др. Пассивную иммунизацию широко применяют как с профилактической, так и с лечебной целью для создания экстренного, немедленного иммунитета. Например, при вынужденной пассивной иммунизации животных в эпизоотическом очаге иммунизируют явно больных и подозрительных по заболеванию животных, а в отдельных случаях и животных, подозреваемых в заражении. Кроме того, этот метод используют для иммунизации животных, особенно щенят и котят, при их иммунологической недостаточности или при неизвестном иммунном статусе (см. примерные схемы иммунизации собак и кошек). Однако следует учитывать, что повторное введение иммунных гетерологичных сывороток или гаммаглобулинов, полученных от животных других видов, может вызывать анафилаксию (анафилактический шок). В связи с этим необходимо проводить предварительную десенсибилизацию организма животных перед повторным введением указанных биопрепаратов.

Пассивно-активная иммунизация - комбинированный (смешанный) метод создания искусственного пассивно-активного иммунитета, основанный на введении в организм сыворотки и соответствующей вакцины одновременно (симультанно) или последовательно: вначале вводят сыворотку, а затем вакцину. Этот метод, так же как и пассивная иммунизация, применяется для создания немедленного иммунитета у животных с ослабленной иммунной системой (иммунологической недостаточностью) для предупреждения и смягчения сильной реакции на вакцины, особенно на живые ассоциированные вакцины. Кроме того, пассивно-активную иммунизацию используют при вакцинации животных, подозреваемых в заражении.

36. Проведите отбор патологического материала для бактериологического, вирусологического, гистологического исследования при инфекционных заболеваниях.

При подозрении на инфекционные болезни или при первичном установлении болезни необходимо направлять материал в лабораторию для подтверждения диагноза. Если хозяйство стационарно по заболеванию, материал направляется в лабораторию для контроля. В одних случаях достаточно проведения бактериологического исследования (рожа и др.), в других - гистологического (бешенство и др.). В ряде заболеваний(туберкулез, сальмонеллез и др.) желательно провести оба исследования.

При наличии нескольких трупов поросят, подсвинков целесообразно направить в лабораторию 2-3 свежих трупа, а от взрослых свиней - внутренние органы. В противном случае отправляют отдельные органы, не консервируя их, по возможности - из свежих трупов, в крайнем случае - в 30-процентном растворе глицерина. Следует рекомендовать пересылку проб в замороженном состоянии, а также применять сухой лед - в случаях срочной отправки в теплое время года незамороженных органов или плодов.

Для бактериологического (вирусологического) исследования необходимо пересылать:

- на рожу - трубчатую кость, почку;

- на сальмонеллез - часть печени с желчным пузырем, селезенку, брыжеечные лимфатические узлы, трубчатую кость;

- на пастереллёз - часть легкого с лимфатическими узлами, селезенку, сердце и трубчатую кость;

- на сибирскую язву - заглоточные, подчелюстные лимфатические узлы, участки отечной соединительной ткани;

- на бруцеллез - абортированный плод с плодными оболочками, в крайнем случае слизь и другие выделения матки абортировавшей свиньи; от убитых свиней - паренхиматозные органы, мезентериальные лимфатические узлы;

- на туберкулез - части измененных органов и регионарных лимфатических узлов с необызвествленными очагами;

- на лептоспироз - части печени, почки, нитратную кровь, ликвор, мочу;

- на ящур - невскрывшиеся афты (для определения типа ящурного вируса);

- на болезнь Ауески - голову (головной мозг), части селезенки, печени, легкого;

- на оспу-оспенные поражения, части пораженной кожи;

- на чуму - паренхиматозные органы, бронхиальные, мезентериальные лимфатические узлы (для исключения бактериальной инфекции);

- на листериоз - паренхиматозные органы, головной мозг;

- на некробактериоз - куски пораженных органов;

- на болезнь Ауески (для постановки биологической пробы) - головной мозг, часть легкого;

- на микоплазмоз- пораженную часть легкого;

- на актиномикоз - части пораженных органов с узлами.

Из несвежих трупов обязательно брать трубчатую кость.

Для гистологического исследования необходимо соответствующим образом взять материал и правильно его зафиксировать. При этом следует учитывать анатомо-гистологическое строение органов. Вырезая кусочки, нужно брать во внимание характер специфических изменений для той или иной болезни. Для исследования берут кусочки толщиной 0,5 - 1 см с площади примерно 1 кв. см, их вырезают на границе пораженной и неизмененной ткани. Взятые кусочки надлежит по возможности быстрее фиксировать, не промывая их. Фиксацию проводят в чистой стеклянной посуде в 10-15-процентном растворе формалина, т.е. берут 10 или 15 частей продажного формалина и объем доводят до 100 частей водой. При низких температурах материал лучше фиксировать в 10-процентном растворе формалина, приготовленном на 70° спирте. Количество любой фиксирующей жидкости должно превышать объем взятых кусочков в 10-15 раз.

Для гистологического исследования необходимо пересылать:

- на туберкулез - пораженную часть органов и регионарные лимфатические узлы;

- на сальмонеллез - печень;

- на лептоспироз - печень, почку, взятые не позднее 30 минут после смерти животного;

- на болезнь Ауески - продолговатый мозг и четверохолмие;

- на болезнь Тешена - поясничную часть спинного мозга, серое вещество головного мозга (базальная часть);

- на оспу - пораженные участки кожи;

- на микоплазмоз - пораженные части легких;

- на бруцеллез - пораженные органы с узелками;

- на актиномикоз - пораженные органы с узелками.

