Туберкулез птиц бактериологического исследования

• экспресс-метод, быстрое получение результата;
• возможность определения типа обнаруженных микобактерий при проведении ПЦР на конкретные виды возбудителя: на данный момент в России это возможно для основных зооантропонозных возбудителей – M.tuberculosis, M.bovis, M.avium.

• условно метод ПЦР-диагностики считается высокочувствительным, на практике же ложно-отрицательные результаты при малом количестве возбудителя в пробе – частое явление, посему требуется серия анализов в нескольких лабораториях;
• низкая доступность расходных средств и необходимость соответствующего оснащения лаборатории для работы с ПЦР.

• возможность определения типа высеенных микобактерий на основнии морфологических и культуральных свойств полученного возбудителя;
• относительно высокая чувствительность метода даже при работе без концентрации материала.

• длительность проведения анализа – вплоть до 2-3 месяцев, т.к.микобактерии являются медленнорастущими микроорганизмами;
• необходимость соответствующего оснащения лаборатории для безопасной работы с чистой культурой возбудителя.

Туберкулинизация (аллерго-диагностика):

Метод основан на выявлении местной аллергической реакции на введение птице внутрикожно туберкулина (готовится из очищенной убитой культуры микобактерий) – положительная реакция обуславливается специфическим иммунным ответом со стороны организма, т.е.свидетельствует об активном взаимодействии возбудителя микобактерий с организмом птицы.

Таким образом, выборочное использование только одного из представленных выше методов для постановки или опровержения окончательного диагноза на микобактериоз у птиц не является объективным.

Необходимо также учитывать, что даже единоразовое получение от обследуемого животного любого положительного результата при любом методе диагностики, является прямым показанием к рассмотрению птицы как подозрительной по микобактериозу, т.е.требующей системного разностороннего подхода к лабораторной диагностике и отбора серии проб в первую очередь для исключения опасности зоонатропонозной инфекции для владельца.

заглавное фото: фрагмент картины Louis Edouard Dubufe

Туберкулез представляет собой крайне опасное бактериальное заболевание человека, диких и домашних животных, поражает практически все виды птиц

Исследования останков доказывают, что данная болезнь сопровождает человечество с незапамятных времен. Описания самых различных заболеваний древними и средневековыми исследователями дают клиническую картину туберкулеза, однако в качестве самостоятельной болезни туберкулез стал известен после открытия Робертом Кохом микобактерий — возбудителей недуга в 1882 году. До открытия Коха и подтверждения им инфекционной природы болезни туберкулез птиц ассоциировался с дифтерией. В медицине открытие Коха и последовавшие за ним исследования причин, распространения и методов борьбы с туберкулезом положили начало новой науки — фтизиатрии.

Вместе с тем, часть микобактерий приспособлена к паразитическому образу жизни, вызывая такие заболевания как:

• туберкулез
• лепра
• различные микобактериозы.

Основные свойства представителей всего рода микобактерий сходны. Они являются облигатными аэробами, представляют собой палочки (в старых культурах могут принимать форму кокков), большинство из них положительно окрашивается по Граму.

Кроме прочего, микобактериям, даже патогенным, присуща высокая устойчивость во внешней среде. Они нечувствительны к рассеянному солнечному свету, за счет восковидных веществ в оболочке проявляют спирто- и кислотоустойчивость. В почве M. avium сохраняет активность до 1 года, в воде — не менее 7 месяцев. Большинство микобактерий обладают естественной резистентностью к действию антибиотиков, нагрев до температуры +70°С убивает бактерии на протяжении 20 минут.

Микобактерии лишены органов передвижения, неспособны к спорообразованию, капсул также не образуют.

К этому заболеванию птицы восприимчивы все представители домашних пернатых. В окружающую среду микобактерии выделяются от больных особей с пометом. Кроме того, доказанным является трансовариальный путь передачи возбудителя. Возникшая в птицеводческом хозяйстве болезнь поражает до 70% поголовья.

Кроме опасности для птицы и животных M.avium представляет серьезную опасность для человека, особенно на фоне снижения иммунного статуса. У людей пожилых, ослабленных, возбудитель туберкулеза птиц способен вызвать атипичные микобактериозы, с большим трудом поддающиеся своевременной диагностике и лечению. В свою очередь больной человек является фактором распространения инфекции среди поголовья птицы.

К заражению туберкулезом наиболее восприимчивы куры и фазаны, в меньшей степени заболеванию подвержены индейки и водоплавающие. Кроме домашней птицы нередко туберкулез выявляют у содержащихся в неволе экзотических птиц, а также в популяциях диких. К экспериментальному заражению M. avium восприимчивы:

• кролики
• крысы
• обезьяны
• лошади и многие другие животные.

Кроме того, микобактерия, вызывающая болезнь птиц была выделена от коров. Как правило, у крупных жвачных заболевание, возникшее в результате заражения данным типом туберкулеза, приводит к поражению регионарных лимфоузлов при отсутствии генерализации процесса.

Заражение птиц туберкулезом происходит в основном аэрогенным, алиментарным и трансовариальным путем. Главнейшими факторами передачи инфекции служат загрязненная выделениями больной птицы подстилка и инвентарь. Переносчиками инфекции могут служить зараженные дикие птицы, животные, а также черви и насекомые-гематофаги.

Период инкубации при естественном заражении птицы может составлять от 1 до 10 мес. в зависимости от резистентности организма, состояния иммунной защиты организма.

При заражении птицы алиментарным путем первичное размножение микобактерий происходит на слизистой кишечника. Воспалительный процесс в кишечнике при туберкулезе приводит к образованию туберкулов — уплотнений в виде узелков, заполненных довольно плотным творожистым содержимым.

В дальнейшем возбудитель разносится по организму, оседает в различных органах и вызывает образование туберкул на месте внедрения, наблюдается генерализация процесса. Наиболее часто образование туберкулезных узелков у птицы наблюдают в:

Поражения почек встречается гораздо реже — примерно в 5–6% случаев.

Мелкие, в начале заболевания, туберкулы увеличиваются в размерах, сливаются, образуя целые конгломераты, в запущенных случаях вскрываются, приводя к развитию язвенного туберкулеза. Пораженные органы увеличиваются в размерах, имеют неровную, бугристую поверхность, изменяют цвет. Нарушается функция пораженного органа.

В начале заболевания у птиц отмечают незначительное повышение температуры, малоподвижность, снижение аппетита, общую слабость. При дальнейшем развитии патологического процесса, в зависимости от преимущественной локализации поражений отмечают:

нарушения со стороны пищеварительного тракта;бледность и желтушность гребня и видимых слизистых оболочек;хромоту и неправильную постановку конечностей при поражении суставов;снижение либо полное прекращение яйценоскости;симптомы поражения респираторного тракта.
В редких случаях наблюдают туберкулезные поражения кожи.

Основным и общим признаком при туберкулезе птиц является прогрессирующее истощение. Как правило, больные птицы погибают на фоне кахексии.

Основанием для постановки диагноза является изучение симптомов болезни, результатов патологоанатомического вскрытия, эпизоотологической ситуации. Для подтверждения диагноза проводятся лабораторные исследования патматериала с целью обнаружения и идентификации возбудителя болезни.

Огромное значение имеет прижизненная диагностика туберкулеза птиц, проводящаяся с помощью кожной реакции организма птицы на введение туберкулина. Вместе с тем, положительная реакция на туберкулин не дает стопроцентной гарантии выявления заболевания поскольку, как ложноположительные, так и ложноотрицательные реакции на туберкулиновую пробу регистрируются достаточно часто.

Несмотря на то, что лечение туберкулеза, особенно на ранних стадиях заболевания вполне возможно, птицу, за исключением редких случаев, не лечат, основываясь на экономической целесообразности. Лечение болезни протекает длительно, а препараты, способные успешно бороться с микобактериями, достаточно дороги. Вместе с тем, для лечения птиц можно применять такие медикаментозные средства как:

• этамбутол
• изониазид
• рифампицин и прочие.

Основные меры борьбы с данным опасным заболеванием птиц направлены на профилактику. С этой целью на птицеводческих фермах, использующих маточное поголовье и занимающихся реализацией яиц для инкубации (либо их самостоятельной инкубацией), раз в год проводят поголовное исследование взрослой птицы, а также ремонтного молодняка с помощью туберкулиновой пробы.

При установлении диагноза на туберкулез на хозяйство накладывают карантинные ограничения, птиц с явными клиническими признаками болезни забивают и утилизируют. Условно здоровое поголовье подвергают туберкулинизации. Птиц с положительной реакцией отправляют на убой. Здоровую птицу выращивают изолированно. В помещениях проводят дезинфекцию с использованием растворов формалина, хлорной извести, едкого натра.

Бактериологическая диагностика. Бактериологический метод исследования патматериала на предмет выделения и идентификации микобактерий включает 3 способа: бактериоскопический, культуральный и биологический / Р.В.Ткзова, 1983; И.И.Румачик, 1987,1993; А.С. Донченко, 1989; Ю.Я. Кассича, 1990; А.Х.Найманов, 1993; Л.П.Ходун, 1997/. Срок бактериологического исследования не должен превышать 3-х месяцев.

Учитывая, что макроскопические туберкулезные изменения в органах и тканях крупного рогатого скота вызывает возбудитель туберкулеза бычьего вида, исследовать такой материал бактериологически не имеет смысла. Если такой материал доставлен в лабораторию для исследования, то производят комиссионный осмотр и составляют акт. Материал обезвреживают.

Бактериоскопическое (микроскопическое) исследование материала заключается в приготовлении из каждого органа (или кусочков органа с подозрительными на туберкулез изменениями) и лимфатического узла, доставленных для исследования, по 2 мазка-отпечатка, высушивании их на воздухе, фиксации над пламенем спиртовки, окрашивании по Циль-Нильсену и просмотре окрашенных мазков под микроскопом, причем не менее 50 полей зрения в каждом мазке. Необходимо приготовить, как минимум, 20 мазков-отпечатков из материала от одной туши. Кроме того, мазки для микроскопии готовят также и из высеваемой на питательные среды взвеси материала.

Окраска мазков по Цилю-Нильсену является избирательной на выявление микобактерий: на синем фоне окрашенных тканей или посторонней микрофлоры микобактерии просматриваются как красные, розовые или рубиново-красные палочки. Лучше всего просмотр мазков вести под микроскопом-бинокуляром при увеличении 1,5 (насадка) х 7 (окуляр) х 90 или 100 (объектив).

Способ используют как сигнальный, поскольку наличие или отсутствие микобактерий в мазках абсолютно не влияет на ход дальнейших исследований и даже положительное заключение бактериоскопии не имеет юридической значимости (кроме птиц). Материал необходимо исследовать далее.

Лабораторный диагноз на туберкулез у птиц считают установленным, если из исследуемого материала выделена культура микобактерий птичьего вида (от попугаев - человечьего или птичьего видов), получен положительный результат биопробы, а также при обнаружении микобактерий в мазках из патологического материала при микроскопическом исследовании (п. 7.3.2. наставления).

Необходимо обратить внимание также и на то, что на приготовление мазков-отпечатков, их фиксацию и просмотр уходит очень много времени, а обнаружить в них микобактерии удается очень редко, даже в мазках из высеваемой взвеси материала. Поэтому в целях экономии рабочего времени и средств при исследовании материала от животных, не имевших изменений при убое, целесообразно ограничиться приготовлением и просмотром мазков только из высеваемой на питательные среды взвеси материала. Это не приведет к ущербу в диагностике туберкулеза, ведь исследование материала продолжается далее.

Кроме обычной световой микроскопии можно использовать люминесцентную микроскопию. Мазки готовят аналогичным образом, фиксируют и окрашивают смесью флуорохромов. Окрашенные мазки просматривают под люминесцентным микроскопом. Способ более чувствителен, однако менее специфичен, и поэтому мало приемлем, особенно в условиях практических лабораторий.

Учитывая вышеизложенное, необходимо первоочередное внимание уделять культуральному способу выделения микобактерий из материала на питательных средах, как самому слабому звену в бактериалогической диагностике туберкулеза в районных ветеринарных лабораториях.

Положительные результаты культурального метода выделения микобактерий зависят, в основном, от двух обстоятельств: увеличение достоверности высева микобактерий из материала и соблюдение условий стерильности при работе в боксе.

Увеличение достоверности высева микобактерий из взятого для исследования материала зависит, в первую очередь, от качественного его отбора, предпосевной обработки и увеличения количества пробирок среды, на которого производят посев.

Основные условия, соблюдение которых при посеве материала на питательные среды гарантирует получение рост колоний микобактерий:

а) отбирать материал для бактериологического исследования от убитых животных, не имевших изменений при убое, отдельно от каждой туши и высевать на 10-20 пробирок среды каждую пробу (материал от каждого животного) по следующей схеме:

- лимфатические узлы головы (подчелюстные, заглоточные);

- бронхиальные и средостенные лимфатические узлы;

- мезентериальные (брыжеечные) лимфоузлы;

- прочие лимфоузлы (при наличии подозрительных участков);

- органы (тоже при необходимости).

В результате получается посев материала от одного животного на 30-50 пробирок среды. Этим достигается увеличение достоверности высева микобактерий в 3-5 раз, так как без разделения проб (по наставлению) высев материала рекомендуется проводить всего на 5-10 пробирок среды от двух голов одной фермы.

б) Непосредственно при бактериологическом посеве материала вырезать кусочки с нарушенной морфологической структурой лимфатического узла или органа (гиперплазия, уплотнение, точечные и полосчатые кровоизлияния и т.д.). Причем необходимо вырезать все измененные участки. Если материала по объему получается много в одну ступку, то его можно разделить в две.

в) Строго соблюдать взятую для работы методику, не нарушая режим обработки и высева материала.

г) При гомогенизации материала, особенно лимфатических узлов, необходимо использовать стерильный песок или мелкобитое стерильное стекло. Максимально растирать материал (до сметанообразной консистенции) для лучшего извлечения микобактерий из исследуемого материала

д) Добавлять физраствор к гомогенизированному материалу в ступку в количестве, необходимом для высева взвеси материала на питательные среды и для биопробы (в среднем до 0,5 см3 в одну пробирку и 1 -2 см3 для подкожного заражения одной морской свинки). Это количество физраствора можно рассчитать заранее.

е) Просмотр посевов материала проводить через 3, 5, 7, 10, 15 дней и в дальнейшем один раз в неделю.

ж) Любая выросшая на среде колония микроорганизмов (типичная или атипичная, пигментная или беспигментная, слизистая или суховатая и т.д.) должна пройти микроскопию при избирательной окраске по Циль-Нильсену.

Следует обратить внимание на степень отмывки материала от кислоты (или щелочи), применяемой для обработки материала от контаминации посторонней микрофлорой. Остаточное количество кислоты всегда будет присутствовать во взвеси из высеваемого материла, однако оно должно быть минимальным. Показателем этого служит восстановление первоначального цвета среды на 2-4-ый день после посева материала. Если цвет среды не восстановился, это свидетельствует о повышенном количестве остаточной кислоты. Цвет среды приобретает синеватый оттенок различной интенсивности. Рост (предполагаемых) микобактерий в данном случае замедляется, либо его не будет вообще, особенно возбудителя туберкулеза как более требовательного к режиму культивирования. Остаточное количество кислоты действует на микобактерии в некоторой степени бактериостатически.

Для герметизации пробирок после посева материала можно применять ватные и ватно-марлевые пробки с последующей заливкой их парафином, резиновые без- и резиновые с вырезанным косым желобком, корковые и металлические пробки (затворы).

При определении видовой принадлежности выделенной культуры микобактерий известно много (около 300) различных тестов: культурально-морфологические, биологические, биохимические, серологические, определение лекарственной устойчивости и т.д. Однако в ветеринарной практике применяется их минимум (см. наставление). Для лабораторий достаточно определение выделенной культуры микобактерий следующих видов: бычий, человечий и птичий, что определяется биопробой, а атипичные микобактерии - разделить на группы по Runyon (1959): I - фотохромогенные (образующие пигмент под воздействием света), II - скотохромогенные (образующие пигмент независимо от воздействия света - и в темноте, и на свету), III - нехромогенные (не образующие пигмента) или еще их называют беспигментные (сюда же отнесен и возбудитель туберкулеза птичьего вида), IV - быстрорастущие микобактерии и кислоустойчивые сапрофиты.

Для этого достаточно эффективно и экономически оправдано изучение свойств выделенной культуры по сокращенной схеме, в которой основное внимание уделяется срокам появления первичного роста колоний, пигментообразованию, культурально-морфологическим и тинкториальным свойствам при окраске по Цилю-Нильсену. Особенно значим тест на корд-образование в первичной или даже в субкультуре в сочетании с результатами биопробы. Для приготовления мазков из выросших колоний целесообразно одновременно делать их как из колоний, так и из остатков взвеси и конденсата, т.е. с жидкой части на дне пробирки.

Кроме того, сотрудники лабораторий имеют возможность не только проводить контрольный убой реагировавших на туберкулин животных и отбирать пробы материала для исследования, но и отбирать для бактериологического исследования при жизни животных (бронхиальная или носовая слизь, молоко, фекалий, моча, экссудат, кровь и т.д.), а также пробы кормов, воды, объектов внешней среды на предмет выделения микобактерий и, таким образом, косвенно доказывать причину реагирования скота на туберкулин. При посеве дополнительного материала и проб из объектов внешней среды используют общеизвестные методы концентрирования микобактерий: седиментационный, флотационный, флотационно-седиментационный и другие.

Сокращенная схема дифференциации микобактерий с использованием биопробы

Туберкулез домашних птиц — инфекционная болезнь, вызываемая Mycobacterium avium.

Чаще всего протекает в хронической форме; постоянно присутствует в скоплении птиц после инфицирования и может привести к уменьшению количества отложенных яиц и смерти птицы.

Сложность борьбы с туберкулезом птиц заключается в недостатке эффективных вакцин или подходящих режимов фармакотерапии.

В литературе приведен ряд случаев, когда Mycobacterium avium был ответственен за развитие туберкулезной инфекции у людей. Туберкулез птиц является зооантропонозным заболеванием. В США первый случай туберкулеза птиц у людей (с адекватным доказательством) был зарегистрирован в 1947 году. Кроме того, литературные данные свидетельствуют о том, что инфекция, вызванная Mycobacterium avium, обычно развивается как вторичная инфекция у пациентов с синдромом приобретенного иммунодефецита (СПИД).

Оказалось что туберкулез птиц менее распространен среди молодой домашней птицы, не потому что молодые птицы более устойчивы к инфекции, а потому что у старших птиц болезнь имела больше возможностей развиться за счет более продолжительного периода инфицирования. Хотя повреждения при туберкулезе обычно менее серьезны у молодых цыплят, чем у взрослых птиц, тем не менее, наблюдался обширный или генерализованный туберкулез птиц у молодых цыплят. Такие птицы — источник распространения вирулентной бациллы туберкулеза — должны рассматриваться как угроза для другой домашней птицы и восприимчивых млекопитающих. Туберкулез принято считать болезнью старших птиц.

Mycobacterium avium часто вызывает гибель пойманных диких птиц в птичьих вольерах зоопарков. Появились также многочисленные сообщения о туберкулезе птиц, содержащихся в квартирах людей.

Характерная особенность Mycobacterium avium — её кислотостойкость. По своим характеристикам эти микроорганизмы относятся к бациллам; подобные клубку, изогнутые формы также отмечены в некоторых приготовленных средах. Они не формируют структуры, по форме напоминающие шнуры. Большинство бактерий имеют округленные концы и длину от 1 до 3 мм. Спор не образуют, а сам микроорганизм неподвижен. Сферические или конические гранулы наблюдаются в цитоплазме вдоль бактерии.

Mycobacterium avium растет при температурах от 25 до 45*С, хотя наиболее благоприятная для его роста предельная температура составляет 39—45*С. Mycobacterium avium является аэробным микроорганизмом.

Все виды птиц могут быть инфицированы Mycobacterium avium. Одомашненные или содержащиеся в неволе дикие птицы поражаются туберкулезной бациллой чаще, чем живущие в дикой природе. Туберкулез птиц встречается у уток, гусей, лебедей, павлинов, голубей, индеек, птиц, содержащихся в неволе, и диких птиц. Попугаи и канарейки также могут быть инфицированы. Болезнь также наблюдалась у воробьев, ворон, сов, обитающих в сараях, воловьих птиц, черных дроздов, восточных ястребиных воробьев, скворцов, древесных голубей и кричащих журавлей. Туберкулез птиц был выявлен у страусов, страусов эму и нанду, размещенных в зоологических парках.

Туберкулезная бацилла птиц имеет определенную патогенность для некоторых видов домашних млекопитающих.

Сравнение патогенности Mycobacterium avium для конкретных отдельных видов млекопитающих и рептилий.

Кошки — Высоко устойчивы
Собаки — Высоко устойчивы
Морские свинки — Относительно устойчивы
Хомяки — Восприимчивы
Норки — Довольно легко инфицируются
Обезьяны — Восприимчивы
Мыши — Относительно устойчивы
Кролики — Довольно легко инфицируются
Крысы — Относительно устойчивые
Рептилии — Восприимчивы
Свиньи — Довольно легко инфицируются
Лошади — Есть сообщения об инфицировании
Крупный рогатый скот — Инфекция происходит; но обычно она локализована
Овцы — Умеренно восприимчивы
Ламы — Восприимчивы

Туберкулезные бациллы, выделенные из язвенных повреждений кишки, характерных для туберкулеза домашней птицы, являются источником вирулентных бактерий. Фекальные массы могут содержать бациллы туберкулеза из повреждений в печени и слизистой оболочке желчного пузыря, удаленной через обычный проток. Дыхательный путь также потенциальный источник инфекции, особенно если имеются повреждения в слизистой оболочке трахеи.

Среда, содержащая бациллы - зараженная почва и подстилка - наиболее важные пути передачи болезни неинфицированным животным. Более продолжительно идет передача туберкулеза от инфицированных птиц. При этом, чем более сконцентрированы группы домашней птицы, тем вероятнее распространение инфекции.

Они довольно устойчивы к воздействию различных физических и химических факторов. При нагревании до 60 °С погибают только через 65 мин. Однако при кипячении они гибнут быстрее, всего через несколько минут. Микобактерии туберкулеза устойчивы и к низким температурам. При минус 23 °С они остаются живыми до 7 лет. Великолепная среда для их выживания — навоз, почва. В Сибири микобактерии туберкулеза птичьего типа не гибнут в почве год и больше, в навозе они сохраняются до 15, а в унавоженной почве — до 9 лет.

У различных видов домашних и диких птиц клинические признаки могут значительно варьировать. Типичное течение Туберкулеза сопровождается потерей аппетита, постепенным исхуданием и вялостью птицы. Обычно, если инфекция прогрессирует, затрагивая физическое состояние птиц, больные особи гораздо слабее, чем их сородичи. Пораженные птицы легко утомляются и кажутся угнетёнными. Хотя аппетит у птиц обычно сохраняется, наблюдаются значительные и резкие потери в весе, особенно заметные на грудных мышцах. Грудные мышцы часто атрофированы, а сама грудина сильно выделяется и может быть искривлена. Оперение принимает вид взъерошенного и неопрятного. Не покрытый пером эпидермис может иметь специфический вид высушенной кожи. Возможно появление желтушного или цианотичного оттенка кожи. Температура пораженных птиц почти всегда остаётся нормальной. У отдельных птиц отмечают расстройство кишечника. Может формироваться поражение суставов ноги и костей, что проявляется хромотой. В таком случае птица передвигается специфической судорожной прыгающей походкой, вероятно в результате туберкулёзного поражения лопаточно-коракоидного сочленения, из места разрыва которого выделяется жидкость с казеозным материалом. В результате туберкулёзного артрита может развиться паралич.

Очень подвержены этой болезни попугаи. В начале ХХ в. из 700 попугаев, доставленных в Берлинскую ветеринарную клинику, у 110 обнаружили туберкулез; у старых попугаев микобактерии находили особенно часто. Другое исследование, проведенное в то же время, показало, что среди 155 старых попугаев туберкулез был у каждого третьего. По современным данным, зараженность попугаев туберкулезом составляет от 15 до 55%.

Попугаи особенно чувствительны к микобактериям. Заражение происходит различными путями. Один из них — аэрогенный, или воздушный. При кашле больного человека или больных животных микобактерии выделяются из органов дыхания и перемещаются с потоками воздуха. Могут они попасть и в легкие птицы. Пыль с микобактериями может очутиться на корме, в воде. Часто заражение происходит при кормлении попугая пищей, предварительно разжеванной больным владельцем. Птицы могут заболеть и после поедания яиц больных кур или молока больных коз и коров. Микобактерии проникают в организм и через ссадины кожи или слизистой оболочки полости рта.

Канарейки восприимчивы к микобактериям туберкулеза так же, как и попугаи, а среди других птиц особенно чувствительны к ним зяблики.

Поражение туберкулезом тех или иных органов и тканей, длительность и тяжесть заболевания зависят от способа заражения, количества микобактерий, проникших в организм, степени их болезнетворности и от устойчивости организма. Птицы не всегда заболевают туберкулезом. Микобактерии, попавшие в организм, могут быть задержаны защитными клетками — макрофагами, которые захватывают их и поглощают. Однако когда степень болезнетворности сильная, а организм птицы ослаблен, заболевание возникает.

Большинство птиц, содержащихся в домашних условиях, прежде жили в естественных местах обитания. Неволя оказывает на них отрицательное воздействие. Тесное жилище, которое ограничивает движения, несвежий воздух, неполноценный корм — все это снижает устойчивость организма к инфекции и, естественно, влияет на развитие болезни. Микобактерии, попавшие в организм птицы, быстро размножаются. Часть их распадается, в результате чего выделяются ядовитые вещества, которые вызывают омертвение клеток тканей. Возле микобактерии и поврежденных ими клеток скапливаются макрофаги. При этом образуются узелки (бугорки, туберкулы), которые препятствуют дальнейшему распространению микобактерий в организме. Вначале узелки очень мелкие, но потом они увеличиваются, и чем дольше длится туберкулезный процесс, тем больше они становятся. Вокруг них образуются капсулы из волокнистой соединительной ткани.

При микроскопическом исследовании более всего повреждений замечено в печени, селезёнке, кишечнике и костном мозге. Бактериемия, которая, вероятно, происходит периодически, возможно не раз поражает эти органы. Однако повреждения встречаются также и в других органах. Туберкулёз птиц у домашней птицы характеризуется наличием неправильной формы серовато-желтых или серовато-белых бугорков, самых разных размеров в пораженных органах. Размеры бугорка колеблются от едва заметной структуры до нескольких сантиметров. Они могут пропитываться минеральными солями. Фиброзная капсула на клубеньках может изменяться по толщине и консистенции, от 0, 1 до 0, 2см. Число повреждений может быть от нескольких штук до неисчислимого количества. Поражения легких обычно менее серьёзны, чем печени или селезёнки.

Для диагностики можно применят туберкулиновую пробу (реакция на птичий туберкулин), иммуноферментный анализ, ПЦР-диагностику, бак посев, выявлением микроорганизмов в мазках-отпечатках пораженных органов или фекалий при специальной окраске мазка по методу Циля-Нильсена, они хорошо различимы под микроскопом.
Противотуберкулёзные препараты редко используются для лечения больной домашней птицы. Однако их комбинации использовались для лечения некоторых экзотических птиц, содержащихся в неволе. Клиническое выздоровление наступило у трёх птиц, которым давали комбинацию изонизида (30 мг/кг веса), этамбутола (30 мг/кг веса) и рифмампицина (45 мг/кг веса). Продолжительность лечения составляла 18 месяцев, если не возникало неблагоприятных побочных эффектов. При разработке подходящих режимов лечения туберкулёза различных видов экзотических птиц, необходимы дополнительные исследования.

С целью профилактики у фазанов применяют медицинские препараты ПАСК и фтивазид, которые дают с кормом.

Часто туберкулез птиц можно контролировать, уничтожая всех птиц в стае после первого сезона яйцекладки. Достаточно эффективно для защиты цыплят использование вакцин, содержащих инактивированные или живые микобактерии.

Рекомендации по контролированию туберкулёза птиц у экзотических птиц состоят в следующем: 1) предотвращение контакта с туберкулёзными птицами; 2) помещений и оборудования, находившихся с ними в контакте, нужно избегать; 3) содержание заболевших птиц в карантинных условиях в отдельном вольере в течение 60 дней и повторный анализ птичьим туберкулином или другим методом. Необходимо подтвердить прочность прививок, сделанных цыплятам, для защиты от туберкулёза птиц различных видов экзотических птиц.

Читайте также:

• Как улучшить ситуацию по туберкулезу
• Фтизиатрия проблемы больных туберкулезом
• Туберкулез у детей и подростков эпидемиология
• Профилактика при туберкулезе кожи
• Патологическая анатомия туберкулезного менингита