Метапневмовирусная инфекция птиц это

Болезни сельскохозяйственных животных, в частности, птиц, разделяют на инфекционные, паразитарные и незаразные. Инфекционные считаются самыми опасными и порождаются вирусами и бактериями, которые проникают в организм. Одной из таких напастей является метапневмовирус.

Что такое метапневмовирус у птиц

Метапневмовирус птиц (МПВП) — возбудитель инфекционного ринотрахеита у пернатых, а также причина синдрома опухшей головы (SHS). Впервые он был зафиксирован ещё в 1970 году в ЮАР, но по сей день в некоторых странах его не зарегистрировали официально. Изначально считали, что это заболевание имеет бактериальную природу, однако позднее при помощи исследования эмбрионов птиц и фрагментов тканей из трахеи, выделили этиологический агент TRT, идентифицировав его как вирус. Изначально его отнесли к классу пневмовирусов, но после открытия подобных ему вирусных форм, его переквалифицировали в метапневмовирус.

Как происходит заражение

Заражение этим вирусом происходит горизонтально (от одной особи к другой через воздух или выделения). Основным способом передачи является прямой контакт заражённых птиц со здоровыми (через чиханье инфекция попадает на пищу, перья других птиц). Временными носителями могут выступать также вода и корм (штамм во внешней среде становится неустойчивым, поэтому вне организма долго не живёт).

Есть вероятность и вертикальной его передачи (от матери — потомкам). Вирус метапневмовируса находили на только что родившихся цыплятах, что свидетельствует о возможности заражения яиц. Способствовать дальнейшей передаче вируса могут даже люди, перемещая его на своей обуви и одежде.

Литература: Заболевания органов дыхания у детей. Неотложные состояния в детской пульмонологии / Ю.В.Марушко, С.А.Крамарев, Г.Г.Шеф, Т.Р.Уманец, Т.В.Марушко. — Харьков: Планета-Принт.

ЧТО ТАКОЕ МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ)?
– это респираторная болезнь птиц, преимущественно отряда
куриных,
которая
характеризуется
воспалительными
процессами в верхних дыхательных путях, инфраорбитальных
синусах, проявляется затрудненным дыханием, чиханием,
хрипами, назальными выделениями
У ИНДЕЕК – Ринотрахеит
(Turkey Rhinotracheitis- TRT)
У КУР – Синдром Опухшей
головы (Swollen Head
Syndrome- SHS)

4. МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ)

• Распространение
По всему миру. Регистрируется во многих странах с развитым птицеводством.
1970: Первый случай в Южной Африке
1981: Первый случай TRT во Франции у индеек
1985: Всплеск заболеваемости в Великобритании TRT у индеек и SHS у
бройлеров.
1986: появление первых вакцин
С 1997 г.: широкое распространение в Европе, США и Израиле у индеек и
цыплят. (с 1997 г. в США ежегодно инфицировуется 36-55% коммерческих стад
индеек. Ущерб — около 15 млн. долларов в год).
В России заболевание впервые зарегистрировано
Волгоградской и Ярославской областях.
в
1995-2000
гг.
в
Около 60% птицефабрик РФ являются серопозитивными по МПВИ, 17-43% птиц
имеют антитела к APV.
МПВИ чаще встречается в хозяйствах мясного направления, преимущественно
у кур родительских стад.
У птиц яичных пород течение асимптоматичное. Отмечается тенденция к
распространению болези.

Указанные клинические симптомы могут служить хорошим указанием на метапневмовирус птиц (aMPV), однако диагноз необходимо подтвердить данными лабораторных исследований. Идентификация вируса путем его выделения или ПЦР из соскобов из трахеи или пазух носа и/или выделений из носа. После заражения для выявления антител может использоваться ряд серологических методов (НВ, ИФА, МФА). Следует иметь в виду, что вакцины также индуцируют образование антител.

Диагностика

А) Клинические критерии:

Характерный эпиданамнез;
Синдром интоксикации, одышки;
Сочетание назофарингита, бронхита или бронхиолита и энтерита;
Гепатомегалия и, нередко, спленомегалия.

Б) Лабораторные:

– Для выявления РНК hMPV используют полимеразную цепную реакцию с гибридизацией и детекцией флуоресценции в режиме реального времени (ПЦР-ФРВ).