При пересылке патологического материала на любой вид лабораторного исследования необходимо направлять сопроводительную . В сопроводительной указать: кто и куда направляет материал, из какого хозяйства, какой материал, количество банок и вид исследования.

Сообщают краткие клинические и патологоанатомические данные, желательно направлять протокол вскрытия.

37. Проанализируйте, соответствуют ли нормам условия хранения, утилизации биопрепаратов в хозяйстве или клинике. Чтобы вы могли предложить для устранения имеющихся недостатках (если таковые имеются).

Биопрепараты – препараты биологического происхождения, предназначенные для диагностики, профилактики и лечения инфекционных болезней животных и людей, а также повышения продуктивности животных.

Биопрепараты классифицируют следующим образом:

профилактические: вакцины, сыворотки-глобулины, интерферон;

лечебные: сыворотки-глобулины, бактериофаги, антибиотики, пробиотики;

диагностические: сыворотки, антигены, аллергены, бактериофаги, моноклональные антитела;

стимулирующие: иммуностимуляторы, кормовые антибиотики, гормоны, витамины.

Транспортировка и хранение биопрепаратов. Качество биопрепаратов снижают промерзание, высокая температура, высокая влажность, солнечный свет. Поэтому биопрепараты нужно транспортировать и хранить в соответствующих условиях. Очень жёсткие требования предъявляют к транспортировке и хранению живых (особенно жидких) вакцин.

Биопрепараты хранят в сухих темных прохладных помещениях оснащенных холодильными установками, или в холодильных камеpах при температуре от 2 до 8. 10°С (в условиях хозяйств или ветлечебниц можно использовать холодные подвалы). Помещения запирают и опечатывают и ключ хранят у ответственного лица (зав. аптекой) Обязательно ведут журнал учета и расхода препаратов. Для каждого препарата оборудуют отдельное место. Сухие биопрепараты можно хранить при температуре ниже 0°С градусов (замораживание не опасно), так как в них практически нет свободной влаги. При этом не допустимо нарушение целостности посуды и попадание в содержимое влаги.

Жидкие препараты, особенно вакцины и антигены, нельзя замораживать и оттаивать, тем более многократно, так как после оттаивания изменяются их физико-химические свойства, разрушается антиген (особенно корпускулярный).

Запрещено совместно хранить годные и выбракованные препараты.

Оценка биопрепаратов перед использованием . Ветеринарный врач должен предварительно оценить пригодность биопрепаратов. Нельзя использовать препараты в следующих случаях:

отсутствует этикетка (надпись на флаконе) или она не ясна, а также не указан номер, серия или контроль;

отсутствует наставление по применению препарата;

нарушена укупорка флакона и пр.;

нарушена целостность флакона, ампулы, пробирки и пр.;

жидкость во флаконе промерзла (для жидких препаратов);

изменен обычный внешний вид (цвет, консистенция, обнаружено усыхание, посторонний запах, стойкое расслоение эмульсии и т. д.);

в содержимом присутствуют посторонние примеси (пленки, хлопья, плесень, комочки, сгустки и пр.) и неразвивающийся при встряхивании осадок;

истек срок годности препарата;

истек срок использования вскрытого флакона (ампулы).

Биопрепараты выбраковывают комиссионно, оформляют актом; выбракованные препараты уничтожают в соответствии с указанием на этот счет в наставлениях (как правило автоклавированием или кипячением).

Уничтожение препаратов. Статьей 59 Закона № 61-ФЗ определено, что при уничтожении лекарственных средств следует руководствоваться Правилами, которые утверждены постановлением Правительства РФ от 3 сентября 2010 г. № 674.

Определено, что изъятию и уничтожению подлежат:

1) недоброкачественные, фальсифицированные препараты;

2) контрафактные лекарственные средства;

3) препараты с истекшим сроком годности.

Непосредственно уничтожать препараты могут только те организации, которые имеют соответствующую лицензию (на специально оборудованных площадках, полигонах и в специально оборудованных помещениях с соблюдением требований охраны окружающей среды).

38. Рассчитайте необходимое количество едкого натра для приготовления 3% раствора и его количество для дезинфекции животноводческого помещения (где вы проходите практику) или клиники.

Плотность 3% раствора едкого натра составляет p=1.035 кг/л. Количество едкого натра, необходимое для приготовления 1 л данного раствора равно:

m 0 (NaOH)=V*p*w=1*1.035*0.03=0.03105 кг=31.05 г

Для дезинфекции 1 м 2 помещения нужно 0.5 л 3%-го раствора едкого натра. Для помещения площадью 130 м 2 необходимо 65 л раствора едкого натра. Количество едкого натра, для приготовления даного раствора равно:

m(NaOH)=m0*V=31.05*65=2018 г=2.018 кг

39. Проанализировать какие лекарственные препараты применяются в хозяйстве (клинике), обладающие химиотерапевтическим действием.

Классификация химиотерапевтических средств.

Производные нитрофурана, оксихинолина, хинолона.

Читайте также: