H 120 инфекционный бронхит

Вакцины для профилактики инфекционного бронхита кур (ИБК) и болезни Гамборо представляют собой живые и инактивированные препараты импортного и отечественного производства. Это препараты выпускаются в форме моновалентных, а также поливалентных вакцин, защищающих птицу от 2–4 различных инфекционных заболеваний. Огромную роль здесь играют живые вакцины, обеспечивающие быстрый иммунный ответ, в том числе препараты современных технологий.

Вакцинацию птицы против ИБК проводят интраокулярно, интраназально, орально и спрей-методом (крупнодисперсным и мелкодисперсным распылением), против болезни Гамборо — перорально и in ovo.

Инфекционный бронхит кур

Инфекционный бронхит кур (ИБК) — вирусное высококонтагиозное заболевание, проявляется поражением главным образом респираторных и репродуктивных органов и почек. Болезнь поражает птиц всех возрастов и особенно опасна для цыплят.

Вызывается РНК-вирусом с высокой генетической изменчивостью. Мутациям возбудителя способствует ряд факторов, в том числе размножение вируса на разновозрастном поголовье птицы, смешанные инфекции, совместная циркуляция в одном стаде вакцинного и полевого вируса.

В мире циркулирует множество штаммов вируса инфекционного бронхита кур, что затрудняет диагностику и профилактику этой болезни. В настоящее время наибольшую опасность для российского птицеводства представляют вирусные штаммы серотипа Массачусетс, вирусы серотипов 793B, а также высококонтагиозные штаммы QX и некоторые другие патогены. На птицефабриках одновременно циркулирует несколько штаммов, но при этом обычно превалируют 1–2 основных серотипа.

Определенные серотипы вируса инфекционного бронхита могут размножаться в различных тканях организма птицы.

Вирус ИБК серотипа Массачусетс (Mass) поражает в основном органы дыхания, вызывая сильное респираторное заболевание. Иммунизация против вирусов серотипа Массачусетс может осуществляться с первых дней жизни.

Респираторные штаммы вирусов ИБК ведут к падежу (летальность 15–35%) и создают благоприятный фон для развития бактериальных инфекций.

Серотип Массачуссетс получил широкое распространение во всем мире и был выявлен в 40-х годах ХХ века в Европе и США.

Позднее выяснилось, что ряд штаммов вирусов ИБК поражают также органы выделения, при этом респираторные симптомы могут быть выражены в различной степени.

Нефрозо-нефритная форма ИБК характеризуется слабыми и кратковременными респираторными признаками с последующей депрессией, смертность молодняка при этом составляет от 25–30% и до 70%. Нефропатогенные свойства выражены наиболее ярко у штамма QX, пришедшего в Европу из Азии и циркулирующего в России с начала 2000-х годов.

Высококонтагиозный и патогенный штамм QX активно размножается в тканях респираторного тракта, почек, яичников и лимфоидных тканях слепой и толстой кишок.

В 90-х годах прошлого века учеными был выявлен нефропатогенный серотип 793В, вызывающий высокую смертность у бройлеров. Иммунизацию цыплят против этого возбудителя обычно проводят во время второй вакцинации. Но есть вакцины, которые можно применять с суточного возраста.

Серотипы, близкие к Массачусетс, а также 793В являются наиболее распространенными штаммами вирусов ИБК на птицефабриках России и Европы, для защиты именно от этих штаммов разработано наибольшее число иммунобиологических препаратов. При совместном их использовании происходит формирование достаточной перекрестной защиты от штамма QX.

Некоторые штаммы вируса ИБК (в том числе М41) могут на длительный период снизить яйценоскость птицы (вызывая падение параметров продуктивности от 30 до 89%), ухудшают качество скорлупы яиц и изменяют их окраску.

В результате в хозяйствах выявляются несушки с нормально выраженными вторичными половыми признаками, но неспособные к несению яиц из-за спаек яйцеводов в результате сальпингоофорита, спровоцированного размножением вируса ИБК у цыплят в раннем возрасте.

Среди новых вирулентных штаммов, появившихся за последние несколько лет, необходимо выделить VAR 2 (Вариант 2), циркулирующий в Азии и на Ближнем Востоке, с недавнего времени — и в Центральной Европе. Этот вирус поражает в основном почки, органы дыхания и размножения.

Учитывая стремительно возрастающее инфекционное давление вируса ИБК типов QX и 793B и новых вариантных штаммов типа Вариант 2 в Европе, на Ближнем Востоке и в России, компания Phibro Animal Health Corporation (США) разработала живую аттенуированную вакцину ТАБИК IB VAR 206. Ее создали на основе полевого штамма Вариант 2 (IS/1494/06).

Вакцина ТАБИК IB VAR 206 производится по запатентованной и принадлежащей компании Phibro технологии TAbiс (производство живых вакцин в форме стерильных водорастворимых таблеток). Эту перспективную разработку оценили другие крупные производители вакцин.

Компания Boehringer Ingelheim на основании научных разработок производства шипучих форм Sanofi по лицензии Phibro Animal Health начала выпуск вакцин в виде шипучих таблеток (линия НЕО). Такая лекарственная форма значительно уменьшает складские площади и облегчает труд ветеринарных врачей.

В ходе исследования штаммов возбудителей инфекционного бронхита кур выяснились интересные факты. Например, комбинация одних штаммов возбудителей ИБК может вызвать перекрестную защиту от других ее штаммов. Например, иммунизация штаммами Ма5 серотипа Массачусетс и серотипа 793В защищают птиц от высокопатогенного штамма QX (вакцинация при этом происходит одним, ревакцинация — другим штаммом). Явление такого синергидного действия вакцин получило название протектотип. Его открыла Джейн Кук, и на сегодняшний день это основное понятие в иммунитете ИБК.

Программы защиты ИБК

Вирус инфекционного бронхита постоянно изменяется. Проведенные ПЦР-исследования по секвенированию генома ИБК, проведенные в начале 2000-х годов в России, показали, что около трети вирусов относятся к неизученным ранее и составляют группу местных штаммов.

Программы защиты кур от инфекционного бронхита включают живые и инактивированные вакцины. Основной целью вакцинации является формирование иммунитета птиц против широкого спектра вирусных агентов. Иммунизация против ИБК производится однократно или двукратно (в зависимости от рекомендаций производителя препарата и эпизоотической ситуации в хозяйстве). Цыплят вакцинируют с первого дня жизни, вне зависимости от уровня материнских тел. Третью (дополнительную) ревакцинацию против ИБК необходимо проводить и в родительских, и в товарных стадах до начала яйцекладки (на 98–120-й день).

Живые вакцины являются главным инструментом защиты от ИБК цыплят родительских стад, бройлеров и несушек. Они создают раннюю специфическую защиту, развивающуюся у цыпленка в течение 2 недель. Основной недостаток живых вакцин — это потенциальная способность вакцинного штамма к реверсии к дикому типу, восстановлению вирулентности за счет мутаций. Вирусы респираторных заболеваний способны конкурировать за одни и те же рецепторные участки слизистой оболочки верхних дыхательных путей. Поэтому при использовании в схеме иммунизации ИБК двух живых вакцин с разным набором штаммов необходимо соблюдать временной интервал не менее 14 дней.

Инактивированные вакцины применяются для молодняка несушек и родительского стада (ревакцинация), вызывают продукцию материнских антител. Для того чтобы вакцинация инактивированными вакцинами была эффективной, необходимо сначала применять живую вакцину для первичного воздействия антигена, минимум за четыре–пять недель до применения инактивированной вакцины. Содержание нескольких гетерологичных штаммов в инактивированной вакцине вызывает образование высокого уровня антител к большему количеству штаммов вируса ИБК. Первичное вакцинирование живой вакциной, ревакцинация инактивированной обеспечивает в среднем защиту в 95% случаев, в то время как сочетание двух инактивированных иммунобиологических препаратов — примерно в 90%.

Правильно выбрать препарат для иммунизации поможет идентификация типа циркулирующего в стаде вируса методом ПЦР и другими в специализированных лабораториях.

С момента появления на свет цыплятам грозит не только ИБК, но и болезнь Ньюкасла. Для комплексной защиты против этих заболеваний создано достаточно большое число препаратов.

Компания Ceva Sante Animale предложила вакцину для вакцинации суточных цыплят против болезни Ньюкасла и инфекционного бронхита (штамм Н-120) ВИТАБОРН L.

Качественную вакцину против инфекционного бронхита кур БРОНИПРА-1 (штамм Н-120) для применения в первый день жизни предлагает испанская компания Laboratorios HIPRA, S.A. Для неблагополучных зон по болезни Ньюкасла у компании есть также бивалентные вакцины ХИПРАВИАР-В1/Н120 и ХИПРАИАР-КЛОН/Н120, которые с успехом применяются с первого дня жизни методом крупнокапельного спрея.

Моновакцины для профилактики инфекционного бронхита кур

Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Абдуллоев Хуршед Сатторвич, Фролов Сергей Владимирович, Дандал Али Шебли, Кулаков Владимир Юрьевич

Похожие темы научных работ по ветеринарным наукам , автор научной работы — Абдуллоев Хуршед Сатторвич, Фролов Сергей Владимирович, Дандал Али Шебли, Кулаков Владимир Юрьевич

Comparison of Homoand Heterologous Reactions of Antisera Prepared Against “D274”, “4/91” and “H-120” Strains of Infectious Bronchitis Virus

Indirect ELISA showed that the contrast of the form C = (Y het Y 0) / (Y hom Y 0) can be used for differentiation of homoand heterologous reactions. C is the value of contrast, Y hom, Y het and Y 0 are evaluations of optical density of homologous, heterologous sera and negative control, respectively, for each dilution of test sera. We determined the value of unilateral antigenic relationship of strains of infectious bronchitis virus “D274” and “4/91” toward the strain “H-120”, which in dimension of shares specifying the boundaries of the range of measurement error amounted to 0,380 [0,339 ÷ 0,426] and 0,221 [0,200 ÷ 0,245], respectively.

Ключевые слова: вирус инфекционного бронхита кур, антигенное родство, иммуноферментный анализ

Key words: infectious bronchitis virus, antigenic affinity, enzyme-linked immune sorbent assay

Абдуллоев Х. С., Фролов С. В., Дандал А. Ш., Кулаков В. Ю.

COMPARISON OF HOMO- AND HETEROLOGOUS REACTIONS OF ANTISERA PREPARED AGAINST "D274", "4/91" AND "H-120" STRAINS OF INFECTIOUS BRONCHITIS VIRUS

2Federal Centre for Animal Health, Laboratory for Avian Deseases Address: 600901, Russia, Vladimir, Yurevets, Laboratory for Epidemiology and Monitoring of Avian Diseases

Абдуллоев Хуршед Сатторвич, аспирант1 / Abdulloev Hurshed S., Postgraduate1 Фролов Сергей Владимирович, к. в. н, зав. лабораторией2 Frolov Sergey V., Ph.D. in Veterinary Science, Laboratory Chief2 Дандал Али Шебли, аспирант1 / Dandal Ali Sh., Postgraduate1 Кулаков Владимир Юрьевич, к. в. н, вед. научн. сотрудник2 Kulakov Vladimir Yu., Ph.D. in Veterinary Science, Leading Research Scientist2

Summary. Indirect ELISA showed that the contrast of the form C = (Yh - YJ / (Yhom - YJ can be used for differentiation of homo- and heterologous reactions. C is the value of contrast, Yhom, Yhet and Yg are evaluations of optical density of homologous, heterologous sera and negative control, respectively, for each dilution of test sera. We determined the value of unilateral antigenic relationship of strains of infectious bronchitis virus "D274" and "4/91" toward the strain "H-120", which in dimension of shares specifying the boundaries of the range of measurement error amounted to 0,380 [0,339 - 0,426] and 0,221 [0,200 - 0,245], respectively.

Инфекционный бронхит кур (ИБК) - высококонтагиозная болезнь вирусной этиологии, клинически проявляющаяся в виде дисфункций дыхательной системы, поражений органов мочевыделительной и репродуктивной систем. В настоящее время ИБК является одной из наиболее экономически значимых болезней в промышленном птицеводстве многих стран мира, в том числе и Российской Федерации [1, 6].

Возбудитель ИБК — гаммакоронавирус, имеет выраженную тенденцию к антигенной изменчивости и появлению новых се-

ротипов [5]. В настоящее время для классификации штаммов (серотипов) вируса ИБК не существует единой согласованной системы. Тем не менее для изучения антигенных и иммунологических свойств широко применяются функциональные тесты (РН, ИФА, РТГА) [11].

Основным способом борьбы с данным заболеванием является специфическая профилактика, однако антигенное разнообразие циркулирующих эндемичных штаммов ИБК может существенно снижать эффективность проводимой вакцинации [10, 12].

В связи вышесказанным представляется актуальным исследование антигенных свойств различных штаммов ИБК и количественная оценка их антигенного родства.

Материалы и методы

Антигены штаммов вируса ИБК. Инфекционную активность изучаемых вирусных материалов скорректировали к наименьшему показателю (6,8 ^ЭИД50/см3). Далее проводили инактивацию вируса. С этой целью в образцы вируссодержащей экстраэмбриональной жидкости добавляли аминоэтилэтиленимин (0,05 % по объему), смесь выдерживали 24 часа при температуре 25 °С. Таким образом, соответственно исследуемым штаммам, получили вирусные антигены: АОнШ; А^ и

Гипериммунные сыворотки морских свинок. Образцы штаммовых антигенов смешивали с адъювантом - гелем гидроокиси алюминия в равных объемах. Полученные смеси вводили морским свинкам весом 350-400 г (по 6 голов на каждый образец) внутримышечно в бедро, в объеме 1,5 см3. Повторную иммунизацию проводили через 14 суток. Далее с интервалом 7 суток выполняли еще 2 инъекции.

Через 40 суток после начала эксперимента провели забор крови. За 15 минут до операции выполняли процедуру анестезии и ми-орелаксации животных. Далее производили пункцию сердца и отбор образцов крови. После этого животных подвергали эвтаназии парами хлороформа.

Образцы крови декантировали от фибрина и форменных элементов, и полученные сыворотки объединяли соответственно исследуемым антигенам. Таким образом получали меланжированные штаммоспеци-

фичные гипериммунные сыворотки SH120,

Иммуно-ферментный анализ (ИФА).

Применяли метод непрямого твердофазного ИФА с постоянной дозой иммобилизованного антигена* С этой целью использовали диагностические наборы компании Synbiotics (США) для определения антител к вирусу ИБК в сыворотках крови кур*

Испытывали двукратные разведения (D) сывороток в диапазоне от 1 : 100 до 1 : 12800* По завершении реакции в каждом разведении измеряли оптическую плотность хро-могенного субстрата (Y)* Испытания всех образцов сывороток проводили параллельно*

Было проведено три повторных эксперимента* Полученные результаты представлены в виде диаграмм на рисунке*

Приведенные диаграммы демонстрируют монотонно убывающие по оси lgD значения Y, установленные для всех испытанных образцов сывороток* В отрицательном контроле тренд указанных величин не выражен* В диапазоне разведений от lgD = 2 (1 : 100) до lgD = 2,204 (1 : 1600) оптическая плотность (ОП) образца SH120 была заметно выше, чем у образцов SD274 и S4/91, но при этом оптические показатели двух последних образцов формально превосходили отрицательный контроль*

В соответствии с тем что в использованных диагностических наборах для выявления антител к вирусу ИБК на планшетах иммобилизован антиген штамма Н-120 [6],

исследуемых образцов сывороток SH120 (♦), SD274 (▲) и S4/91 (•) и отрицательного контроля S0(□), установленные соответственно величинам их разведений ф).

реакцию с сывороткой Б считали гомологичной ^от), остальные реакции рассматривали как гетерологичные ^е^.

В каждом опыте по всему испытанному диапазону разведений вычисляли среднее значение ОП отрицательного контроля (^0). Далее по данным hom-системы определяли границы диапазона разведений (р^ ^ Dmax), в которых проводили анализ полученных результатов (рабочий диапазон), где: Dmm -величина наименьшего испытанного разведения, Dmax - величина наибольшего разведения, в котором оценка соответствующего оптического показателя превосходит или равна удвоенной средней оценке ОП отрицательного контроля (т. е. Y > 2'^0).

В границах рабочего диапазона в каждом разведении тестируемых сывороток проводили сравнение оптических показателей

hom- и het-систем, где оценкой различия (показателем контраста) между значениями Yhom и Y с учетом оптики отрицательного контроля (Y0), установленной в данном разведении, считали величину:

Полученные в рабочем диапазоне разведений оценки ОП УЬоп, У и У0, а также выборки соответствующих показателей гетероло-гичного контраста, представлены в таблице 1 (в целях ограничения влияния возможных резко выпадающих значений С для вычислительных процедур использовали величины ^С).

Был проведен анализ распределений показателей ^С в обеих выборках на предмет установления степени их асимметрии и эксцесса (островершинности), что являлось обоснованием использования средних значений и применения стандартных методов обработки первичных данных [3]. Результаты анализа приведены в таблице 2.

Данные, представленные в таблице 2, позволили сделать ряд заключений. По критерию асимметричности (А/па Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

3,204 0,064 0,143 0,126 0,119 -0,105 -0,157

2,000 0,079 0,602 0,190 0,160 -0,673 -0,810

2,301 0,065 0,412 0,150 0,120 -0,611 -0,800

2,602 0,051 0,320 0,138 0,098 -0,490 -0,758

2,903 0,061 0,168 0,118 0,080 -0,274 -0,751

3,204 0,058 0,152 0,127 0,087 -0,134 -0,511

2,000 0,081 0,675 0,223 0,198 -0,621 -0,706

2,301 0,062 0,482 0,168 0,128 -0,598 -0,804

2,602 0,05 0,288 0,125 0,115 -0,502 -0,564

2,903 0,059 0,221 0,128 0,093 -0,371 -0,678

3,204 0,055 0,161 0,079 0,082 -0,645 -0,594

3,505 0,052 0,124 0,092 0,073 -0,255 -0,535

Примечание: * — представлены результаты трех повторных измерений.

Результаты статистического анализа выборок показателей контраста (С), установленных в гетерологичных реакциях с сыворотками SD274 и S4/91

Выборка показателей контраста Оценка симметрии (А) Статистика асимметрии (Ша) Оценка эксцесса (Е) Статистика эксцесса (шЕ) Среднее значение П§С) Стандартное отклонение (±Ц0

^ С1 0,275 0,528 1,483 0,882 -0,420 ±0,196

^ С2 (84/91) 1,058 1,510 -0,655 ±0,177

Предлагаемый вариант показателя контраста оптики гетерологичной реакции (С) практически повторяет известную для ИФА S\P-оценку, с той разницей, что произведена замена оптической величины положительного контроля на ОП гомологичной реакции. Показано, что в установленных границах рабочего диапазона выборки значений ^С имеют нормальное распределение и их средние величины ("^С) пригодны для стандартных статистических операций.

Установлено, что показатели "1§С, установленные для сывороток Б и Б4/ по отношению к сыворотке имели вы-

сокий уровень значимости, что свидетельствовало о существенных антигенных различиях соответствующих вирусных штаммов. Опираясь на положение Архет-ти и Хорсфалла [4], величины "1§С были использованы в качестве оценок одностороннего антигенного родства штаммов Э274 и 4/91 по отношению к штамму Н-120. Искомые оценки в размерности долей и с указанием границ диапазона ошибки измерений составили "СШ74 = 0,380 [0,339 -0,426] и "С4/91 = 0,221 [0,200 - 0,245].

Авторы выражают искреннюю благодарность в. н. с. Меньщиковой А. Э и Самсоно-вой А. С за помощь при выполнении ИФА.

1. Борисов, А. В. Инфекционный бронхит кур. Эффективность ведения промышленного птицеводства в современных условиях / А. В. Борисов. Мат. науч.-практ. конф. - СПб : Издатель, 2012. - С. 12-15.

2. Егоров, А. М. Теория и практика иммунофер-ментного анализа / А. М. Егоров и др. - М. : Высшая школа, 1991.

3. Закс, Л. Статистическое оценивание / Л. Закс. -М. : Статистика, 1976. - 598 с.

4. Archetti, J. Persistent antigenic variation of influenza A viruses after incomplete neutralization in ovo with heterologus immune serum / J. Archetti, F. Horsfall // J. Exp. Med. - 1950, Vol. 92, № 5. - P. 441-462.

5. De Wit, J. Detection of infectious bronchitis virus / J. De Wit // Avian Pathol. - 2000, Vol. 29. - P. 71-93.

6. De Wit, J. Efficacy of infectious bronchitis virus vaccinations in the field: association between the a-IBV IgM response, protection and vaccine application parameters / J. De Wit et al. // Avian Pathol. - 2010, Vol. 39. - P. 123-131.

8. Jing, Li. Comparative analysis of the effect of glycyrrhizin diammonium and lithium chloride on infectious bronchitis virus infection in vitro / Li. Jing, Yin Jiechao et al. // Avian Pathol. - 2009, Vol. 38. -P. 215-221.

10. Wu, Z. Q. Antigenic and immunogenic characterization of infectious bronchitis virus strains isolated in China between 1986 and 1995 / Z. Q. Wu, Q. W Yang et al. // Avian Pathol. - 1998, Vol. 28. - P. 578-585.

11. Zanella, A. Avian Infectious Bronchitis: Characterization of New Isolates from Italy / Zanella A. et al. // Avian Diseases. - 2003, Vol. 47, N 1. - P. 180-185.

12. Zellen, G. Determination of the Antigenic Relationships among Six Serotypes ofInfectious Bronchitis Virus Using the Enzyme-Linked Immunosorbent Assay and Serum-Neutralization Test / G. Zellen, J. Thorsen // Avian Diseases. - 1987, Vol. 31, N 3. - P. 455-458.

Инфекционный бронхит кур (ИБК) — высококонтагиозная болезнь, характеризующаяся поражением органов дыхания у молодняка, поражением репродуктивных органов и потерей продуктивности у взрослых кур-несушек, а также нефрозонефритным синдромом.

В настоящее время болезнь широко распространена в Канаде, Аргентине, Англии, Японии, Голландии, Италии, Франции, Австралии, Дании, Швейцарии, Германии и других странах.

Первое сообщение об инфекционном бронхите в СССР сделал П.М. Сопиков в 1946году.

Экономический ущерб от ИБК в основном складывается из снижения яйценоскости у кур. Если птица заболевает в начале яйценоскости, то продуктивность сохраняется на низком уровне в течение всего периода содержания (яйценоскость 20-30%). При заражении птицы в середине и в конце продуктивного периода яйценоскость резко понижается и тоже не восстанавливается. От больных кур нельзя использовать племенные яйца. До 20-40% цыплят, переболевших инфекционным бронхитом, подлежат выбраковке вследствие недоразвития.

Возбудитель болезни относится к группе миксовирусов; размер вириона 80-250mµ. Вирус проходит через фильтры Зейца ЕК и Беркефельда N, V,W. В настоящее время учеными описано уже около 30 разновидностей серотипов вируса ИБН. Хорошо размножается в куриных эмбрионах и околоплодных оболочках. Максимально вирус накапливается через 48-96 часов после заражения. После заражения эмбрион отстает в росте, иногда образуются некротические очаги в печени, почках. Характерным признаком у погибших эмбрионов считается скручивание тела. Вирус вызывает появление в организме специфических антител. Максимум антителообразования приходится на 40-день после заражения птицы.

Антитела у птицы обнаруживаются в течение года. Куры-несушки способны передавать антитела потомству. Это предохраняет птицу от заражения в первые 10-15дней жизни.

Вирус инактивируется при 56° в течении 10-15 минут. В лиофилизированном состоянии вирус выживал свыше 500дней (температура 4°), при -20-30°-458 дней. Ультрафиолетовые лучи разрушают вирус. Вирус ИБК погибает под действием 3%-ного горячего раствора едкого натрия через 3 часа, раствора хлорной извести с содержанием 6,5 % активного хлора- через 6часов, 0,5%-ного раствора формальдегида — через 3 часа, 5%-ного горячего раствора Демпа-12 –через 6часов,0,5%-ного раствора формальдегида- через 3 часа, 5%-ного горячего раствора Демпа-12- через 6часов, 1%-ные растворы фенола, формалина –через 3минуты.

Эпизоотические данные. К заболеванию в основном восприимчивы цыплята в возрасте до 30 дней, а также куры в возрасте 5-6месяцев. Кроме домашней птицы, заболевание регистрируется у фазанов и перепелов.

Особенностью болезни является то, что через 3-5дней после ее появления она быстро поражает всех птиц в стаде. Вначале заболевают цыплята, а затем болезнь переходит на молодых и взрослых кур.

Основной источник инфекции – больные цыплята, куры и переболевшая птица. Больная птица выделяет вирус в течении 3 месяцев с слизистыми истечениями из дыхательных путей, с яйцом и пометом; Длительность вирусносительства у переболевшей птицы доходит до 12 месяцев. Птица заражается главным образом аэрогенным путем. Факторами передачи служит – корм, вода, подстилка и другие предметы, загрязненные выделениями больной птицы.

Особую роль в распространении инфекции играют инкубационные яйца. Вирус в яйце удается обнаружить через 2-43 дня после инфицирования кур-несушек. Занос инфекционного бронхита кур в благополучные хозяйства чаще всего происходит при нарушении ветеринарно-санитарных требований к инкубационным яйцам.

В неблагополучных хозяйствах инфекция приобретает стационарный характер и переходит в хроническую стационарную инфекцию. Часто вспышка инфекционного бронхита возникает после переохлаждения птицы, при повышенном содержании вредных газов в помещении, после применения живых вирусвакцин, которые провоцируют скрытое течение заболевания.

Патогенез. Цикл инфекции продолжается 18-20 дней. В первые 1-3 дня после внедрения вируса в слизистую оболочку трахеи и бронхов возникает воспалительный процесс, вызывающий к 7-му дню гипертрофию эпителия и выраженную отечность, который сопровождается обильным выделением слизи и экссудата. Затем в течение 12-18 дней наступает так называемая фаза иммунитета, при которой восстанавливается пораженный эпителий и происходит лимфоидоклеточная инфильтрация. Течение заболевания и смена фаз зависит от дозы вируса, поступившего при заражении.

Вирус бронхита может выделятся из легких, содержимого трахеи, кишечника в течение 10-21 дня; из крови, почки, печени и мозга не всегда удается выделить вирус.

В патогенезе болезни большое значение имеет условнопатогенная микрофлора (возбудители микоплазмоза, колисептицемии, стрептококкоза, заразного насморка и др.), которая осложняет течение болезни.

Симптомы и течение болезни. Инкубационный период 3-10 дней.

При инфекционном бронхите на современном этапе принято отмечать три клинических синдрома.

Респираторный синдром сопровождается респираторными симптомами и наблюдается у молодых цыплят:

Через 18-36часов после внедрения вируса у цыплят наступает угнетенное состояние; крылья опускаются, дыхание становится затрудненным и напряженным, появляются хрипы в трахее, чихание, выделения из ноздрей, коньюктивиты, риниты, отмечается опухание подглазничных синусов. Цыплята становятся вялыми, малоподвижными, теряют аппетит, дыхание хриплое, цыплята дышат с открытым ртом, сбиваются кучками вокруг источников тепла. В результате удушья из-за скопившегося экссудата в трахее у цыплят до 2-х недельного возраста иногда может наступить внезапная гибель. Болезнь в основном протекает остро (1-3недели), летальность среди цыплят 1-3 недельного возраста колеблется в пределах 5-33%.У цыплят старше 2-х недель также отмечается одышка,кашель, сухие хрипы, чихание, коньюктивит, незначительные истечения из клюва; которые могут исчезнуть через 8-14 дней. Переболевание инфекционным бронхитом у молодняка вызывает задержку роста.

У взрослой птицы болезнь протекает с синдромом поражения репродуктивных органов:

Клинические признаки не характерны (ринит, конъюктивит, у отдельных птиц затрудненное дыхание). На 7-14 день болезни на любой стадии яйцекладки владельцы птицы отмечают снижении е яйценоскости. Переболевшие птицы несут дефектные яйца, яйценоскость полностью не востанавливается даже после выздоровления. Выводимость цыплят падает.

Отдельные штаммы вируса ИБК могут в течение первых 2 недель болезни вызвать нефрозонефритный синдром который сопровождается поражением почек и мочеточников с одновременным отложением уратов.

При нефрозонефритическом синдроме у больной птицы диагносцируем депрессию, диарею с примесью уратов. Болезнь протекает остро, ветспециалисты в начале вспышки отмечают у больной птицы нечеткие признаки респираторного синдрома. Если вирус ИБК в хозяйстве циркулирует впервые, то летальность при этой форме доходит до 70%.

Патологоанатомические изменения. В трахее и крупных бронхах трупов цыплят обнаруживают кровоизлияния, серозный или катаральный эксудат. У молодняка кровоизлияния часто создают своеобразную исчерченность. У взрослой птицы обычным признаком инфекционного бронхита является недоразвитость яичника и яйцевода (инфантилизм) От 5 до 50% больные куры откладывают яйца с известковым налетом, около 25%-с мягкой и 12%-с тонкой скорлупой. В 20% случаев в белке находят дифтеритические массы вследствие сальпингита. Часто яйца имеют сдавленную вытянутую форму, скорлупа приобретает своеобразный измятый вид. В яйцеводе находим кисты,в оболочке яичника иногда кровоизлияния. У взрослой птицы яичник и яйцевод недоразвиты, яйцевые фолликулы атрофированы. Типичные патологоанатомические изменения при осложнениях условнопатогенной микрофлорой обнаруживают в респираторных органах. Стенка воздухоносного мешка теряет прозрачность, покрыта фибринозным наложениями. Слизистая оболочка трахеи покрыта серозным и слизистым экссудатом. После удаления экссудата видна отечная подслизистая ткань, с кровоизлияниями. В легких обнаруживаем фибринозные сгустки. Печень –застойная гиперемия, края притуплены. Печень и почки-явления зернистой дистрофии.

При осложненной форме инфекционного бронхита воспалительные процессы в воздухоносных мешках напоминают респираторный микоплазмоз. При гистологическом исследовании в трахее обнаруживают мононуклеарную пролиферацию и инфильтрацию цилиндрического эпителия, отечность слизистых оболочек.

Диагноз. Предварительный диагноз в условиях хозяйства можно поставить на основании эпизоотических, клинических и патологоанатомических данных. Для окончательной постановки диагноза необходимо выделение и индентификация вируса.

От погибших или вынужденно убитых цыплят делают соскобы со слизистых оболочек. Патологический материал суспензируют в мясопептонном бульоне. После осаждения крупных кусочков тканей надосадочную жидкость используют для выделения вируса. Жидкость вводят в аллантоисную полость куриных эмбрионов и в трахею 4-6 цыплят 10-20-дневного возраста. При положительной биопробе через 18-36 часов у цыплят возникают клинические признаки инфекционного бронхита. Для типизации вируса применяют реакцию нейтрализации со специфической сывороткой на куриных эмбрионах, а также реакцию преципитации в агаровом геле. Используют иммунофлуоресценцию и реакцию нейтрализации со специфическими сыворотками, ретроспективную диагностику- анализ сывороток крови в ИФА, РН, РНГА, исследование молекулярно биологическими методами с использованием ПЦР. Решающее значение имеет заражение восприимчивых птиц, 10-20-дневных цыплят и куриных зародышей.

Дифференциальный диагноз. Необходимо исключить ларинготрахеит, оспу, псевдочуму, респираторный микоплазмоз, заразный насморк, грипп, инфекционную бурсальную болезнь, гемофилез.
Инфекционный ларинготрахеит в отличие от бронхита поражает взрослую птицу; у цыплят данное заболевание протекает обычно в виде серозного коньюктивита. При заражении куриных эмбрионов вирусом инфекционного ларинготрахеита и оспы возникают узелковые и очаговые поражения на аллантоисной оболочке.

Типичная оспа у птиц отличается от инфекционного бронхита по возникающим кожным поражениям, конъюнктивальная форма оспы сопровождается конъюнктивитами, положительной фолликулярной пробой.
Псевдочума сопровождается поражением органов дыхания, расстройством кишечника, параличами и парезами конечностей. Вирус псевдочумы обладает способностью гемоагглютинировать эритроциты животных и птиц, что не отмечается у не обработанного трипсином вируса инфекционного бронхита.

Некоторые трудности могут возникнуть при дифференциации инфекционного бронхита от респираторного микоплазмоза. В этом случае нужно сделать посевы на бульон и агар Эдварда для выделения культуры микоплазмы, которые затем проверяют на патогенность. В практических условиях инфекционный бронхит часто осложняется возбудителем респираторного микоплазмоза и заболевание у птиц протекает по типу ассоциированных инфекций.

Лечение. В неблагополучном птичнике применяют дезинфицирующие препараты (хлорскипидар, йодид алюминия, раствор Люголя, глютекс, виркон С и другие) в виде аэрозолей.

Иммунитет и иммунизация. Переболевшая ИБК птица становится устойчивой к тому штамму, который вызвал заболевание. Продолжительность приобретенного иммунитета 4-6 месяцев. Установлено, что материнские антитела не имеют большого значения в защите птицы от ИБК, поэтому в птицеводческих хозяйствах необходимо проводить вакцинацию цыплят в суточном возрасте интраназально или спрей – методом.

Ветспециалисты должны знать, что применять живые вирус-вакцины необходимо с большой осторожностью, ввиду того, что они могут спровоцировать в хозяйстве респираторный микоплазмоз, колисептицемию. На сегодняшний день наиболее широкое распространение в птицеводческих хозяйствах получили две живые вирус-вакцины из штамма АМ и вакцина Н-120.

Родительское стадо на птицефабриках перед яйцекладкой внутримышечно прививают ассоциированной инактивированной вакциной против ИБК, БН, ИББ и ССЯ-76.

Профилактика и меры борьбы. Для предупреждения инфекционного бронхита необходимо строго выполнять комплекс мероприятий, предусмотренных Ветеринарно-санитарными правилами для птицеводческих хозяйств (ферм) и требованиями при их проектировании, особенно при клеточном безвыгульном содержании.

Не допускается любая хозяйственная связь птицефабрик и птицеферм с неблагополучным по ИБК хозяйством. При комплектовании птицехозяйства разрешается использовать инкубационное яйцо только от клинически здоровой птицы.

Дезинфекцию инкубационного яйца, инкубаторов и птичников проводят с соблюдением существующих правил и рекомендаций.

Комплектование птичников и зон проводят только одновозрастной птицей. Во всех помещениях, где содержится птица необходимо осуществлять постоянный контроль за воздухообменом.

Вновь завезенную птицу карантинируют в течение 3 недель.
При установлении заболевания птиц ИБК в соответствии с приказом Министерства сельского хозяйства РФ №476 от19 декабря 2011года « Об утверждении перечня заразных, в том числе особо опасных, болезней животных, по которым могут устанавливаться ограничительные мероприятия (карантин) постановлением Губернатора области в хозяйстве вводятся ограничения. По условиям ограничений в хозяйстве запрещается:

• Вывоз яиц для племенных целей в благополучные хозяйства, а также яиц и эмбрионов для производства ветеринарных и медицинских препаратов и научно – исследовательских работ.
• Вывоз живой птицы в другие хозяйства и продажу ее населению.
• Перемещение птицы, кормов и инвентаря из неблагополучных птичников, отделений, ферм в другое помещение где содержится здоровая птица.
• Ввоз птицы из других хозяйств.

В птицеводческих хозяйствах имеющих бройлерное направление весь санитарный брак подвергают технической утилизации, остальную больную птицу направляют для промпереработки на птицекомбинат. Условно здоровую птицу по окончании технологического цикла направляют на убой без ограничений.

При выявлении ИБК в племенных хозяйствах больную взрослую птицу отправляют на убой, а условно здоровую используют для получения пищевого яйца с последующим убоем. Также поступают с родительским стадом в товарных хозяйствах.

Разрешается:

• Вывоз птицы, для пищевых целей после дезинфекции парами формальдегида согласно действующей инструкции.
• Вывоз пера и пуха после дезинфекции.
• Вывоз мяса от вынужденно убитой птицы в сеть общественного питания внутри района или на переработку; мясо от условно-здоровой птицы реализуется на общих основаниях.
• Вывоз птицы на птицеперерабатывающие предприятия с соблюдением всех ветеринарно-санитарных правил по предупреждению распространения инфекции в процессе транспортировки.

В период ограничений прекращают инкубацию сроком на 2месяца. При этом проводят тщательную очистку и дезинфекции инкубатория и инкубаторов.

В птичниках, где возникло ИБК явно больных и сильно отстающих в росте цыплят убивают и утилизируют, а для остальных улучшают кормление и принимают меры по устранению сквозняков и нормализации воздухообмена. Одновременно с этим проводят два раза в неделю текущую дезинфекцию в присутствии птицы гипохлоритом натрия, содержащим 2% активного хлора, из расчета 0,5 мл на 1м³ помещения при экспозиции 15минут.

Территорию вокруг птичника и дороги птицеводческого хозяйства дезинфицируют один раз в неделю 3%-ным раствором едкой щелочи на 1%-ном растворе формалина.

Ограничения с хозяйства снимают через 2месяца после выявления последнего случая заболевания птицы и проведения заключительной дезинфекции.