Клиническая картина

Инкубационный период составляет 1–3 дня, может удлиняться до 5–6 дней. Заболевание характеризуется широким диапазоном клинических проявлений, от инаппарантных и легких форм до поражения нижних отделов респираторного тракта в виде тяжелых бронхитов и пневмоний. Быстрое появление одышки, развитие гипоксии у детей требует срочной госпитализации. Развивающаяся дыхательная недостаточность в ряде случаев требует ИВЛ. Метапневмовирус человека играет определяющую роль в развитии БА. Кроме того, описан случай тяжелого энцефалита у ребенка с метапневмовирусной инфекцией.

У взрослых больных метапневмовирусная инфекция, как правило, протекает в виде острого респираторного заболевания. Однако у пожилых возможны бронхиты и пневмонии, осложненные дыхательной недостаточностью.

Метод контроля метапневмовирусу у бройлеров

Основной проблемой, связанной с МПО у бройлеров, есть респираторные симптомы. Для борьбы с названной инфекцией в цыплят-бройлеров действенным является вакцинация именно живыми вакцинами.

Применение инактивированных вакцин против МПО не рекомендуется по нескольким причинам:

она содержит риск со стороны качества тушки на забое из-за неабсорбированных остатков вакцины;
процесс вакцинации инактивированными вакцинами и вакцинация молодых цыплят масляными вакцинами вызывает стресс, что влияет на рост птицы и однородность партии;
иммуноглобулины класса Ys (IgYs) генерируются только инактивированными вакцинами или материнскими антителами. Они показали низкую эффективность в предотвращении инфекции дыхательных путей у индюшат и суточных цыплят после заражения вирулентными штаммами МПО;
метапневмовирус у птиц может заразить птицу с высокими титрами материнских антител;
Несмотря на то, что материнские антитела могут ограничить вирусную репликацию и экскрецию, они не предотвращают поражение верхних дыхательных путей. Это объясняется тем, что материнские антитела работают в период виремии, который наблюдается уже после развития патологических изменений в респираторных путях птицы.

Эффективность живых вакцин в основном заключается в формировании местного иммунитета в верхних дыхательных путях, который генерируется в тканях-мишенях. Этот иммунитет основывается на работе клеточно-опосредованного иммунитета и продукции секреторных иммуноглобулинов класса А (sIgA) в слизистой оболочке.

Учитывая то, что важнейшим является формирование местного иммунитета в тканях-мишенях, методом выбора для вакцинации является непосредственное введение вакцины в целевые для репликации вируса в ткани.

В этом случае для формирования местного иммунитета в верхних дыхательных путях лучшими методами вакцинации живой вакциной против метапневмовируса является интраокулярная вакцинация, или крупнокрапельний спрей.

На этом и закончим рассказ про болезнь Метапневмовирус у птиц и способы диагностики, вакцинации живыми вакцинами.

Удачи всем и здоровья вашим пернатым!

В комментариях вы можете добавить свои фото кур несушек, петуха и цыплят! Или другой домашней птицы. Нам интересно, какой у вас курятник?
Понравилась статья? Поделись с друзьями в соц.сетях:

Присоединяйтесь к нам , читайте про кур!

У молодых птиц наблюдаются респираторные симптомы:

У взрослых кур-несушек может наблюдаться снижение яйценоскости до 70% и повышение доли яиц с низким качеством скорлупы.

Заболеваемость, как правило, высока (до 100%); смертность варьируется от 0,5 до 50% в зависимости от наличия вторичных инфекций (в частности, IBV, E. coli) и микроклимата на ферме.

8. МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ)

Устойчивость возбудителя
Вирус сохраняется:
— при температуре 37оС- 24 ч
— при 18-22оС- 30 сут
— при 4оС – 150 сут
— при минус 20-70оС – 8 мес
— на деревянных поверхностях – 1 сут, на картонных прокладках
для яиц – 6 сут
Чувствителен к хлороформу, этиловому спирту, органическим
кислотам и др.. Обычные дезинфектанты инактивируют вирус
полностью в течение 10 мин при 20оС.

МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ)
Особенности эпизоотологии
• Восприимчивы в естественных условиях — индейки, куры, фазаны,
цесарки, страусы, утки (канадские казарки, синекрылые очерки).
Голуби и гуси – невосприимчивы.
• Болеют птицы всех возрастов. Наиболее тяжело болезнь протекает у
индеек в возрасте 1-42 сут, у бройлеров – в 28-42 сут, у мясных кур –
175-245 сут (25-35 недель). С увеличение возраста восприимчивость
снижается.
• Распространение инфекции.
Высокая контагеозность (инфицируется сразу много стад).
Только горизонтальная передача возбудителя.
Прямой контакт инфицированных и восприимчивых птиц.
Передача воздушно-капельным путем.
Возможна передача через персонал и оборудование.
• Участие диких и синантропных птиц в распространении вируса
(РНК APV обнаружена у воробьев, ласточек и скворцов)
• Сезонность: весенне-летний
октябрь-ноябрь).
период
(80%
вспышек-
март-май,

10. Патогенез

МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ)
Патогенез
Активный эпителий
• Попадание вируса в организм и
размножение в верхних
дыхательных путях
• Поражение эпителия, выход из
клетки, элиминация во внешнюю
среду
• Осложняющие факторы
(секундарные инфекции и др.)
Мертвые клетки эпителия + Цилиостаз

11. Осложняющие факторы

МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ)
Осложняющие факторы
• Факторы инфицирования
▫ Вирусы
Парамиксовирус (NDV)
Грипп
ССЯ-76
Инфекционный бронхит кур
(задерживает размножение
APV и выработку антител)
▫ Бактерии
E. Coli
Ornithobacterium
rhinotracheale
Bordetella avis
Mycoplasma gallisepticum
Другие (стафилококки,
стрептококки, гемофильные
бактерии)
• Факторы внешней среды
▫ Помещение
▫ Сезон, климат
▫ Содержание
Вентиляция
Температура
Влажность
Запыленность
Наличие аммиака
Болезнь, вызванная только одним пневмовирусом протекает в легкой
форме
При наличии осложняющих факторов протекает тяжело и сопрвождается
значительной гибелью поголовья

12. Клинические признаки

Поражение верхних дыхательных путей:
чихание, кашель, трахеальные хрипы, носовые
истечения, конъюнктивиты, опухание
подглазничных синусов, подчелюстной отек,
отиты, опухание пери- и инфраорбитальных
синусов, искривление шеи, дезориентация,
депрессия

МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ)
Клинические признаки у цыплят
Возраст – 4-6 недель.
Заболеваемость

100%.
Смертность – 4-90%.
Респираторные расстройства
(чихание, кашель, хрипы) – слабые.
Выражены
конъюнктивиты
(покраснение
конъюнктивы,
миндалевидные глаза), слезотечение.
Подкожные отеки в области головы и
подчелюстного пространства,
односторонние или
двусторонние периорбитальные
синуситы.

15. МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ) Клинические признаки МПВИ, осложненной секундарной микрофлорой

Искривление шеи, поражение черепа,
скопление гноя в области решетчатой
кости, наличие серо-фибринозного
экссудата в синусах, др.пораженных
органах и тканях, гемосидероз (синезеленый цвет головы в результате
выпотевания фибрина и крови в
подкожную клетчатку)

16. Клинические признаки МПВИ у кур-несушек:

МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ)
Клинические признаки МПВИ у кур-несушек:
Респираторные признаки, синуситы, угнетение, диарея (у 50% кур на 4-11 день
после заражения), шаткая походка, искривление шеи средней или тяжелой
степени проявления зависят от:
– наличия осложняющих факторов
– иммунного статуса
– иногда полностью отсутствуют
Яйценоскость
– Снижение на 5-30% в течение 2-3 недель
– Ухудшение качества яиц
– Поражения яйцеводов (инволюция)

34. Профилактика

Соблюдение ветеринарно-санитарных правил
Вакцинация живыми и инактивированными вакцинами в
зависимости от группы птицы и серотипа
циркулирующего возбудителя
Важен местный иммунитет
Вакцинация проводится без учета уровня материнских
антител
Не применять живую вакцину одновременно с другими
респираторными вакцинами
Вакцинация родительского стада не защищает
бройлеров. Защита бройлеров – вакцинация бройлеров
При осложнении бактериальной флорой –
антибиотикотерапия

МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ)
Диагностика
На основании эпизоотологических данных, клиникопатологоморфологических признаков и результатов лабораторных
исследований
Подтверждение в лаборатории:
1. Выделение и идентификация вируса (сложное, т.к. вирус выделяется
из организма в течение 3-5 дней)
Патматериал-соскобы или смывы из носа, носовых пазух, гортани и
трахеи (доставляется в лабораторию пораженная голова с шеей).
Заражают в желточный мешок СПФ-эмбрионы кур и индеек, культуры
фибробластов эмбрионов кур и индеек, эмбрионально-трахеальную
органную культуру индеек, перевиваемые линии клеток- VERO (почка
африканской зеленой мартышки), BGM (почка зеленой мартышки), MA104 (фетальная почка макака-резус).
Идентификация возбудителя возможна только в серологических и
молекулярно-биологических тестах.
2. Обнаружение возбудителя
▫ПЦР (ОТ-ПЦР, ревертазная ПЦР)- в течение 19 дней после заражения
•Оперативность и простота
•Можно дифференцировать подтипы
•Исследуют трахеальные мазки (при проявлении первых клинических
признаков)

32. ДИАГНОСТИКА И ПРОФИЛАКТИКА СМЕШАННЫХ РЕСПИРАТОРНЫХ БОЛЕЗНЕЙ ПТИЦ

Диагностика
исследования парных сывороток в ИФА
(подтипы А и В)
молекулярно-биологические методы
(ПЦР)
изоляция возбудителя в культуре клеток
VERO
в экспериментальных условиях
затруднительно воспроизвести
заболевание на цыплятах с помощью
только вируса APV

33. МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ)

Диагностика
3. Серологические исследования
ELISA (СИНКО-А, BioChek- А и В, IDEXX- А,В и С, ВНИИЗЖ-В,
ВНИВИП-В)
Результаты исследования сывороток крови на
наличие антител к пневмовирусу птиц
% положительных партий
% положительных проб
80
70
60
%
50
40
30
20
10
0
Возраст (сут)
9
19
29
49
99
149
199
249
299
349
450
Длительная сероконверсия (минимум 3 недели)
К моменту убоя бройлеров антитела заметно не прирастают
Сложно определять у несушек, так как необходимо иметь несколько проб
для отслеживания

Специфическая профилактика
живые и инактивированные вакцины
генноинженерные вакцины
вакцинация индюшат в суточном возрасте
вакцинация цыплят в суточном возрасте имеет
определенные сложности ввиду насыщенности
схемы профилактики ранними иммунизациями
против ИБК и НБ
стратегия иммунизации сходна с
иммунопрофилактикой ИБК
способ применения вакцины in ovo
Отмечена интерференция между вирусами
ИБК и APV — первый угнетает репликацию
второго в трахее. Это имеет принципиальное
значение при составлении программ
вакцинопрофилактики

38. МЕТАПНЕВМОВИРУСНАЯ ИНФЕКЦИЯ (МПВИ)

39. Вакцинация спреем в хозяйстве :

• Специальное оборудование для
вакцинации
• Размер частиц 120-150 микрон
• Использование синего красителя
▫ Видна обработанная птица
▫ Контроль за вакцинированной
птицей

40. Во ВНИВИП

Разработаны живая вакцина содержащая серотип А или
В
Разработана инактивированная вакцина, содержащая
серотип А или В, или содержащая оба серотипа
Разработан диагностический набор для ИФА для
выявления антител в сыворотках крови
Проводятся вирусологические и молекулярнобиологические исследования по выделению и типированию
метапневмовируса

Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Ивлева О.В.

Похожие темы научных работ по ветеринарным наукам , автор научной работы — Ивлева О.В.

ДИАГНОСТИКА МЕТАПНЕВМОВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ ПТИЦЫ

Луганский национальный аграрный университет, г. Харьков, Украина, 61000

(Поступила в редакцию 04.04.2019)

Развитие птицеводства на промышленной основе требует совершенствования методов диагностики заболеваний. Большая концентрация поголовья на ограниченной территории способствует быстрому распространению ранее неизвестных болезней, которые наносят значительный экономический ущерб. Необходимость разработки и внедрения в практику новых знаний о диагностике малоизученных болезней птицы вызвана также и изменениями эпизоотологии, клинического течения и активизацией тех из них, которые в прошлом не вызывали серьезного экономического ущерба.

Первичная вирусная инфекция часто осложняется вторичной бактериальной и вирусной инфекцией со сложной симптоматикой. А течение инфекционных болезней в субклинической, латентной и ассоциированной формах, затрудняет их диагностику и профилактику. Особого внимания заслуживают инфекционные болезни, связанные с поражением респираторного тракта, при которых с помощью воздушно-капельной передачи происходит быстрое распространение инфекции на большое поголовье птицы, независимо от системы содержания.

В хозяйствах Украины зарегистрировано течение метапневмовирусной инфекции на фоне вирусо-бактериозов птицы. Количество положительно реагирующих на заболевание достигало 100 %. Для диагностики инфекции у индеек и кур в Луганском НАУ разработан метод ИФА.

Ключевые слова: мониторинг, инфекция, секундарная микрофлора, индейки, куры, ИФА.

The development of industrial poultry farming requires the improvement of methods for diagnosing diseases. A large concentration of poultry in a limited area contributes to the rapid spread of previously unknown diseases that cause significant economic damage. The need to develop and put into practice new knowledge about the diagnosis of poorly studied poultry diseases is also caused by changes in the epizootology, clinical course and activation of those that did not cause serious economic damage in the past.

Recently, more and more researchers have noted the spread of a new infectious disease of turkeys, broiler chickens and laying hens, which is characterized by lesions of the upper respiratory tract and "swollen head syndrome ". It has been established that the etiological factor of this disease is metapneumovirus.

Primary viral infection is often complicated by a secondary bacterial and viral infection with complex symptoms. And the course of infectious diseases in the subclinical, latent and associated forms makes it difficult to diagnose and prevent them. Of particular note are infectious diseases associated with lesions of the respiratory tract, in which airborne transmission leads to the rapid spread of infection to a large number ofpoultry, regardless of the housing system.

In the farms of Ukraine, a course of metapneumovirus infection is registered against the background ofpoultry bacteriosis. The number ofpositive reactions to the disease reached 100%. For the diagnosis of infection in turkeys and chickens, Lugansk NAU developed an enzyme immunoassay method.

Key words: monitoring, infection, secondary microflora, turkeys, chickens.

Значительной экономической проблемой для фермеров, которые занимались разведением индеек, явилась МПВИ в штате Миннесота за период 1997-2002 годы [4].

Тяжесть болезни и ее распространение зачастую зависели от нарушений ветеринарно-санитарных правил, ослабление резистентности организма птицы.

В последнее время МПВ-инфекция все больше распространяется среди птицы, особенно индеек, частных хозяйств Украины, где не проводятся диагностические исследования.

В настоящее время на вооружении научно-исследовательских и производственных ветеринарных лабораторий в Украине отсутствуют стандартные отечественные диагностические наборы для экспресс-диагностики МПВИ птицы, а зарубежные аналоги не доступны для широкого круга ветеринарных лабораторий. Поэтому, перед нами стала задача разработать отечественный метод ИФА, который по своим характеристикам не уступали бы импортным тест-системам. Таким образом, целью наших исследований было изучить распространение метапневмовирусной инфекции в птицеводческих хозяйств разных форм собственности в Харьковской области и усовершенствовать диагностику данного заболевания.

Вирусологические и бактериологические исследования проводили по общепринятым методикам [8]. Для бактериологических исследований использовали типоспецифические колибактериозные и сальмонеллезные сыворотки, глюкозу, сыворотку лошадей; питательные среды МПБ, МПА, Эндо, Висмут-Сульфитный агар. Для вирусологических исследований - куриные 9-10-суточные, перепелиные 6-суточные и гусиные 12-суточные коммерческие эмбрионы, свободные от патогенной микрофлоры и специфических антител к метапневмо- и реовирусу, изоляты вирусов, первичную культуру клеток куриных и гусиных эмбрионов (КК ФЭК, ФЕГ). Патологический материал, отобранный от клинически больной или погибшей птицы, хранили при минус 20 °С. С целью накопления вируса использовали фибробласты 10-суточных куриных, 6-суточных перепелиных эмбрионов, свободных от специфичных антител к метапневмовирусу, и лиофилизированный штамм PVT-09/B метапневмови-руса индеек. Для ИФА- метода наработанный антиген инактивировали этиленимином производства института физической химии (г. Москва), очищали и концентрировали по схеме: первичная очистка вируса (при 1000-2000 g в течение 20 мин), концентрирование (с ПЭГ-6000 в концентрации 7 % и центрифугированием в течение 30 мин. при 12000 g.) и завершающая очистка (при 70000-76000 g при + 4 °С через 20 % раствор сахарозы в течение 2 час.). Степень очистки контролировали с помощью электронной микроскопии методом негативного контрастирования [9].

Во время исследований использовали 0,05 М Трис - НС1 з 0,2 М NaCl рН 7,4 - 7,6; 0,01 М карбо-натно - бикарбонатный буфер рН 9,5-9,6 для сенсибилизации антигена на планшет; опытные, контрольные сыворотки и антиген, 0,1 % твин-20 с 10 % сывороткой крови лошади; отмывку сорбента от компонентов, которые не связались, проводили раствором 0,05 М трис - НС1 с 0,2 М NaCl и 0,1 % твин 20, рН 7,4-7,6; в качестве субстрата использовали: 2,2'-azino-di (3-ethylbenzthiazoline-6-sulfonate)

Сенсибилизацию планшетов, внесение исследуемых сывороток на планшет, определение рабочих разведений антигена проводили по методике, разработанной в ГИСП НААН (2012) [10].

Эпизоотологический мониторинг вирусных и бактериальных заболеваний проводили в течение 2016-2018 гг. в частных птицеводческих хозяйствах различных регионов Харьковской области, где птицу против вирусных инфекций не прививали.

В 2017 серологическими исследованиями от индюков и кур было выявлено 90-100 % положительно реагирующих на МПВИ с титрами антител соответственно 2843 - 21580 и 1380 - 7350 (ИФА), на реовирусную инфекцию (АРВИ) - 1278-7430 и микоплазмоз (60-80 %) - 1757-21769. С помощью эритроцитарного диагностикума в РНГА были выявлены положительные титры антител к МПВ и АРВ как у индюков, так и гусей, которые колебались от 1: 8 (3 lоg) до 1: 128 (7 lоg) (табл.1).

Таблица 1. Серологические исследования

Вид птицы Титры антител

№ № К-во Возраст ИФА РНГА

п/п хоз-в проб птицы МПВИ (IDEXX) АРВИ (ИП НААН) МПВИ АРВИ

1 индейки 50 170 2843 -21580 - 1:8 (3 tog) - 1:128 (7tog) 5,75+ 0,59 1:16 (3tog) - 1:64 (7tog) 4,1+0,68

2 1 гуси 50 170180 - - 1:16 (3 tog) - 1:64 (7tog) 4,1+0,68 1:8 (3 tog) - 1:128(7 tog 5,75+ 0,59

3 гуси 50 210 - - 1:16 - 1:128 5,1+0,74 1:8 - 1:64 5,05+ 0,79

4 2 куры 30 250 4837235 12787430 - -

5 3 индейки 30 480 1380 -7350 - - -

Таким образом, согласно результатам серологических исследований, выявлены титры антител были подобные как при использовании РНГА, так и ИФА-метода, а полученные показатели свидетельствовали циркуляции полевого метапневмовируса в хозяйствах среди индеек и гусей.

При клиническом осмотре птицы выявляли особей с синуситами, конъюнктивитами, кашлем, хрипами. Количество погибших индеек колебалось от 1,7 % до 8 %. Среди кур и гусей погибших не наблюдали, но были обнаружены особи с хромотой и отставшие в развитии.

В течение двух лет в этом же хозяйстве наблюдали гибель индюшат (2 %) и гусят 5-суточного возраста (1,8 %), полученных от родителей положительно реагирующих на МПВ- и АРВ-инфекции, пато-логоанатомические изменения которых характеризовались слабым скелетом, пневмонией, энтеритами, точечными или полосчатыми кровоизлияниями на мышцах груди или голени или бедра, подкожной воспалительной инфильтрацией.

Бактериологическими исследованиями от больной птицы изолировали патогенные серотипы E.coli (О115, О78, О126), стафилококки, стрептококки, которые были низко чувствительны к испытуемым антибиотикам (13-16 мм), Pseudomonas aeruginosa - (18-20 мм).

При изоляции МПВ нарушения 80-90% монослоя ФЭК наблюдали на 4-5 сутки после заражения. Инфекционный титр вируса на КК ФЭК составил 2,8 lg ТЦД50/см3. Вирусу, изолированному от цыплят, присвоено название шт.РУОД-16.

Изоляцию реовируса от индюшат и гусят осуществляли на 9-суточных эмбрионах кур и 12-суточных эмбрионах гусей, проведением 3 слепых пассажей. При вскрытии инфицированных эмбрионов были обнаружены патогномоничные для реовируса изменения (увеличение и кровенаполнение печени с желтым цветом ее правой доли, точечные кровоизлияния на мышцах груди) (рис. 1).

Рис. 1. Точечные кровоизлияния на мышцах груди гусиного эмбриона

Ассоциированное течение вирусных (АРВИ и МПВИ) и бактериальных (Е.соН, стафилококк, стрептококк, синегнойная палочка) инфекций и патогномоничность их признаков затрудняет диагностику из-за отсутствия тест-систем, которые были бы доступны для лабораторий ветеринарной медицины, что привело к необходимости разработать отечественный ИФА-метод для контроля МПВ-инфекции.

Основными этапами разработки было: изготовление специфических (антиген, контрольные сыворотки крови) и подбор неспецифических (буферные растворы, субстрат, коньюгат) компонентов и определение оптимальных условий проведения реакции.

Для изготовления МПВ-антигена в качестве сенситина использовали производственный штамм РУТ- 09 / В метапневмовируса, который хранили в лиофилизированном состоянии при температуре плюс 8 °С. Для инактивации штамма РУТ-09 / В использовали 0,1 % концентрацию этиленимина при температуре 37,5 (0,5) °С в течение 24 часов. Штамм антигенно активный, и после 3-кратной иммунизации очищенным, концентрированным и инактивированным пневмовирусным антигеном с инфекционным титром 4,33 ± 0,5 ^ LD50/см3 в сыворотке крови цыплят были обнаружены специфические АТ в титрах 1: 3200, индюшат - 1: 6400 (ИФА, ГОЕХХ). Антигенные свойства штаммов РУ^-16 и РУТ-09/Б метапневмовируса изучали на цыплятах в возрасте 30 суток. За индукцией специфических антител наблюдали каждые 14 дн. при 3-кратной их иммунизации (рис. 2).

Р 1500 | 1000 н 500 0

Рис. 2. Индукция специфических антител при иммунизации цыплят штаммами РУСИ-16

и РУТ- 09 / В метапневмовируса

При разработке отечественной тест-системы нами было подготовлено лабораторную панель диагностических сывороток с различными титрами антител к МПВ. Специфичность очищенного и концентрированного антигена (АГ) МПВ проверяли в непрямом варианте ИФА с использованием различных положительных референтных сывороток крови кур (табл. 2).

Таблица 2. Определение метапневмовирусного антигена на специфичность

№ з/п Гипериммунная сыворотка к возбудителям Титры антител (1ФА)

1 реовирусная инфекция кур Не можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

5. Наливайко, Л. I. Етзоотолопчне обстеження птах1вничих господарств Украши щодо метапневмовирусно! шфекци / Л. I. Наливайко, Ю. Ю. Нжолаенко, А. Л. Бондаренко, Д. А. Рябека // Ветеринарна медицина Украши. - 2011. -№ 1. - С. 9- 11.

6. Пархоменко, Л. I. Серолопчний мониторинг птиц щодо метапневмовiрусноl шфекци / Л. I. Пархоменко, Р. А. Дубш // Науковий вюник Льв1вського нацюнального ушверситету ветеринарно! медицини та бютехнологш iменi С. З. Гжицького: зб. наук. праць / редк. склад В. В. Стибель. - Льв1в, 2011. - С. 349-353.

7. Дубш, Р. А. Виявлення збудника метапневмовiрусноl шфекци у декоративно! птицг / Р. А. Дубш // Промислове i декоративне птаывництво: проблеми та перспективи: матерiали мiжнародноl науково-практично! конференцп, Кам'янець-Подшьський, 12-13 жовтня 2011 р. / Подшьський державний аграрнотехшчний утверситет ; редкол.: М. I. Бахмат [та шт.].

- Кам'янець-Подшьський, 2011. - С. 19-21

8. Головко, А. Н. Способы и методы культивирования вирусов / А. Н. Головко // Микробиологические и вирусологические методы исследования в ветеринарной медицине : справочное пособие / А. Н. Головко - Харкв, 2007. - С. 173- 192.

9. Рябшш, С. В. Очищення та концентрування антигену реовiрусноl шфекци птиц для конструювання дiагностикуму ГОА / С. В .Рябшш // Проблеми зоошженерп та вет.медицини. - 2011.- № 23.- С. 203-205.

10. Рябинин, С. В. Тест-система для определения антител к возбудителю реовирусной инфекции кур / С. В. Ряби-нин // Вестник ветеринарии. - 2013.- № 66.- С. 11-14.

Инфекционное воспаление носа и трахеи птицы — Avian Rhino Tracheitis (ART). Это название объединяет два заболевания: воспаление носа и трахеи у индюков (Turkey Rhino Tracheitis) и синдром опухшей головы у цыплят (Swollen Head Syndrome).

Инфекционное воспаление носа и трахеи птицы — это вирусное заболевание различных пород птицы, характеризующееся респираторными симптомами и вызывающее у цыплят синдром опухшей головы.

Историческая справка, распространение и экономический ущерб. В 1971 г. в Южной Африке у цыплят бройлеров был зарегистрирован первый случай заболевания синдромом опухшей головы. В 1984-1985 гг. вспышки этого заболевания регистрировались в родительских стадах бройлеров в Великобритании, Франции и других странах Западной Европы.

Первое описание воспаление носа и трахеи у индюков также было сделано в Южной Африке. В 1981 г. появились сообщения о данном заболевании у индюков во Франции, в 1985 г. — в Великобритании.

В последующем инфекционное воспаление носа и трахеи птицы было зафиксировано у бройлеров на Ближнем Востоке, в Южной Африке, а у несушек — на территории Европы. В 1993-1994 гг. оно регистрировалось у товарной птицы мясного направления в Великобритании и во Франции. С 1994 г. заболевание получило распространение во многих странах Северной Африки, Ближнего Востока, Азии, Центральной и Южной Америки, а также в США.

Заболевание вызывает серьезные экономические потери из-за общего ослабления организма, спровоцированного поражениями дыхательного тракта, и ведет к падению продуктивности взрослой птицы.

Возбудитель — РНК-содержащий вирус, относящийся к пневмовирусам — Avian Pneumovirus.

Вначале были установлены 2 подгруппы вируса А и В. Однако позднее от индюков в штате Колорадо был выделен штамм вируса, который получил название С. Вирус штамма С примерно на 60% отличается от подтипов А и В по структуре матричных генов.

Патогенез не изучен.

Эпизоотологические данные. Заражению подвергаются цыплята в возрасте 5-6 месяцев и молодые индюки. Основной путь распространения инфекции — горизонтальная передача от птицы к птице, а также с контаминированной водой и кормом, предметами ухода, обслуживающим персоналом. Заболеваемость колеблется от 10% до 75%, повышенная смертность отмечается обычно у молодняка и составляет 3-7%.

На тяжесть инфекционного воспаления носа и трахеи птицы влияет много факторов: технология выращивания птицы, степень бактериального и микоплазматического загрязнения, воздействие других вирусов, циркулирующих в хозяйстве.

Для заболевания синдрома опухшей головы у цыплят необходимо не только заражение пневмовирусом, но и воздействие других болезнетворных факторов, в том числе (всегда!) Е. coli .

Клинические признаки. У молодых индюков болезнь проявляется со стороны дыхательных органов и сопровождается кашлем, чиханием. Также отмечаются хрипы, носовые истечения, конъюнктивиты, опухание подглазничных синусов. У цыплят при синдроме опухшей головы наблюдается опухание пери-и инфраорбитальных синусов, искривление шеи, припухлость вокруг глаз и верхней части головы, выделения из носа, глаза полузакрыты, воспаление конъюнктивы глаза, гнойный отит. Больная птица отстает в росте, развивается истощение и анемия. У зрелых птиц после начала яйцекладки отмечают снижение яйценоскости и выводимости цыплят.

Патологоанатомические изменения. При вскрытии трупов павших цыплят отмечают следующее: атрофию тимуса, бурсы, слепокишечных и пищеводных миндалин, серозный отек подкожной клетчатки головы и век, серозно-катаральный конъюнктивит, блефарит, ринит, трахеит, гнойный отит, изменение цвета костного мозга и жировые отложения в нем, истощение, анемия, отставание в росте. В случае синдрома опухшей головы в тканях отекшей головы находят гнойный или фибринозный подкожный экссудат. При осложнении секундарной инфекцией (Е. coli) характерно наличие аэросаккулита, перигепатита, перикардита. У цыплят отмечаются застойные явления в легких, на которые указывает фибринозный экссудат в плевральной полости.

Иммунитет. Локальное образование антител в верхних дыхательных путях происходит довольно быстро, что играет существенную роль в противодействии болезни на фоне птичьего пневмовируса. Высокий уровень антител, нейтрализующих вирусы, содержится в слезах, очень важных для процесса выздоровления.

Уровень антител к птичьему пневмовирусу нарастает медленно по сравнению с реакцией на другие вирусы респираторных заболеваний, особенно у цыплят, и поэтому он почти не имеет значения для предупреждения этих заболеваний. Однако эти антитела очень важны для защиты яйцевода птиц в период яйценоскости. Определенную роль играет и клеточный иммунитет.

Диагностика. Диагноз ставится комплексно, проводятся вирусологические, серологические исследования. Наиболее точный диагноз может быть получен при выделении вируса. Обычно вирус удается выделить из трахеи или из пазух путем прививания его к трахее зародыша (например, метод ТОС), однако для этого требуется материал с начальной фазы инфицирования.

Иммунофлюоресцентный анализ мазка с трахеи или ее фрагмента является очень быстрым способом диагностики, однако и он может применяться только на начальной стадии болезни.Практическое значение имеет полимеразная цепная реакция (ПЦР), с помощью которой можно определить три типа птичьего пневмовируса. Для обнаружения антител можно использовать тест ELISA .

Лечение не разработано. Для профилактики вторичных бактериальных инфекций применяют антибиотики широкого спектра действия.

Специфическая профилактика. Для специфической профилактики разработаны живые и инактивированные вакцины. Живые вакцины различаются типом, происхождением и степенью ослабленности вируса.

Профилактика направлена на соблюдение технологии содержания и кормления птицы, особое внимание при этом обращают на повышение резистентности организма.

Читайте также: