Возбудитель пастереллеза микробиология ветеринария
Пастереллез (pasteurelesis) – инфекционная болезнь многих видов млекопитающих и птиц, характеризующаяся при остром течении явлениями септицемии, геморрагического диатеза, при подостром и хроническом – крупозной или катаральной пневмонией, артритами, маститами, кератоконъюнктивитами, реже энтеритами.
Регистрируется во всех странах мира, в том числе и республике Беларусь.
Экономический ущерб складывается из падежа больных животных, вынужденного убоя, снижения прироста массы животных, затрат на лечение, общую и специфическую профилактику и ликвидацию болезни.
Этиология. Возбудитель болезни (Pasteurella multocida 4 cерологических вариантов В, А, Д, и Е и Pasteurella haemolytica серологических вариантов А и Г) представляет собой мелкую полиморфную палочку, грамотрицательную, неподвижную, не образующую спор. Устойчивость пастерелл невысокая. В навозе, воде пастереллы сохраняются до 2-3 недель, в трупах – до 4 мес. Все общеизвестные дезинфицирующие вещества губительно действуют на возбудителя, он чувствителен к антибиотикам.
Эпизоотологические данные. К пастереллезу восприимчивы все виды домашних животных. Источником возбудителя инфекции являются больные и переболевшие животные, а также пастерелоносители. Пастереллоносительство может продолжаться до года. Факторами передачи возбудителя инфекции являются контаминированный воздух, корма, предметы ухода и др. Заражение происходит аэрозольным и алиментарным путем, а также через поврежденную кожу. Пастереллез относят к факторным болезням. Для болезни характерна весенне-осенняя сезонность и стационарность. Болезнь протекает, как правило, в виде энзоотий, летальность от 10 до 75% и выше.
Патогенез. Пастереллы проникают в организм респираторным или алиментарным путем, реже – через повреждения кожного покрова. Генерализация инфекционного процесса способствует подавлению фагоцитоза, развитию септицемии, интоксикации, что ведет к повреждению кровеносных сосудов, появлению отеков и геморрагического диатеза. При подостром или хроническом течении – развивается крупозное или катарально-гнойное воспаление легких.
Течение и симптомы болезни. Инкубационный период продолжается от нескольких часов до 2-3 дней. Болезнь протекает сверхостро, остро, подостро и хронически. У крупного рогатого скота различают грудную, отечную и кишечную формы. У больных животных отмечают повышение температуры тела до 41-42 °С, учащение пульса, общую слабость, отсутствие аппетита, отеки в области межчелюстного пространства, подгрудка, конечностей (отечная форма), частое и затрудненное дыхание, сухой кашель, пенистое истечение из носа (грудная форма), прогрессирующую анемию, запор, затем понос, в фекалиях имеются примеси крови (кишечная форма, встречающаяся у молодняка). Болезнь длится 1-2 суток, при подостром и хроническом течении – 2-3 месяца. Часто у телят P. multocida серогруппы А и Д вызывает хроническую бронхопневмонию – легочной пастереллез.
У свиней температура тела повышается до 41,0 °Си выше, учащается пульс и дыхание, наблюдаются отеки в межчелюстной области, цианоз кожи ушей, живота. При подостром течении отмечаются симптомы фибринозной плевропневмонии, при хроническом течении – исхудание, кашель, опухание суставов. Продолжительность болезни от нескольких часов (при сверхостром течении) до 3-6 недель (при хроническом течении).
Патологоанатомические изменения. При вскрытии трупов обнаруживают: отеки (при отечной форме); лобарную крупозную пневмонию и серозно-фибринозный плеврит и перикардит (при грудной форме); геморрагический диатез; серозный лимфаденит; зернистую дистрофию печени почек и миокарда; неизмененную селезенку; острый катаральный или катарально-геморрагический гастроэнтерит.
Диагностика. Ее осуществляют с учетом эпизоотологических данных, клинических признаков и результатов патологоанатомического вскрытия. Решающее значение принадлежит бактериологическому исследованию.
Дифференциальная диагностика. У крупного рогатого скота исключают сибирскую язву, эмкар, ринотрахеит, парагрипп; у свиней – кчс, рожу, сальмонеллез, сибирскую язву, гемофилезные полисерозиты.
Лечение. Применяются гипериммунная сыворотка, антибиотики тетрациклинового ряда, антибиотики пролонгированного действия, сульфаниламиды.
Иммунитет. Специфическая профилактика разработана – используется ряд инактивированных моно- и ассоциированных вакцин.
Профилактика и меры борьбы. В комплексе профилактических мероприятий ведущее место должно отводиться мероприятиям – повышающим иммунный статус организма животных (соблюдение общих ветеринарно-санитарных правил, обеспечение нормальных условий содержания и кормления животных и т.д.). При установлении диагноза больных и подозрительных по заболеванию животных изолируют и лечат. Остальных – вакцинируют. Производят дезинфекцию. Ограничения снимают через 14 дней после последнего случая падежа, выздоровления или вынужденного убоя.
Возбудитель пастереллёза (обзор литературы)
Перед общей эпизоотологией, которая является ядром науки, стоят задачи выявления особых черт и закономерностей эпизоотологического процесса, изучение особенностей передачи возбудителя инфекционной болезни в условиях современной организации животноводства. Чтобы предупреждать возникновение инфекционных болезней необходимо знать отдельные звенья эпизоотического процесс, иметь правильно, оценить отрицательное воздействие различных факторов на организм животных, всегда вовремя проводить, использовать новейшие достижения науки и передового опыта.
Терапия при инфекционных болезнях является составной частью системы противоэпизоотических мероприятий. Её задача – устранить причины болезни и восстановить продуктивность животных. При решении вопроса о лечебной помощи нужно учитывать экономическую целесообразность с учетом конкретной болезни и хозяйственной ценности животного. Успех лечения зависит от своевременной постановки диагноза, правильного выбора лекарственных средств, методов и времени его применения.
Особенно внимание должно уделяться охране хозяйства от заноса в них инфекционных болезней. Необходимо вовремя проводить дезинфекцию, дератизацию и проводить профилактическую вакцинацию, соблюдать ветеринарно-санитарные правила содержания и кормления животных.
Пастереллёз относится к наиболее распространенным болезням свиней встречаемых в весенне-летний период.
Ежегодно пастереллез свиней наносит огромный экономический ущерб сельскому хозяйству, который складывается из потери привеса, затрат на лечение и профилактические мероприятия, а в случае гибели животного из потери будущего приплода и самого животного[3,11].
Инфекционная природа болезни была установлена в 1878 – 1887 гг., после того как Боллингер (1878) описал пастереллёз у крупно рогатого скота, а Китт (1885) выделил возбудителя. Выявлены и описаны возбудители пастереллёза кур (Е. М. Земмер, 1878; Пастер, 1880), кроликов (Гафки, 1881), свиней (Лоффлер, 1886), буйволов (Гресте, 1887). В эти же годы Пастер провел первые опыты по ослаблению культур бактерий и осуществил иммунизацию птиц. В честь его заслуг в микробиологии этот возбудитель был назван пастереллой, а вызываемое им заболевание пастереллёзом.
В науке длительное время господствовал зоологический подход к классификации пастерелл, и считалось, что у каждого вида млекопитающих и птиц болезнь вызывает самостоятельный вид микроба. Лишь в 1939 г. Розенбушу и Мерганту удалось доказать несостоятельность такого взгляда и описать возбудителя болезни как самостоятельный вид – Pasteurella multocida. В роде пастерелл также существует самостоятельный вид Р. haemolutica, способны вызывать болезнь, подобную пастереллёзу, У крупно рогатого скота и особенно у овец.
Пастереллёз широко распространен во всех странах мира. Обычно он отмечается спорадически и протекает хронически, но в условиях, способствующих его распространению, проявляется как эпизоотия.
В России в изучение болезни и разработку специфических средств защиты большой вклад внесли П.В. Сизов, В.П. Шаматаев, М.К. Ганиев Н.М. Никифорова, А.В. Лукьянченко.
Возбудитель пастереллеза – Pasteurella multocida - представляет собой полиморфные, чаще короткие грамотрицательные, неподвижные эллипсовидные палочки, располагающиеся изолированно, парами или реже цепочками, спор не образуют; аэробы и факультативные анаэробы. В мазках из крови и органов характерна биполярная окраска, часто с выраженной капсулой. На обычных питательных средах дают хороший типичный рост.
В антигенном отношении Pasteurella multocida неоднородна, имеет 4 капсульных серотипа (А, В, D, Е) и 12 соматических типов. Определение антигенной структуры штаммов Pasteurella multocida играет большую роль при подборе вакцинных штаммов, в частности для приготовления вакцины против пастереллеза крупного рогатого скота - серотип В, птиц - А и D и свиней - А, В, D.
Патогенные и вирулентные свойства различных серогрупп возбудителя колеблются в широких пределах. Наиболее выражены они по отношению к тому виду животных, от которых выделены. Группа Д – встречается у всех видов животных. У пастерелл отмечается определенная зависимость между вирулентностью, капсулооброзованием и токсинообразованием (липополисахаридный эндотоксин). Эпизоотические штаммы пастерелл высоковирулентны для белых мышей.
В возникновении пастереллеза среди животных, особенно у мелкого и крупного рогатого скота, определенное значение имеет гемолитическая пастерелла (Pasteurella haemolytica) , имеющая два биотипа: А и Т, которая таксономически в настоящее время включена в род Actinobacillus. Для дифференциации Pasteurella multocida от Pasteurella haemolytica используют выращивание на агаре Мак-Конки, тест резистентности белых мышей и гемолиз на кровяном агаре (положительные для последней).
Пастереллы устойчивы в навозе, крови, холодной воде в течение 2-3 недель, в трупах - до 4 месяцев, в замороженном мясе - в течение 1 года. Прямые солнечные лучи убивают их в течение нескольких минут, при температуре 70-90 °С они погибают в течение 5-10 минут. Обработка 5%-ным раствором карболовой кислоты обезвреживает пастереллы через минуту, 3%-ным раствором - через 2 минуты, 5%-ным раствором известкового молока (гидроксид кальция) - через 4-5 минут, 3%-ным горячим раствором (50 °С) гидрокарбоната натрия и 1%-ным раствором хлорной извести — через 3 минуты.
Пастереллы являются факультативными аэробами, хорошо растущими на обычных питательных средах при 37°С. При пересеве свежевыделенных культур необходимо использовать среды с добавлением сыворотки крови или среды, полученные путём ферментативного гидролиза мяса. Рост бактерий в бульоне вызывает равномерное помутнение среды, на МПА образуются 3 формы колоний: гладкие (s), шероховатые (R) и мукоидные (М). Ферментативные свойства слабые. Наиболее характерным считается образование в бульоне с триптофаном индола и восстановление нитратов в интриты.
P.haemolutika вызывает пневмонию у КРС и овец всех возрастов.
Устойчивость пастерелл невысокая, в естественных условиях они сравнительно быстро погибают. В навозе, крови, холодной воде пастереллы остаются жизнеспособными в течении 2-3 нед, в труппах - до 4 мес, в замороженных тушках птиц - в течении года. Прямые солнечные лучи убивают пастерелл за несколько минут, при температуре 70 - 90 °С они гибнут за 5 - 10 мин. Все общеизвестные дезинфицирующие вещества в обычных концентратах губительно действуют в течении нескольких минут [3].
БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ ВОЗБУДИТЕЛЯ ПАСТЕРЕЛЛЕЗА
Азербайджанской научно-исследовательский ветеринарный институт
Ряд важнейших теоретических вопросов и практических задач по пастереллезу сельскохозяйственных животных были успешно разреше-ны усилиями многих ученых [2,3,5,6].
Некоторые ученые еще в 1898г при изучении штаммов пастерелл установили, что между отдельными колониями существовали опреде-ленные различия. Например, имелись штаммы подвижные и неподвиж-ные, монотрихные и политрихные, обладающие капсулами и безкап-сульные, а также штаммы которые отличались по биохимическим свой-ствам. Обобщая свои исследования они сгруппировали все овоидные короткие палочки возбудителей геморрагической септицемии, вне зави-симости от их свойств, в группу бактерий геморрагической септицемии. Но такое малообоснованное решение не нашло признания среди других ученых [6,7].
Ряд исследователей в дальнейшем, изучая 21штамм пастерелл, пришли к выводу о невозможности группирования бактерий только по патогенности и по вызываемым ими патологическим изменениям [6,7].
Ими установлено, что возбудители пастереллеза вне зависимости от своего происхождения характеризуются следующими свойствами: форма бактерии коккообразная или овальная, длиною от 1 до 1,5 мик-рона, шириною 0,25-0,5 микрона, часто располагаются парами и неред-ко в крови имеют вид палочек с яснополюсной окраской, грамотри-цатьны, по данным некоторых авторов имеют капсулу, хотя это до сих пор остается невыясненным. Пастереллы неподвижны, спор необразуют, аэробны. Температура для развития бактерии колеблется в пределах от +13 до +42,50С, рН среды не должна превышать 7,8.
Желатину бактерия не разжижает (некоторые штаммы выделенные М.К.Ганиевым, разжижала желатину). На агаре образует небольшие прозрачные колонии с гладкими краями; позднее они становятся бело-ватыми и врастают в агар. В мясном бульоне вначале наблюдается рав-номерное помутнение, позже среда просветляется с образованием слизи-стого осадка. На естественно кислом картофеле роста не происходит. Пастереллы на эндо-агаре не изменяют окраски, на агаре Дригальского не свертывают молока [1,4].
Одним из важных свойств является индоло образование. Пасте-реллы сбраживают с образованием кислоты декстрозу, левулезу, саха-розу и маннит.
Дальнейшими исследованиями ученых было установлено, что па-стереллы неподвижны, следовательно не имеют жгутиков, спор не обра-зуют, развиваются в присутствии кислорода.
М.К.Ганиев, исследовав культуральные свойства 223 штаммов па-стерелл, выделенных от здоровых, переболевших, павших и больных животных (крупного рогатого скота, буйволов), разделил их на 4 типа.
Первый тип, на агаре давал нежные колонии, в виде капелек росы, а в бульоне – слабое помутнение.
Второй тип – на агаре образовывал сплошные слизистые флуорес-цирующие колонии, а в бульоне – заметное помутнение.
Третий тип – на агаре давал сплошной беловато серый, сухой рост, в бульоне образовывали несколько грубый осадок.
Четвертый тип состоял из штаммов, дающих сплошной беловато- серый и морщинистый рост на агаре, а в бульоне – сильное помутнение с грубым нерастворимым осадком в виде комочков.
Автор отмечает, что образование в бульоне пристеночного кольца, а также пленки в большей или меньшей степени имело место среди штаммов всех четырех типов и поэтому эти особенности роста имеют второстепенное значение. Исследователем установлено, что некоторые штаммы изменяли желатину, кровяные среды и молоко. Однако, боль-шинство штаммов росло на этих средах без характерных особенностей.
М.К.Ганиев при отнесении штаммов пастерелл к тому или иному типу, решающую роль придавал степени нежности роста на МПА и МПБ, причем вирулентность культур им не учитывалась, так как виру-лентные штаммы встречаются во всех четырех типах. Авирулентные штаммы в его опытах на питательных средах давали более грубый рост [1,4].
И.А.Даньшев дал бактериологическую характеристику 342 штамм пастерелл, выделенных от павших пастереллеза лошадей, крупного ро-гатого скота, буйволов, свиней, овец и птиц. Он отмечает, что пастерел-лы, выделенные от различных видов животных, морфологически иден-тичны и что наличие палочковидных и нитевидных пастерелл им не установлено. Автор различает два основных типа пастерелл – флуорес-цирующие и нефлуоресцирующие. Однако изучавшиеся им штаммы не отличались стабильностью данного признака [2,3].
Разными исследователями были проведены дифференциация па-стерелл по биохимическим сваойствам [3,6].
В.С.Рягузов пастерлл разбил на три группы. Первая группа сбра-живала лактозу, мальтозу, глюкозу, сахарозу, маннит и не вырабатыва-ла индол. Штаммы из второй группы сбраживали глюкозу, сахарозу и маннит; не сбраживали лактозу и мальтозу, вырабатывала индол. Тре-тья группа не сбраживала ни один из приведенных сахаров. Автор две первые группы называет активными, а третью – неактивной.
И.А.Даньшев отмечает, что ни один штамм пастерелл, выделенный от различных видов животных, не свертывал молоко и не вызывал гид-ролиз крахмала. Все выделенные им пастереллы являлись типичными продуцентами индола и только некоторые свежевыделенные штаммы не продуцировали индола.
Из 342 штаммов, изученных И.А.Даньшевым, 159 сбраживали арабинозу, 239 – ксилозу, 332 – левулозу, 286 – галактозу, 338 – саха-розу, 29 – инозит, 52 – глицерин, 318 – маннит, 129 – дульцит, 168 – сорбит. Одновременно все штаммы восстанавливали нитраты до нитри-тов.
На основании своих исследований автор установил наличние био-химически типичных и атипичных штаммов.
В группу типичных штаммов он включает микробы, каторые ас-симилирую арабинозу, ксилозу и дульцит, но не расщепляют лактозу и мальтозу [2].
Группа атипичных пастерелл характеризуется склонностью к окислению лактозы и мальтозы.
М.К.Ганиев считал, что биохимическая активность пастерелл зави-сит от их вирулентности и, исходя из этого, делл пастерелл на три груп-пы. В его исследованиях наиболее активными штаммами являлись те, которые были выделены от павших от пастереллеза животных, за ними следовали культуры, полученные от свежепереболевших животных и, наконец, штаммы выделенные у здоровых животных относили к третьей группе.
К высокоактивным штаммам автор относил те, которые разлагали лактозу, рамнозу, мальтозу, глюкозу, сахарозу, левулозу лактозу, ман-нит, а также выделяли индол.
Штаммы разлагающие рамнозу, мальтозу, галактозу, сахарозу, левулозу, маннит и не оказывающие действия на лактозу, выделяющие индол ученый относил к среднеактивным штаммам.
Малоактивные штаммы - постоянно сбраживающие глюкозу, са-харозу, левулозу, галактозу, маннит не расщепляющие лактозу, рамно-зу, мальтозу и не продуцирующие индол.
Одновременно автор приходит в выводу, что в ввиду резко выра-женной вариабельности одни биохимические свойства вряд ли можно использовать для дифференциации возбудителей пастереллеза.
Наряду с биохимическими исследованиями, он также изучал во-просы серологической диагностики. Автором установлено что, для вы-явления пастереллоносительства среди здоровых животных реакция аг-глютинации себя не оправдывает, однако, среди переболевших живот-ных эта реакция может быть применена.
Диссоциация пастерелл подробно освещена многими исследовате-лями, так в зависимости от роста культуры пастерелл на МПБ и МПА (одни авторы) делят их на тип Д (Diffuze) который на бульоне дает диф-фузный рост, на агаре образует небольшие беловатые флуоресцирую-щие колонии.
Тип G (Granullar) – на агаре растет в виде мельчайших, прозрач-ных, нефлуоресцирующих колоний, а на бульоне дает просветление с выпадением хлопьедивного или зернистого участка.
По другим данным, при посевах старых бульонных культур пти-чьей пастереллы отмечалось наличие колоний, не характерных для это-го микроорганизма. Детальное изучение этих колоний показало, что здесь имеет место отщепление от первоначально однородной и виру-лентной культуры авирулентного варианта, который отличался морфо-логически от исходного, то есть авирулентные варианты по сравнению с исходным штаммом были крупнее.
Возбудителей пастереллеза Уебстер в связи с диссоциацией разде-лил на три типа в зависимости от их роста и вирулентности. Так, тип Д очень вирулентен и плохо вегетирует, тип М менее вирулентен и вполне присспособлен к вегетативному существованию, тип W авирулентен и совершенно не требователен в отношении питательных сред [5,6,7].
Как видно из изложенного материала. Для всех видов пастерелл отмечены явления диссоциации микроба, которые заслуживают внима-ния во многих отношениях.
Таким образом, по вопросу морфологических, культуральных и биохимических особенностей пастерелл животных, в том числе и овец, имеются разноречивые мнения отдельных исследователей. Учитывая это, выделенные нами пастереллезные культуры от буйволят мы под-вергли бактериологическим исследованиям, для изучения морфологиче-ских, культуральных и биохимических свойств.
Материалы и методы исследований. В работе использовали ре-фератный штамм полученный из Всероссийского НИИ эксперименталь-ной ветеринарии, эпизоотические штаммы пастерелл выделенные из ор-ганов буйволят павших от пастереллеза. Видовую принадлежность воз-будителя определяли на основании изучения морфологических, культу-ральных и биохимических свойств, а также результатов заражения ла-бораторных животных в соответствии с общепринятой методикой бак-териологических исследований.
Культивирование пастерелл мы проводили на МПА и МПБ с рН равным 7,2-7,6.
Результаты исследования и их обсуждение. Выделенные культу-ры пастерелл были неподвижны, не образовывали спор и капсул и не имели жгутиков. Все они имели коккообразную, а в большинство случа-ев овальную форму и почти все располагались парами. При окрашива-нии мазков из внутренних органов павщих животных по методу Рома-новского-Гимза пастереллы окрашивались биполярно.
Наши данные согласуются с мнением и других микробиологов ко-торые считают, что биполярная окрашиваемость является наиболее спе-цифическим свойством пастерелл.
Хотя, в практической работе биполярная окраска наблюдается обычно в препаратах из внутренних органов инфицированных живот-ных и почти не наблюдается у пастерелл из культур. С другой стороны, это свойство характерно не только для бактерий этой группы, так как часто таким же способом окрашиваются бактерии кишечной палочки.
Таким образом, с практической точки зрения важно лишь то, что одна только полюсная окраска не может и не должна служить основани-ем для разделения и дифференциации пастерелл. Хотя, эта специфиче-ская окраска является характерным признаком бактерий пастерелл.
Культуры пастерелл на МПБ давали рост в виде равномерной му-ти, которая в дальнейшем опускается на дно пробирки, образуя белова-то-серый слизистый осадок, при этом бульон приобретает прежнюю прозрачность. Некоторые культуры образовывали на поверхности бу-льона различного рода тонкие пленки. При слабом встряхивании осадок в виде косичек поднимается вверх, а при сильном – он дает равномер-ную муть по всей поверхности бульона.
На МПА культуры возбудителей пастереллеза давали едва замет-ные, прозрачные росинчатые колонии, отдельно разбросанные по всей поверхности. Однако, некоторые культуры на агаре образовывали изо-лированные колонии в виде голубоватого слизистого налета. Края таких колоний иногда были неровными. Хотя, некоторые культуры давали не-прозрачные, чуть большие ровные колонии.
Оптимальной температурой для культивирования пастерелл на пи-тательных средах, в наших исследованиях, являлась 37-380С.
Большинство культур пастерелл при пересевах сохраняли свою вирулентность в течении нескольких месяцев.
7 культур пастерелл из 19 нами исследованных свертывают моло-ко на вторые и третье сутки. Остальные культуры молоко не свертыва-ли.
Для установления биохимической активности пастереллезных культур нами были проведены посевы на цветной ряд. Вирулентные культуры пастерелл были более биохимически активными, чем слабови-рулентные культуры.
Следует отметить, что 7 представителей сильновирулентных куль-тур пастерелл изменяли инулин, 8 сбраживали молоко и, 5 выделяли индол, а из слабовирулентных культур ни одна культура не вызывала аналогичных изменений.
Выводы. При изучении культуральных и морфологических свойств пастерелл выделенных у буйволят различного возраста уста-новлено следующее:
1. Пастерллы, выделенные от буйволят различного возраста, мор-фологически идентичны. Палочковидные, нитевидные и жгутиковидные формы пастерелл нами не установлены.
2. Сильно вирулентные культуры пастерелл более активны по сравнению со слабовирулентными.
3. У культур выделенных от буйволят различного возраста био-химическая активность не постоянна.
BIOLOGICAL FEATURES OF THE ACTIVATOR PASTELLORIS
Azerbaijan Scientific Research Institute of Veterinary Baku, Azerbaijan
At studding culturale and morphological properties pasterelloris mul-tocida allocated at bulls various age the fallowing is established:
- pasterlloris multocida, allocated from bulls various age, morphologi-cal are identical. Rodlike bacterium, threadlike and flagellant forms paster-llozis are not established by us.
- strongly virulent cultures pasterllozis are more active in comparison with weak virulent forms.
- at cultures allocated from bulls various age biochemical activity is not coustaut.
Пастереллез (геморрагическая септицемия) – инфекционная болезнь многих видов сельскохозяйственных и диких животных, в том числе птиц, характеризующаяся явлениями септицемии и воспалительно-геморрагическими процессами во внутренних органах, на серозных и слизистых оболочках.
Впервые возбудителя холеры кур в чистой культуре выделил Л. Пастер в 1880 г. Название Pasteurella возбудителю присвоено в честь ученого в 1910 г.
По современной классификации пастереллы объединены в секцию 5, семейство Pasteurellaceae, в котором один род Pasteurella. Род представлен шестью видами. Основные возбудители болезни – Pasteurella multocida и Pasteurella gemolytica.
Морфология. P. multocida в мазках-отпечатках из крови и органов представляют собой грамотрицательные короткие овоидные палочки (длиной 0,4-1,2мкм и шириной 0,3-0,4мкм). При окраске по Романовскому-Гимзе имеют вид биполяров (интенсивно окрашиваются по полюсам). В мазках из культур пастереллы имеют вид коккоовоидных палочек, располагающихся одиночно, попарно, реже в виде коротких цепочек Неподвижные, образуют слизистые капсулы, спор не образуют.
Культуральные свойства. P. multocida – факультативный анаэроб. Оптимум температуры 37-38 0 С, рН среды 7,2-7,4. Растут в МПБ и на МПА, но лучше, при внесении к ним сыворотки крови, на средах Хоттингера или Мартена. На МПА (S-формы) образуют мелкие, выпуклые, прозрачные, круглой формы колонии серого цвета, М-формы – более крупные слизистые колонии с непрозрачным центром; R-формы – шероховатые непрозрачные колонии. В косопроходящем свете колонии S-формы флюоресцируют, что связано с капсулообразованием; в МПБ – слабое равномерное помутнение среды и образование на дне пробирки слизистого осадка, поднимающегося при встряхивании в виде характерной косички. М-формы растут более интенсивно и дают более выраженный слизистый осадок. R-формы образуют хлопьевидный или зернистый осадок.
Пастереллы ферментируют с образованием кислоты глюкозу, сахарозу, маннит, сорбит, не ферментируют лактозу, дульцит, аденит. Образуют индол, не разжижают желатин, на кровяном агаре не вызывают гемолиза, проба на каталазу положительная.
Антигенная структура. P. multocida имеет К-(капсульный) и О-(соматический) антигены. К-антигены разделены на четыре серологических типа: А, В, D и Е.
P. multocida серовара А (по Картеру) преимущественно поражает птиц, реже крупный рогатый скот и свиней, серовара В и Е вызывают острое заболевание домашних и диких животных, протекающее в виде геморрагической септицемии, серовар D встречается у всех видов животных.
Устойчивость. В окружающей среде невысокая. При 58 0 С погибают за 20 минут, при 90 0 С – за 10 минут, при кипячении – моментально. Выдерживают замораживание до – 70 0 С. При высушивании на открытом воздухе гибнут за 2-3 суток. В почве выживают до 12 суток, в навозе – 14 суток, птичьем помете – до 72 суток, в гниющих трупах — до 3 месяцев, в зерне – до 44 суток. Дезинфицирующие растворы в принятых концентрациях (раствор, содержащий 5 % активного хлора, 3 % растворы формальдегида и гидроксида натрия) убивают пастерелл в течение 10 минут.
Патогенность. Патогенные и вирулентные свойства пастерелл варьируют и наиболее сильно выражены у животных того вида, от которого они выделены. Эпизоотические штаммы высоковирулентны для белых мышей и кроликов. Установлена корреляция между вирулентностью, капсуло- и токсинообразованием. Наибольшей вирулентностью обладают свежевыделенные культуры. В лабораторных условиях при хранении культур вирулентность пастерелл резко снижается.
Патогенез. При остром течении болезни пастереллы быстро размножаются, проникают в кровеносную и лимфатическую системы, вызывая септицемию. За счет образования эндотоксинов и других агрессивных субстанций повреждаются стенки сосудов, они становятся проницаемы для плазмы, клеточных элементов, развивается геморрагический диатез, появляются отеки подкожной и межмышечной клетчатки. В результате нарушения кровообращения наступает некроз тканей.
Эпизоотологические данные. К пастереллезу наиболее восприимчив крупный рогатый скот (молодняк), куры, гуси, утки. Определенную устойчивость к пастереллезу имеют лошади и плотоядные. Пастереллы имеют широкую экологическую амплитуду, способны нормально развиваться в разнообразных условиях окружающей среды. В природе среди животных и птиц установлено широкое и длительное пастереллоносительство.
Источник возбудителя – больные и переболевшие животные (птица), выделяющие возбудителя с истечениями из носа, испражнениями. К заболеванию пастереллезом приводит ослабление резистентности организма под влиянием неблагоприятных факторов (неудовлетворительные условия содержания и кормления, стрессы). Основные пути заражения – аэрогенный и алиментарный. Пастереллез относится к респираторной инфекции.
Эпизоотические вспышки пастереллеза с острым проявлением болезни по типу геморрагической септицемии у крупного рогатого скота и диких жвачных в условиях СНГ обычно вызывает P. multocida типа В, у кур и индеек – P. multocida типа А. Спорадическую заболеваемость пастереллезом (подострое и хроническое течение болезни по типу энзоотической пневмонии) чаще вызывают у телят P. multocida типа А и Р- haemolytica; у свиней – P. multocida типов А и D и P. haemolytica.
Предубойная диагностика. При остром течении пастереллеза отмечают резкое повышение температуры, угнетенное состояние, конъюнктивит, опухание языка, затрудненное дыхание, кашель, отеки. Если поражен кишечник, то наблюдается понос, жажда от потери воды, прогрессирующее исхудание, бледность слизистых оболочек, упадок сил, вялость.
Послеубойная диагностика. Сверхострое (молниеносное) течение пастереллеза изменений в органах, как правило, не вызывает; острое – дает многочисленные кровоизлияния на отечной, слизистой оболочке дыхательных путей, под плеврой, брюшиной, эпикардом, в сердечной мышце, в подкожной клетчатке и паренхиматозных органах. В межчелюстном пространстве – студенистый инфильтрат. Лимфатические узлы головы, шеи, грудной полости, кишечника увеличены, гиперемированы. Селезенка без изменений. Печень увеличена, под капсулой видны некротические узелки. Легкие кровенаполнены, также с очажками некроза. Почки наполнены кровью, под капсулой – точечные кровоизлияния. Слизистая оболочка кишечника воспалена, с точечными или полосчатыми кровоизлияниями. При подостром течении эпикард усеян кровоизлияниями, в сердечной сумке скапливается экссудат, при хроническом течении имеет место гнойно-фибринозное воспаление дыхательных путей, очаговое воспаление легких, плеврит фибринозный перикардит, отложение хлопьев фибрина на легочной и костальной плевре. Легкие могут приобретать мраморный вид.
Для подтверждения диагноза необходимы лабораторные исследования: из патологического материала паренхиматозных органов и лимфоузлов делают мазки-отпечатки, окрашивают их методом Романовского-Гимзе и проводят бактериоскопию. Делают посев эмульсии из взятого материала на мясопептонный бульон и пластинчатый агар, ставят биопробу на белых мышах или кроликах.
Лабораторный диагноз. Для выделения пастерелл используют только свежий патологический материал от нескольких трупов больных животных. Для первичного выделения и культивирования пастерелл пригодны только обогащенные питательные среды, в том числе МПА, с 5-10 % крови барана или лошади или сывороточный МПБ. Посевы из внутренних органов (кровь, печень, селезенка, легкие, трубчатая кость, головной мозг) и из мест поражения (лимфатические узлы, отечная ткань и др.) инкубируют в термостате при 37 0 С в течение 24-48 ч. Из патологического материала готовят мазки и окрашивают по Граму, Романовскому-Гимзе или синькой Леффлера.
Вирулентность выделенной культуры определяют путем постановки биологической пробы. Белых мышей или кроликов заражают культурой пастерелл, выделенной от крупного рогатого скота, свиней, овец, птиц (голубей, кур, уток). Белых мышей и кроликов заражают подкожно в дозе 0,2-0,5 мл суточной культурой пастерелл; голубей и 90-120 суточных цыплят – бульонной культурой в дозе 0,5 мл внутримышечно. Кроликов перед заражением исследуют на пастереллоносительство. С этой целью в течение трех дней до заражения им закапывают в носовые отверстия по две капли 0,5 % водного раствора бриллиантовой зелени. Появление гнойного истечения свидетельствует о пастереллоносительстве. Этих кроликов не используют в опыте.
Для биопробы применяют также кровь или суспензию из паренхиматозных органов от павших животных. Через 24-48 ч после заражения культурой или исследуемым материалом подопытные животные погибают. На основании морфологии, культурально-биохимических свойств и биопробы ставят диагноз на пастереллез.
Специфическая профилактика. У переболевших животных образуется нестерильный иммунитет. После вакцинации животные (особенно птицы) могут оставаться пастереллоносителями.
Для активной иммунизации применяют видоспецифичные эмульгированные вакцины отдельно для крупного рогатого скота, буйволов и свиней; преципитированную вакцину – для овец и свиней; полужидкую – для крупного рогатого скота и буйволов - ассоциированную вакцину против пастереллеза, сальмонеллеза и диплококковой септицемии – для свиней. Для активной иммунизации птиц применяют инактивированные (эмульгированная для кур и уток, а также эмульсивакцина отдельно для кур, индеек, уток и гусей) и живые ослабленные вакцины (из пастеровского штамма для домашней птицы всех видов и две вакцины из штамма АВ и штамма К разработанной Краснодарской НИВС для водоплавающих птиц).
Для профилактики и лечения больных животных используют гипериммунную сыворотку. Пастереллы высокочувствительны к гентамицину, левомицетину, стрептомицину, тетрациклинам и некоторым сульфаниламидным препаратам.
Ветеринарно-санитарная оценка и мероприятия. При наличии инфильтратов, дистрофических изменений в мускулатуре и внутренних органах, тушу и все субпродукты направляют на утилизацию. Если органолептические показатели нормальны и результаты исследований на сальмонелл отрицательны, то тушу и внутренние органы направляют на изготовление вареных колбас. В случае обнаружения сальмонелл мясо обезвреживают проваркой или направляют на изготовление консервов, мясных хлебов. Внутренние органы утилизируют.
Кровь и кишки больных животных подвергают утилизации, шкуры дезинфицируют 1 % раствором соляной кислоты, разведенным в 20 % растворе поваренной соли в течение 2 суток в местах первичной переработки животных. Сбор эндокринного сырья не разрешается. Категорически запрещен вывоз с производства мяса и субпродуктов в сыром виде.
Молоко больных животных подлежит кипячению и использованию в хозяйстве.
Пастереллез у домашней птицы. Внутренние органы утилизируют, тушки направляют на проварку, прожарку или на переработку в консервы. Пух и перо дезинфицируют.
Помещение убойно-разделочного цеха и инвентарь дезинфицируют горячим 2 % раствором едкого натра или хлорной известью (не менее 1 % активного хлора). Инструментарий в течение 10 минут кипятят в 2 % растворе кальцинированной соды.
Читайте также: