Бактериологические исследования инфекционных болезней животных
Бактериологическая диагностика. Бактериологический метод исследования патматериала на предмет выделения и идентификации микобактерий включает 3 способа: бактериоскопический, культуральный и биологический / Р.В.Ткзова, 1983; И.И.Румачик, 1987,1993; А.С. Донченко, 1989; Ю.Я. Кассича, 1990; А.Х.Найманов, 1993; Л.П.Ходун, 1997/. Срок бактериологического исследования не должен превышать 3-х месяцев.
Учитывая, что макроскопические туберкулезные изменения в органах и тканях крупного рогатого скота вызывает возбудитель туберкулеза бычьего вида, исследовать такой материал бактериологически не имеет смысла. Если такой материал доставлен в лабораторию для исследования, то производят комиссионный осмотр и составляют акт. Материал обезвреживают.
Бактериоскопическое (микроскопическое) исследование материала заключается в приготовлении из каждого органа (или кусочков органа с подозрительными на туберкулез изменениями) и лимфатического узла, доставленных для исследования, по 2 мазка-отпечатка, высушивании их на воздухе, фиксации над пламенем спиртовки, окрашивании по Циль-Нильсену и просмотре окрашенных мазков под микроскопом, причем не менее 50 полей зрения в каждом мазке. Необходимо приготовить, как минимум, 20 мазков-отпечатков из материала от одной туши. Кроме того, мазки для микроскопии готовят также и из высеваемой на питательные среды взвеси материала.
Окраска мазков по Цилю-Нильсену является избирательной на выявление микобактерий: на синем фоне окрашенных тканей или посторонней микрофлоры микобактерии просматриваются как красные, розовые или рубиново-красные палочки. Лучше всего просмотр мазков вести под микроскопом-бинокуляром при увеличении 1,5 (насадка) х 7 (окуляр) х 90 или 100 (объектив).
Способ используют как сигнальный, поскольку наличие или отсутствие микобактерий в мазках абсолютно не влияет на ход дальнейших исследований и даже положительное заключение бактериоскопии не имеет юридической значимости (кроме птиц). Материал необходимо исследовать далее.
Лабораторный диагноз на туберкулез у птиц считают установленным, если из исследуемого материала выделена культура микобактерий птичьего вида (от попугаев - человечьего или птичьего видов), получен положительный результат биопробы, а также при обнаружении микобактерий в мазках из патологического материала при микроскопическом исследовании (п. 7.3.2. наставления).
Необходимо обратить внимание также и на то, что на приготовление мазков-отпечатков, их фиксацию и просмотр уходит очень много времени, а обнаружить в них микобактерии удается очень редко, даже в мазках из высеваемой взвеси материала. Поэтому в целях экономии рабочего времени и средств при исследовании материала от животных, не имевших изменений при убое, целесообразно ограничиться приготовлением и просмотром мазков только из высеваемой на питательные среды взвеси материала. Это не приведет к ущербу в диагностике туберкулеза, ведь исследование материала продолжается далее.
Кроме обычной световой микроскопии можно использовать люминесцентную микроскопию. Мазки готовят аналогичным образом, фиксируют и окрашивают смесью флуорохромов. Окрашенные мазки просматривают под люминесцентным микроскопом. Способ более чувствителен, однако менее специфичен, и поэтому мало приемлем, особенно в условиях практических лабораторий.
Учитывая вышеизложенное, необходимо первоочередное внимание уделять культуральному способу выделения микобактерий из материала на питательных средах, как самому слабому звену в бактериалогической диагностике туберкулеза в районных ветеринарных лабораториях.
Положительные результаты культурального метода выделения микобактерий зависят, в основном, от двух обстоятельств: увеличение достоверности высева микобактерий из материала и соблюдение условий стерильности при работе в боксе.
Увеличение достоверности высева микобактерий из взятого для исследования материала зависит, в первую очередь, от качественного его отбора, предпосевной обработки и увеличения количества пробирок среды, на которого производят посев.
Основные условия, соблюдение которых при посеве материала на питательные среды гарантирует получение рост колоний микобактерий:
а) отбирать материал для бактериологического исследования от убитых животных, не имевших изменений при убое, отдельно от каждой туши и высевать на 10-20 пробирок среды каждую пробу (материал от каждого животного) по следующей схеме:
- лимфатические узлы головы (подчелюстные, заглоточные);
- бронхиальные и средостенные лимфатические узлы;
- мезентериальные (брыжеечные) лимфоузлы;
- прочие лимфоузлы (при наличии подозрительных участков);
- органы (тоже при необходимости).
В результате получается посев материала от одного животного на 30-50 пробирок среды. Этим достигается увеличение достоверности высева микобактерий в 3-5 раз, так как без разделения проб (по наставлению) высев материала рекомендуется проводить всего на 5-10 пробирок среды от двух голов одной фермы.
б) Непосредственно при бактериологическом посеве материала вырезать кусочки с нарушенной морфологической структурой лимфатического узла или органа (гиперплазия, уплотнение, точечные и полосчатые кровоизлияния и т.д.). Причем необходимо вырезать все измененные участки. Если материала по объему получается много в одну ступку, то его можно разделить в две.
в) Строго соблюдать взятую для работы методику, не нарушая режим обработки и высева материала.
г) При гомогенизации материала, особенно лимфатических узлов, необходимо использовать стерильный песок или мелкобитое стерильное стекло. Максимально растирать материал (до сметанообразной консистенции) для лучшего извлечения микобактерий из исследуемого материала
д) Добавлять физраствор к гомогенизированному материалу в ступку в количестве, необходимом для высева взвеси материала на питательные среды и для биопробы (в среднем до 0,5 см3 в одну пробирку и 1 -2 см3 для подкожного заражения одной морской свинки). Это количество физраствора можно рассчитать заранее.
е) Просмотр посевов материала проводить через 3, 5, 7, 10, 15 дней и в дальнейшем один раз в неделю.
ж) Любая выросшая на среде колония микроорганизмов (типичная или атипичная, пигментная или беспигментная, слизистая или суховатая и т.д.) должна пройти микроскопию при избирательной окраске по Циль-Нильсену.
Следует обратить внимание на степень отмывки материала от кислоты (или щелочи), применяемой для обработки материала от контаминации посторонней микрофлорой. Остаточное количество кислоты всегда будет присутствовать во взвеси из высеваемого материла, однако оно должно быть минимальным. Показателем этого служит восстановление первоначального цвета среды на 2-4-ый день после посева материала. Если цвет среды не восстановился, это свидетельствует о повышенном количестве остаточной кислоты. Цвет среды приобретает синеватый оттенок различной интенсивности. Рост (предполагаемых) микобактерий в данном случае замедляется, либо его не будет вообще, особенно возбудителя туберкулеза как более требовательного к режиму культивирования. Остаточное количество кислоты действует на микобактерии в некоторой степени бактериостатически.
Для герметизации пробирок после посева материала можно применять ватные и ватно-марлевые пробки с последующей заливкой их парафином, резиновые без- и резиновые с вырезанным косым желобком, корковые и металлические пробки (затворы).
При определении видовой принадлежности выделенной культуры микобактерий известно много (около 300) различных тестов: культурально-морфологические, биологические, биохимические, серологические, определение лекарственной устойчивости и т.д. Однако в ветеринарной практике применяется их минимум (см. наставление). Для лабораторий достаточно определение выделенной культуры микобактерий следующих видов: бычий, человечий и птичий, что определяется биопробой, а атипичные микобактерии - разделить на группы по Runyon (1959): I - фотохромогенные (образующие пигмент под воздействием света), II - скотохромогенные (образующие пигмент независимо от воздействия света - и в темноте, и на свету), III - нехромогенные (не образующие пигмента) или еще их называют беспигментные (сюда же отнесен и возбудитель туберкулеза птичьего вида), IV - быстрорастущие микобактерии и кислоустойчивые сапрофиты.
Для этого достаточно эффективно и экономически оправдано изучение свойств выделенной культуры по сокращенной схеме, в которой основное внимание уделяется срокам появления первичного роста колоний, пигментообразованию, культурально-морфологическим и тинкториальным свойствам при окраске по Цилю-Нильсену. Особенно значим тест на корд-образование в первичной или даже в субкультуре в сочетании с результатами биопробы. Для приготовления мазков из выросших колоний целесообразно одновременно делать их как из колоний, так и из остатков взвеси и конденсата, т.е. с жидкой части на дне пробирки.
Кроме того, сотрудники лабораторий имеют возможность не только проводить контрольный убой реагировавших на туберкулин животных и отбирать пробы материала для исследования, но и отбирать для бактериологического исследования при жизни животных (бронхиальная или носовая слизь, молоко, фекалий, моча, экссудат, кровь и т.д.), а также пробы кормов, воды, объектов внешней среды на предмет выделения микобактерий и, таким образом, косвенно доказывать причину реагирования скота на туберкулин. При посеве дополнительного материала и проб из объектов внешней среды используют общеизвестные методы концентрирования микобактерий: седиментационный, флотационный, флотационно-седиментационный и другие.
Сокращенная схема дифференциации микобактерий с использованием биопробы
[youtube.player]ДИАГНОСТИКА ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ
Методы диагностики. Чтобы распознать инфекционную болезнь и выявить больных животных, проводят клинический осмотр, аллергические, серологические, микроскопические, бактериологические исследования, биологическую пробу и патологоанатомпческие вскрытия.
Клиническому осмотру подвергают все поголовье животных в хозяйстве, где появилось заболевание. Животных с явно выраженными ь неясными клиническими признаками выделяют для уточнения диагноза.
Аллергические исследования заключаются в введении в организм животного (на конъюнктиву глаза, подкожно или внутрикожно) специфических препаратов, вызывающих у больного животного характерную реакцию. Имеются препараты для выявления лошадей, больных сапом (маллеин), животных, больных туберкулезом (туберкулин), бруцеллезом (бруцеллизат) и другие. Эти препараты называются аллергенами. При введении двух-трех капель маллеина в глаз больной сапом лошади у нее через несколько часов начинается слезотечение из этого глаза, с выделением гноя. У здоровой лошади такой реакции не наблюдается.
Серологическим исследованием называется исследование сыворотки крови животных, позволяющее выявить зараженных животных. В ветеринарной практике широко применяют исследование сыворотки крови по реакции агглютинации (РА) и реакции связывания комплемента (РСК).
Микроскопическому исследованию подвергают мазки крови или отпечатки из органов животных. При этом удается увидеть возбудителей болезни под микроскопом. Бактериологическим исследованием выделяют из органов павшего животного культуру возбудителя болезни посевами зараженного материала на специальные питательные среды. Биологическая проба позволяет воспроизвести заболевание у здоровых животных заражением их материалом, взятым от больного животного, или культурой возбудителя.
Патологоанатомическое вскрытие трупа животного нередко помогает подтвердить прижизненный диагноз. Иногда кусочки органов посылают в лабораторию для гистологического исследования, т. е. исследования под микроскопом ткани, ее характера и строения.
Взятие и пересылка материала для исследования на инфекционные болезни. Взятие патологического материала. Патологический материал берут в стерильную посуду стерильным инструментом, строго соблюдая меры личной предосторожности. Место на трупе или органе, от которых необходимо взять материал на исследование, прижигают горячей металлической пластиной (шпателем).
Жидкий материал - кровь, желчь, мочу, эксудат, слизь, гной и пр. - насасывают в тоЕпше стеклянные пастеровские пипетки, которые запаивают с обоих концов. Его можно также взять стерильным шприцем с иглой в стерильный флакон или стерильную пробирку с плотной резиновой или корковой пробкой, залив ее сверху расплавленным парафином пли воском. Тот же материал, но для микроскопического исследования наносят тонким слоем на чистое предметное, предварительно обезжиренное и профламбированное на огне стекло, которое затем подсушивают на воздухе; стекла связывают попарно мазками внутрь, вложив между ними перекладины из спичек. Вместо предметного можно использовать кусочек оконного стекла, чисто вымыв его в теплом 2-3%-ном растворе питьевой соды и обезжирив в спирте с эфиром или в бензине. Такое стекло высушивают на воздухе и обжигают пламенем спиртовки, после чего на него наносят тонким слоем подлежащий исследованию материал,
Гной из глубоких полостей берут стерильным ватным тампоном на кусочке тонкой проволоки или на небольшой деревянной палочке, вделанной в ватную пробку стерильной пробирки. ,
Гной из невскрывшихся глубоких абсцессов берут проколом стенки абсцесса тонкой, длинной иглой, в стерильный 5-20-граммовый шприц. Затем гной сливают через эту же иглу в стерильную пробирку (или флакон), плотно закрыв ее стерильной ватной или корковой пробкой и залив сверху расплавленным парафином или воском. Место прокола предварительно выстригают и дезинфицируют, после взятия гноя .смазывают настойкой йода.
Кал берут из прямой кишки в небольшом количестве в стерильные пробирки или в такие же стеклянные баночки, плотно закрывающиеся пробками.
Мочу у большинства животных берут через катетер в стерильные флакончики емкостью 100-200 мл. Ее можно взять и без катетера, массажируя рукой мочевой пузырь через прямую кишку и вызывая этим мочеиспускание.
Для исследования на бешенство берут аммоновы рога, а на болезнь Ауески - продолговатый мозг. Их кладут в стерильные баночки и консервируют: для бактериологического исследования - 33%-ным водным раствором глицерина, для гистологического исследования - 10%-ным водным раствором формалина.
Если невозможно вскрыть черепную коробку с соблюдением всех мер предосторожности, в лабораторию посылают голову, целиком отделив ее от трупа. Отпрепарированную голову необходимо завернуть в марлю, пропитанную дезинфицирующим раствором, а затем в пергамент или клеенку, запаковать в плотный ящик и срочно отправить с нарочным в ветеринарную лабораторию. Руки необходимо защитить резиновыми перчатками или брезентовыми (кожаными) рукавицами и после этой работы вымыть и тщательно продезинфицировать, помня, что в слюне бешеных животных содержится вирус.
Внутренние органы - сердце, легкие, печень, селезенку, почки, лимфатические узлы, желудок, а также пораженные мышцы и др. ткани - для бактериологического и гистологического исследования берут маленькими кусочками в местах с наиболее типическим поражением на границе со здоровой тканью в стерильные баночки с плотно притертыми пробками. Части пораженного желудка, кишечника или кусочки некротизированных тканей вначале обмывают водой, затем просушивают ватными тампонами и также помещают в стерильные баночки.
Материал, взятый для бактериологического исследования в зимнее время, не консервируют, в теплое же время года заливают 33%-ным водным раствором глицерина; для гистологического исследования - 10%-ным водным раствором формалина.
Материал не следует консервировать при быстрой доставке его в лабораторию. Банки с материалом герметически закупоривают пробками, закрепляя их тонкой проволокой или шпагатом, а затем заливают сургучом или замазывают смесью воска с парафином.
Трубчатые кости отделяют от трупа, стремясь не повредить их концы, освобождают от мышц и сухожилий, заворачивают в марлю, смоченную раствором сулемы или фенола, и упаковывают в плотный ящик.
Ухо (для исследования па сибирскую язву) берут с той стороны, на которой лежал труп. Предварительно ухо перевязывают у основания в двух местах шпагатом и отрезают между перевязками. Участок кожи на трупе, где отрезано ухо, прижигают каленым железом. Отделенное ухо сначала заворачивают в марлю, смоченную раствором сулемы или фенола, а затем в пергаментную бумагу, после чего упаковывают в плотный ящик. Для проведения бактериологического исследования на сибирскую язву вместо уха можно послать кровь, взятую из него толстой иглой. Можно сделать небольшой, но глубокий надрез кожи, взять кровь и нанести ее толстыми мазками на несколько предметных стекол. Мазки высушивают на открытом воздухе и, не фиксируя их пламенем спиртовки, складывают на перекладинки спичек, затем заворачивают в пергамент и упаковывают в плотный ящик или коробку, в которой и отправляют с нарочным в лабораторию. Место надреза (или укола иглой) прижигают раскаленным железом.
Трупы поросят, ягнят, птиц, телят и жеребят, а также плоды абортировавших животных отправляют в лабораторию в целом виде в тех случаях, когда на месте невозможно стерильно взять материал.
Трупы и плоды животных предварительно обтирают и завертывают в мешковину, смоченную раствором фенола или креолина, а затем упаковывают в металлический или плотный деревянный ящик со стружками и опилками.
Пчелиный сот с погибшим расплодом заворачивают в пергамент или вощеную бумагу и плотно укладывают в деревянный * ящик на планки (чтобы сот не соприкасался с дном и крышкой ящика). Погибших пчел и маток пересылают в стеклянных, плотно закрывающихся баночках, наполненных медом.
Патологический материал пересылают в лабораторию с нарочным. Плотный материал (например, трубчатую кость) можно послать почтой, обеспечив надежную упаковку, исключающую возможность рассеивания инфекции. Верх посылки обозначают надписью. При подозрении на особо опасные инфекции (сибирская язва, сап, эмфизематозный карбункул, туляремия, бруцеллез, чума свиней и птиц, инфекционная анемия, инфекционный энцефаломиелит и бешенство) материал, взятый в стеклянную посуду, помещают в металлическую коробку, которую запаивают, пломбируют или опечатывают и упаковывают в деревянный ящик.
При отправке нарочным следует герметически упакованную посуду с патологическим материалом опечатать, завернуть в вату и уложить в деревянный ящик.
В лабораторию отправляют вместе с посылкой сопроводительный документ (направление), в котором указывают: 1) адрес лаборатории; 2) какой материал направляют для исследования и в чем он законсервирован; 3) от какого животного и кому оно принадлежит; 4) клинические признаки у больного животного; 5) основные патологоанатомические изменения, обнаруженные при вскрытии трупов на месте; 6) имеются ли еще в хозяйстве больные животные со сходными признаками (сколько); 7) предполагаемые причины падежа; 8) на какие заболевания необходимо произвести исследование. Сопроводительное письмо подписывает ветеринарный работник, направляющий материал. В письме указывают дату взятия и отправления материала.
Взятие крови для серологического исследования. Кровь животных берут стерильными иглами у лошадей, крупного рогатого скота, верблюдов и у других крупных животных, а также у овец, коз из яремной вены, у свиней - из копчика хвоста или из ушной вены. На месте взятия пробы шерсть выстригают и кожу протирают дезинфицирующим раствором или денатурированным спиртом. При взятии крови следят, чтобы капли ее не попали на землю; для этого на муфту иглы надевают небольшую резиновую трубку, конец которой опускают в пробирку. С этой же целью используют специальный прибор, в который с одного конца вставляют иглу, а с противоположной стороны - пробирку. Струю крови нужно направлять по стенке пробирки, чтобы избежать распада эритроцитов (гемолиза). Гемолизированная кровь для исследования непригодна.
Кровь, взятую зимой, сразу же ставят в теплое место для свертывания кровяного сгустка и отстаивания сыворотки. Кровь доставляют в лабораторию не позднее чем на 2-3-й день после ее взятия. Сохранять ее следует в темном и прохладном месте. В жаркую погоду при невозможности своевременной отправки крови для исследования ее необходимо консервировать 0,5%-ным раствором карболовой кристаллической кислоты на физиологическом (0,85?о-ном) растворе поваренной соли. С этой целью отстоявшуюся сыворотку крови пипеткой отсасывают и переносят в чистые пробирки, оставив в первоначальной пробирке кровяной сгусток. К 9 мл сыворотки крови добавляют 1 мл 5%-ного раствора карболовой кристаллической кислоты, пробирку тщательно встряхивают, плотно закрыв ватной пробкой. При малом количестве исследуемой сыворотки к 1 мл ее добавляют 0,1 мл указанного раствора карболовой кислоты. Консервированная сыворотка может сохраняться длительное время.
Пробирки с кровью упаковывают в вертикальном положении и отправляют в лабораторию с нарочным, предохраняя от замораживания и встряхивания. Гемолизированная, проросшая и покрытая сверху пленкой плесени кровь, а также помутневшая сыворотка давно взятой крови для серологического исследования непригодны.
На каждой пробирке с кровью ставят номер или кличку животного. Бумажную этикетку надписывают простым карандашом и прикрепляют ее резиновым колечком, плотно надетым на пробирку. Пробы с кровью направляют в сопровождении списка, составленного в 2 экземплярах. Одни из них с обозначением полученных результатов лаборатория возвращает лицу, направившему кровь на исследование.
[youtube.player]Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Васина Н. И., Смолянинов Ю. И.
Проведены бактериологические исследования возбудителей распространенных на территории Омской области бактериальных инфекционных болезней животных и птиц. Изучен нозологический профиль и структура этих болезней. Осуществлена их классификация по показателям локализации, механизму передачи и категориям возбудителя , позволяющая более эффективно осуществлять контроль эпизоотических процессов на территориальном и популяционном уровнях. На территории Омской области зарегистрировано 55 нозологических единиц болезней разных видов животных и птиц, в том числе 24 бактериальной, 27 вирусной, 2 хламидийной и по одной микозной и микоплазменной этиологии. Одиннадцать из зарегистрированных болезней относятся по международной номенклатуре и классификации заразных болезней животных, определенных международным эпизоотическим бюро, к группе В; восемь входят в число утвержденных Приказом МСХ РФ № 81 от 17.05.2005 г. в качестве карантинных и особо опасных.
Похожие темы научных работ по ветеринарным наукам , автор научной работы — Васина Н. И., Смолянинов Ю. И.
EPIZOOTOLOGIGAL ANALYSIS OF INFECTIOUS AGENTS IN ANIMALS AND BIRDS IN THE TERRITORY OF OMSK REGION
There was carried out bacteriological analysis of causative agents of animals and birds bacterial infectious diseases prevailing in the territory of Omsk Region. The nozologikal profile and structure of infectious agents has been studied
ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ ЖИВОТНЫХ И ПТИЦ НА ТЕРРИТОРИИ ОМСКОЙ ОБЛАСТИ
Ю.И. СМОЛЯНИНОВ, доктор ветеринарных наук зав. лабораторией Алтайский НИИСХ E-mail: [email protected]
Резюме. Проведены бактериологические исследования возбудителей распространенных на территории Омской области бактериальных инфекционных болезней животных и птиц. Изучен нозологический профиль и структура этих болезней. Осуществлена их классификация по показателям локализации, механизму передачи и категориям возбудителя, позволяющая более эффективно осуществлять контроль эпизоотических процессов на территориальном и популяционном уровнях. На территории Омской области зарегистрировано 55 нозологических единиц болезней разных видов животных и птиц, в том числе 24 бактериальной, 27 - вирусной, 2 - хламидийной и по одной микозной и микоплазменной этиологии. Одиннадцать из зарегистрированных болезней относятся по международной номенклатуре и классификации заразных болезней животных, определенных международным эпизоотическим бюро, к группе В; восемь - входят в число утвержденных Приказом МСХ РФ №81 от 17.05.2005 г. в качестве карантинных и особо опасных.
Ключевые слова: инфекционные болезни животных, возбудители, эпизоотологический анализ, нозологический профиль, нозологическая структура, эпизоотологическая классификация.
Диагностика инфекционных болезней животных основа системы противоэпизоотических мероприятий.
Для своевременной диагностики, профилактики и ликвидации заразных болезней животных необходимо проведение эпизоотологических исследований. Их результаты используются, как для теоретической разработки проблем инфекционной патологии, так и для определения основных противоэпизоотических мероприятий. В отдельных регионах страны - Республике Бурятия [7], Алтайском крае [1,5,6], Иркутской области [4] в той или иной степени эпизоотологическая классификация и систематизация инфекционных болезней проведена. В Омской области таких исследований ранее не проводили.
Цель наших исследований - проанализироватьэпи-зоотологическую ситуацию с инфекционными болезнями животных и птиц на территории Омской области.
Условия, материалы и методы. Анализ проводили по результатам комплексных за 2003-2010 гг. - бактериологических, биологических (биопроба на лабораторных животных), серологических, иммунологических (ИФА, ПЦР) исследований биоматериала (пробы органов и тканей, биологических жидкостей) от разных видов сельскохозяйственных животных (крупный и мелкий рогатый скот, свиньи, лошади), птиц, пушных зверей, промысловых и диких животных.
Используя [2,3] мы провели классификацию инфекционных болезней животных в Омской области с учетом трех основных принципов эпизоотологии: соответствие локализации возбудителя инфекции и механизма его передачи; по источнику возбудителя инфекции; по
категориям возбудителей. Кроме того, все болезни классифицированы по восприимчивости к возбудителю животных и человека на зоонозы (восприимчивые только животные) и зооантропонозы (восприимчивы животные и человек).
Результаты и обсуждение. По результатам исследований всего за 2003-2010 гг. на территории Омской области зарегистрировано 55 нозологических единиц болезней разных видов животных и птиц (см. табл.). При этом в последние годы их число расширяется. Так, в 2008 г. была изолирована культура возбудителя гемофилезной плевропневмонии свиней и бруцеллеза мелкого рогатого скота, в 2010 г. - культура возбудителя аэромоноза (краснухи) карповых.
Из всех нозологических форм, относящихся к болезням, свойственным нескольким видам животных, возбудитель одной бактериальной (стафилококкоз) участвовал в эпизоотологическом процессе на 7-и видах животных; одной вирусной (бешенство) - на 6-и видах. Возбудители таких бактериозов, как инфекционная энтеротоксемия, колибактериоз, стрептококкоз выявлены в организме 5-и видов животных; пастереллеза и сальмонеллеза - 4-х; листериоза и псевдомоноза -трех. Возбудители остальных инфекционных болезней классифицированы как свойственные только одному виду животных.
По отношению к природе возбудителей из общего числа инфекционных болезней животных 24, или 43,6 % относятся к бактериальным (бактериозы), 27 (49 %) -к вирусным (вирозы), 2 (3,6 %) - к хламидийным (хла-мидиозы) по одной (по 2,2 %) классифицированы как микозы и микоплазмозы.
Распределение инфекционных болезней по видам животных показало, что в организме крупного рогатого скота в эпизоотическом процессах участвуют 26 видов возбудителей инфекционных болезней, в том числе 15 (57,9 %) бактериальной этиологии, 9 (34,6 %) - вирусной и по одной (по 3,8 %) - микозной и хламидийной.
В организме свиней персистируют 18 видов возбудителей инфекционных болезней, в том числе 13 (72,2 %) бактериальных, 4 (22,2 %) - вирусных и 1 (5,6 %) - хламидийная.
Нозологический профиль инфекционных болезней птиц на территории области за анализируемый период обусловлен персистенцией 9-и (64,3 %) видов бактериальных, 4-х (28,6 %) вирусных и 1 (7,1 %) хламидийного возбудителя (всего 14 видов).
Эпизоотическая ситуация среди поголовья мелкого рогатого скота (овцы, козы) характеризовалась распространением 5-и видов возбудителей инфекционных болезней, в том числе 4-х бактериальной этиологии и одного - вирусной.
Из биоматериала от лошадей изолировано 8 видов возбудителей инфекционных болезней (5 бактериальных и 3 вирусных) от промысловых и диких животных -1, от пушных зверей - 3.
Согласно международной номенклатуре и классификации заразных болезней животных, определенных международным эпизоотическим бюро (МЭБ), к инфекционным болезням группы В, зарегистрирован-------------------------------------------- 63
Таблица. Нозологический профиль и классификация инфекционных болезней животных и птиц на территории Омской области в 2003-2009 гг.
Нозологическая форма болезни Регистрация болезни (+, -) Классификация МЭБ (грБ) Карантинные и особо-опасные Эпизоотологическая классификация по возбудителю*
>а‘3 ш а 3 і 8 мелкий рогатый скот І ло ы ? і 1і І Р 3"? .И °§ ск & I с прочие виды природа возбуди- теля способ передачи источ- ник воспри- имчи- вость
Аденовирусная инфекция КРС + В Р Д З
Актиномикоз + М Т Д З
Американский гнилец - - - - - - - - - + - - - Б Н ДД З
Аэромоноз карповых - - - - - - - - + - - - - Б А(Н) ДД З
Бешенство + - + + - - + + - - + + + В Н(Р) ДД ЗА
Болезнь Гамборо - - - - + - - - - - - + - В А Д З
Болезнь Марека - - - - + - - - - - - + - В Р(О) ДД З
Брадзот - - + - - - - - - - - - - Б А Д З
Бруцеллез + - + - - - - - - - - + + Б А(Н) Д ЗА
болезнь кроликов + + - В N Д З
Вирусная диарея КРС + В А Д З
гастроэнтерит свиней - + - В А Д З
мония - + - Б Р Д З
Г рипп лошадей - - - + - - - - - - - - - В Р(А) Д З
Г рипп птиц - - - - + - - - - - - - + В А(Р) ДД З
Дизентерия свиней (трепо-
немоз) - + - Б А Д З
Злокачественная катар.горячка + В N ДД З
Злокачественный отек + Б Н Д З
Инфекционная анемия ло-
шадей - - - + - - - - - - - - - В Т(А) Д З
хеит - - - - + - - - - - - + - В Р ДД З
Инфекционный ринотрахеит КРС + + - В Р ДД З
Инфекционная энтеротоксемия + + + - - + - - - - + - - Б А Д З
Колибактериоз + + - + + + - - - - - - - Б А Д З
Коронавирусный энтерит + В А ДД З
Лейкоз КРС + + В АНТЯ Д З
Лептоспироз + + - + - - - - - - - - + Б А(Н) ДД ЗА
Листериоз + + - - + - - - - - - - + Б А(Т) ДД ЗА
Некробактериоз + Б Н ДД З
Орнитоз (пситтакоз) - - - - + - - - - - - - + Х А(Р,Т) ДД ЗА
Оспа КРС + В Р(Н) Д З
Отечная болезнь - + - Б А Д З
Парагрипп-3 + В Р Д З
Парвовирусный энтерит - + - - - - - + - - - - - В А(Р,Н) Д З
Пастереллез + + - - + - - - - - + - - Б Р(А) Д З
болезни + + - + + - - - - - + - - Б АРН ДД З
Псевдомоноз + + - - + - - - - - - - - Б А Д З
свиней - + - - - - - - - - - + - В Р Д З
птиц - - - - + - - - - - - - - Мп Р(О) ДД З
ная инфекция + В Р Д З
Ринопневмония лошадей - - - + - - - - - - - - - В Р(А) Д З
Рожа свиней - + - - - - - - - - - - + Б А(РН) Д ЗА
Ротавирусная инфекция + + - В А Д З
Сальмонеллез + + - - + - - - - - + - - Б А ДД ЗА
Сибирская язва + + + Б АРТН ДД ЗА
Случная болезнь лошадей - - - + - - - - - - - + - Тр Н ДД З
Стафилококкоз + + + + + + - - - - + - - Б Н Д З
Стрептококкоз + + - - + + - - - - + - - Б А(Р) Д З
Столбняк - - - + - - - - - - - - - Б Н ДД З
Туберкулез + - - - + - - - - - - + + Б Р(А) ДД ЗА
Хламидиоз + + - - - + - - - - - - - Х А Д ЗА
II типа - + - В А Д З
Эмфизематозный карбункул + + Б А Д З
* Основной (дополнительный) способ передачи возбудителя: А - алиментарный, Р - респираторный, Т - трансмиссивный, Н - через наружные покровы (без участия переносчиков), О - трансовариальный, Я - ятрогенный (с участием человека), N - неклассифицированная болезнь. Источник возбудителя: Д - домашние животные (ктенонозы), ДД - домашние и дикие животные (ктенотерионозы). Восприимчивость к возбудителю: З - зооноз, ЗА - зооантропоноз. Природа возбудителя: Б - бактериоз, В - вироз, Х - хламидиоз, М - микоз, Мп - микоплазмоз, Тр - трепонемозомоз.
ным на территории Омской области в 2003-2010 гг., относятся одинадцать: бешенство, болезнь Гамборо, болезнь Марека, бруцеллез, вирусная геморрагическая болезнь кроликов, вирусный трансмиссивный гастроэнтерит свиней, инфекционный ларинготрахеит птиц, инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота, респираторно-репродуктивный синдром, сибирская язва и туберкулез.
Кроме того, 8 из обнаруженных - бешенство, бруцеллез, грипп птиц, листериоз, рожа свиней, сибирская язва, туберкулез и эмфизематозный карбункул - утверждены в качестве карантинных и особо опасных [8].
В структуре болезней, регистрируемых на территории Омской области за период 2003-2010 гг., превалируют зоонозы. К этой группе относятся 36, или 80 % всех инфекционных болезней разных видов животных и птиц, из них 16 (44,4 %) - это бактериозы, 18 (50 %) - вирозы и по одной (по 2,8 %) - микозы и микоплазмозы.
Г руппу зооантропонозов составляют 11 инфекций (20 %). К ним относятся бешенство, бруцеллез, лейкоз, лептоспироз, листериоз, рожа свиней, сальмонеллез, сибирская язва, туберкулез и хламидиоз и орнитоз.
По основному способу (механизму) передачи возбудителя почти половину всех нозологических форм - 22 (48,9 %) составляют болезни, передающиеся алиментарно, их них 14 относятся к бактериозам, 7 - к вирозам и одна - к хламидиозам.
Следует отметить, что наряду с основным механизмом передачи возбудителя, ряду болезней из этой группы присущи и дополнительные. Например, возбудители аэромоноза карповых и бруцеллеза, которые передаются от животного к животному алиментарно, могут дополнительно передаваться через наружные покровы (без участия переносчиков). При гриппе птиц и стрептококкозе в качестве дополнительного механизма передачи выступает респираторный путь, при листе-риозе - транмиссивный, при роже свиней и парвови-русном энтерите, а также лейкозе крупного рогатого скота - респираторный и через наружные покровы, при сибирской язве - респираторный,трансмиссивный и через наружные покровы.
Из болезней, при которых основной механизм передачи возбудителя аэрогенный, классифицированы 12
(26,7 %). При этом гриппу лошадей, ринопневмонии лошадей, туберкулезу и пастереллезу в качестве дополнительного, присущ алиментарный способ передачи возбудителя, оспе - через наружные покровы, болезни Марека и респираторному микоплазмозу птиц -трановариальный.
Передача возбудителя через наружные покровы свойственна для злокачественного отека, столбняка и некробактериоза. Они составляют 0,7 % всех инфекционных болезней. Для одной болезни (актиномикоз) характерен трансмиссивный способ передачи возбудителя и для одной (вирусная геморрагическая болезнь кроликов) механизм передачи невыяснен.
Распределение болезней по источнику возбудителя инфекции выявило следующие особенности. К наиболее многочисленной группе болезней, свойственных только животным, источником возбудителя которых служат только домашние (сельскохозяйственные) животные - ктенозам, относятся 27 (60 %) всех регистрируемых на территории Омской области. Источником возбудителей 18 (40 %) болезней могут быть и домашние, и дикие животные (ктенотериозы).
Выводы. По результатам анализа в организме крупного рогатого скота персистирует 29 видов возбудителей; свиней - 20; птиц - 15; лошадей - 11; прочих видов животных (декоративные и экзотические) - 9; мелкого рогатого скота, собак и кошек - по 5; пушных зверей - 4; промысловых и диких животных, рыб и пчел - по 1. Из болезней группы В, по международной классификации МЭБ, на территории Омской области регистрируются 14 и 11 относятся к карантинным и особо опасным. Нозологический профиль инфекционных болезней животных и птиц на территории Омской области многообразен и представлен 55 нозоформами, в том числе 24 бактериальной, 27 -вирусной, 2 - хламидийной и по одной микозной и микоплазменной этиологии. Анализ инфекционных болезней животных на территории Омской области по показателям локализации возбудителя и механизму его передачи и категориям возбудителя позволяют на территориально-популяционном уровне контролировать течение эпизоотических процессов большинства инфекций и своевременно проводить комплекс диагностических и противоэпизоотических мероприятий по видам и возрастным группам животных.
1. Инфекционные болезни животных, опасные для человека. - В.А. Апалькин, И.А. Бакулов, И.И. Гуславский, Д.И. Реут-ская. - М., 2006. - 206 с.
2. Бакулов И.А., Таршис М.Г. География болезней животных зарубежных стран / М.: Колос, 1971. - 200 с.
3. Эпизоотологический словарь-справочник/ Бакулов И.А., Г.Г. Юрков, В.А. Ведерников, Ф.М. Орлов. - М.: Россельхо-зиздат, 1986. - 188 с
4. Балыбердин Б.Н., Юшкова Л.Я. Государственный ветеринарный надзор за состоянием здоровья продуктивныхживотных в условиях Иркутской области //Актуальные проблемы ветеринарного обеспечения животноводства Сибири. - Новосибирск, 2006. - С.366-368.
5. Гуславский И. И., Фабер В. В. Эпизоотология инфекционных болезней свиней на Алтае// Эпизоотология и меры борьбы с инфекционными болезнями животных. - Новосибирск, 1985. - С. 8-12.
6. Гуславский И.И., Фабер В.В. Систематизация инфекционных болезней сельскохозяйственныхживотных//Особенности эпизоотического процесса и профилактика болезней на промышленных комплексах. - Новосибирск, 1988. - С. 28-33.
7. Муруева Г. Б. Анализ эпизоотической ситуации Республики Бурятия//Современные проблемы эпизоотологии. - Новосибирск, 2004. - С.161-165.
EPIZOOTOLOGIGAL ANALYSIS OF INFECTIOUS AGENTS IN ANIMALS AND BIRDS IN THE
TERRITORY OF OMSK REGION
N.I.Vasina, Yu.I. Smolyaninov
Summary. There was carried out bacteriological analysis of causative agents of animals and birds bacterial infectious diseases prevailing in the territory of Omsk Region. The nozologikal profile and structure of infectious agents has been studied.
Key words: infectious diseases, epizootological analysis, bacterial infectious agents.
[youtube.player]Читайте также: